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Los Macromicetos del Jardín Botánico de ECOSUR “Dr. Alfredo Barrera Marín”
Puerto Morelos, Quintana Roo
Book · August 2011
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Joaquin Cifuentes
Universidad Nacional Autónoma de México
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Ricardo Valenzuela
Instituto Politécnico Nacional
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Los Macromicetos del
Jardín Botánico de ECOSUR
“Dr. Alfredo Barrera Marín”
Araceli Pompa González, Elvira Aguirre Acosta
Ana Victoria Encalada Olivas, Angélica de Anda Jáuregui,
Joaquín Cifuentes Blanco y Ricardo Valenzuela Garza
Corredor Biológico Mesoamericano México
Serie Diálogos / Número 6
Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad
Los hongos tropicales son un componente esencial para la supervi-
vencia de otros organismos, tienen funciones cruciales en los proce-
sos ecológicos globales, son fuente de nuevos compuestos bioactivos
y agentes de control biológico. Los hongos constituyen el segundo
grupo de organismos más diverso en la Tierra después de los insec-
tos. Los jardines botánicos son una de las opciones de conservación
y protección de especies con las que cuenta nuestro país. El Jardín
Botánico Dr. Alfredo Barrera Marín es la última área de vegetación
conservada entre Cancún y Tulúm, en el estado de Quintana Roo.
En la extensa área que ocupa este jardín botánico, entre el año 2005
y el 2009 se realizaron colectas de macromicetos (hongos que se ca-
racterizan por tener cuerpos reproductores macroscópicos), lo que
se tradujo en la colección que damos a conocer a través de esta guía.
Como preámbulo, además de proporcionar elementos de contexto
con relación al jardín botánico, se ofrece información de interés para
quien desea aproximarse al conocimiento del reino de los hongos o
fungi.
Conocimientos, Acciones y Diálogos son los cuadernos en los que el
Corredor Biológico Mesoamericano México va dejando constancia
del trabajo realizado en favor de la conectividad entre áreas de gran
riqueza biológica en nuestro territorio.Son referentes,huellas de uti-
lidad para orientar los empeños de la gran diversidad de actores que
trabajan en torno al uso o manejo sustentable de nuestros recursos y
la conservación de la biodiversidad.
La serie Conocimientos contiene algunos de los diagnósticos e inves-
tigaciones que van teniendo lugar. Acciones, reúne experiencias que
van cristalizando alrededor del uso sustentable y la conservación, y
Diálogos alimenta el intercambio de saberes, son guías, inventarios
y manuales de utilidad para los actores involucrados.

Los Macromicetos del Jardín
Botánico de ECOSUR
Araceli Pompa González, Elvira Aguirre Acosta
Ana Victoria Encalada Olivas, Angélica de Anda Jáuregui
Joaquín Cifuentes Blanco y Ricardo Valenzuela Garza
Serie Diálogos / Número 6

Juan Rafael Elvira Quesada
Secretario de Medio Ambiente y Recursos Naturales
José Sarukhán Kermez
Coordinador Nacional
Pedro Álvarez Icaza
Coordinación de Corredores y Recursos Biológicos
Coordinador
Xochitl Ramírez Reivich
Directora
Raúl Herrera Massieu
Especialista en divulgación de Corredores Biológicos
Para mayor información sobre éste y otros temas relacionados con el
Corredor Biológico Mesoamericano México consultar www.biodiversidad.gob.mx/cbmm
Las opiniones expresadas en este documento son responsabilidad
de sus autores y pueden no coincidir con las de la CONABIO.
Coordinación editorial: Rosalba Becerra
Revisión de textos: Luz Elena Vargas
Formación electrónica: Bárbara Ramírez
Fotos de portada: Ricardo Valenzuela Garza y Araceli Pompa González
Cuidado editorial: Trazos, consultoría editorial
Liga Periférico Insurgentes Sur 4903
Col. Parques del Pedregal
14010 Tlalpan, México, D.F.
Tel. (55) 5004 5000 / (55) 5004 4939
<www.conabio.gob.mx> <www.biodiversidad.gob.mx/cbmm>
ISBN 978-607-7607-42-7
México, 2011
Colección Corredor Biológico Mesoamericano México
Conocimientos Acciones Diálogos

3
Presentación
La conservación de la biodiversidad es un imperativo ante los efectos que ha
tenido sobre ella el modelo económico vigente. Como parte de la gestión para
la conservación que se realiza en nuestro país, el Corredor Biológico Meso-
americano (CBM) integra, entre los principales ejes de su estrategia, el aprove-
chamiento de los recursos por parte de las poblaciones rurales locales. Tanto
para efectos de orientación como de monitoreo y evaluación de una gestión de
este tipo, se requiere información y conocimientos en torno al estado en el que
se encuentra la diversidad biológica. De ahí la importancia que tiene para el
CBM este diagnóstico, convertido en guía para efectos de publicación. Su per-
tinencia es aún mayor si se considera que el estudio se realiza en la última área
protegida existente desde Tulum hasta Cancún, al norte de Quintana Roo. La
proximidad del Jardín Botánico de ECOSUR “Dr. Alfredo Barrera Marín” al
Corredor Biológico Calakmul-Sian Ka’an (CBC-S), incluido en el CBM, hace
que los hongos de este lugar se consideren como representativos de la biodiver-
sidad micológica que se encuentra en dicho Corredor.
Quintana Roo es uno de los estados más jóvenes de la República Mexi-
cana. Su ubicación tropical y su colindancia con el mar Caribe le confieren una
belleza natural sin par y una gran diversidad biológica. Esta situación, aunada
a su gran importancia histórica, étnica y cultural, lo dotan de un innegable
atractivo y de una importancia turística de carácter mundial. Dentro de una
política de envergadura planetaria y del modelo económico vigente, se consi-
dera al turismo como una industria sustentable, sin chimeneas, generadora de
empleo y, por lo tanto, de gran impacto social. Si a esta situación se agrega que
el turismo permite una rápida recuperación de la inversión, no resulta difícil
entender por qué Quintana Roo es uno de los estados mexicanos que tienen,
según el censo del año 2000, una densidad de emigración muy baja y un índice
de desarrollo humano de los más altos del país.
Si la tasa de desempleo y el PIB per capita no son un problema en Quin-
tana Roo, es necesario reconocer y alertar que el desarrollo turístico ha tenido
una serie de efectos colaterales no deseados que deben atenderse con pronti-
tud. Así, esta situación de bonanza explicaría por sí sola el que extensas áreas
que hace 20-50 años eran totalmente vírgenes y depositarias de una gran bio-
diversidad, están actualmente transformadas o en un proceso acelerado de de-

4
sarrollo de megaproyectos turísticos y también de urbanización, generalmente
mal planeada.
Las modificaciones en el uso del suelo han causado, por decir lo menos,
un cambio sustancial del paisaje. Este fenómeno se ve magnificado por el paso
natural de los huracanes, que, año con año, asedian y castigan la región. Si el
marco ecológico de un sitio está estructurado por un conjunto de interacciones
entre organismos y su medio ambiente —cuya modificación, cualquiera que
ésta sea, incide en el total—, entonces resulta innegable que las alteraciones
observadas en la vegetación y el bosque han traído como consecuencia la afec-
tación directa o indirecta de otros organismos menos visibles. Ante este pano-
rama, el estudio, la documentación y la difusión del conocimiento adquirido
sobre los recursos de un área tan rica resultan fundamentales para argumentar
y desarrollar estrategias de conservación o aprovechamiento. Los cambios co-
mentados tienen implicaciones directas sobre la desaparición de las especies
más sensibles y, por lo mismo, es urgente e imperiosa la necesidad de estudiar
la biota de la región.
Siendo los hongos seres muy vulnerables y dependientes de su ecosiste-
ma, no es desventurado pensar que están entre los organismos más afectados
por las transformaciones mencionadas. El decidirse a estudiar y a destacar la
existencia de este grupo de organismos, poco valorado y frecuentemente inad-
vertido, adquiere una connotación relevante. Es ésta, tal vez, la principal im-
portancia del libro Los macromicetos del Jardín Botánico de Ecosur “Dr. Alfredo
Barrera Marín”, obra que representa la culminación de un esfuerzo de trabajo
continuo de cinco años de recolección, observación y análisis de ese submundo
tan importante para la vida del planeta, por su impacto en la regeneración de
la materia orgánica, en la salud del bosque, de la selva y de la vida en general.

5
Mediante la descripción detallada y la imagen fotográfica elocuente, el
libro da cuenta de la gran variedad de formas, colores y texturas que caracteri-
zan a los hongos superiores, los macromicetos, esos representantes del reino
Fungi que pueden ser encontrados en la selva mediana subperennifolia, habi-
tante del Jardín y representativa del estado de Quintana Roo. Aparte del valor
científico y educativo innegable que posee el libro, su elaboración representó
un esfuerzo loable de iniciación y formación de jóvenes en actividades cientí-
ficas, por la participación importante de estudiantes de preparatoria en una
actividad tan formal como la investigación taxonómica. El libro es, además, un
testimonio de colaboración vinculante entre varias instituciones de excelencia
en investigación micológica mexicanas.Gracias al tesón,la capacidad y el espí-
ritu de colaboración de los autores, se logró esta magnífica obra, la cual, augu-
ramos, será de referencia obligada en el futuro.
José E. Sánchez

7
Contenido
Presentación 3
Introducción 13
El Jardín Botánico de ECOSUR “Dr. Alfredo Barrera Marín” 17
Características generales 17
Metodología 23
Generalidades de los hongos 25
Los macromicetos 26
Clasificación de las especies estudiadas 33
Fenología de las especies recolectadas 37
Descripciones 47
Glomus fulvum 48
Daldinia concentrica 49
Daldinia eschscholzii 50
Phylacia globosa 51
Xylaria hypoxylon 52
Leucocoprinus birnbaumii 53
coprinus lagopus 54
Marasmius crinis-equi 55
Marasmius pulcherripes 56
Xeromphalina complex. tenuipes 57
cyathus colensoi 58
Pleurotus djamor 59
schizophyllum commune 60
Melanoleuca yucatanensis 61
Auricularia fuscosuccinea 62

8
Auricularia polytricha 63
scleroderma sinnamariense 64
Aurificaria luteoumbrina 65
Fulvifomes sanjanii 66
Fuscoporia gilva 67
Inonotus linteus 68
Inonotus porrectus 69
Phellinus fastuosus 70
Phellinus nilgheriensis 71
Phylloporia chrysita 72
clathrus ruber 73
Fomitopsis feei 74
Ganoderma flaviporum 75
Gloeophyllum striatum 76
Flavodon flavus 77
Antrodiella versicutis 78
coriolopsis brunneo-leuca 79
coriolopsis byrsina 80
coriolopsis polyzona 81
Earliella scabrosa 82
Hexagonia hydnoides 83
Hexagonia variegata 84
Lentinus badius 85
Lentinus bertieri 86
Lentinus velutinus 87
Polyporus arcularius 88
Polyporus grammocephalus 89
Polyporus guianensis 90
Polyporus tenuiculus 91
Polyporus tricholoma 92
Pycnoporus sanguineus 93
Trametes elegans 94
Trametes maxima 95
Trametes pavonia 96
Trametes villosa 97
Trichaptum sector 98

9
Trichaptum sprucei 99
Amylosporus campbelli 100
calocera cornea 101
Dacryopinax spathularia 102
Tremella rubromaculata 103
Apéndice 105
Bibliografía 107

11
Agradecimientos
Esta guía se elaboró durante los años 2005 a 2009, con el apoyo del colegio Británi-
co del caribe s.c. Los autores agradecen a la profesora clara silvia Barra Arias,
directora y fundadora de dicho colegio, a quien se admira y valora por creer que lo
imposible es posible y por todos los recursos materiales, técnicos y financieros que al
proyecto destinó, incluyendo el financiamiento dado para presentar los avances del
proyecto en el IX congreso Nacional de Micología, realizado en la universidad
Autónoma de Baja california. se agradece a la entonces directora del Jardín Botá-
nico de Ecosur “Dr. Alfredo Barrera Marín”, Bióloga silvia Torres†, quien hizo
las gestiones necesarias ante Ecosur para la realización de este trabajo. Gracias al
entonces director de Ecosur unidad chetumal, Dr. José Pablo Liedo Fernández,
por apoyar la concreción del convenio entre ambas instituciones, que autoriza la re-
colección de ejemplares en el Jardín Botánico. se debe también profunda gratitud a
la actual directora del Jardín Botánico, la M. en c. cecilia Elizondo, por apoyar la
publicación de la presente obra.
De la misma forma, los autores agradecen al Instituto de Biología de la univer-
sidad Nacional Autónoma de México, a la Escuela Nacional de ciencias Biológicas
del Instituto Politécnico Nacional, por las facilidades otorgadas para el desarrollo del
presente estudio, y a la Facultad de ciencias de la universidad Nacional Autónoma
de México. ricardo Valenzuela Garza agradece al Instituto Politécnico Nacional por
el apoyo financiero a sus investigaciones en el marco del proyecto sIP-20100942.
También se agradece el apoyo para la publicación del trabajo de la Dra. Esperan-
za Tuñón Pablos, Directora General de Ecosur, de la Dra. Ana Minerva Arce
Ibarra, Directora de Ecosur unidad chetumal y del Dr. Juan Jacobo schmitter
soto, Director de conservación de la Biodiversidad de Ecosur unidad chetumal.
Especialmente se agradecen las gestiones del Dr. Jorge Leonel León cortés, Director
de Ecosur unidad san cristóbal de las casas, sin las que no habría sido posible la
presentación del trabajo en la semana de Intercambio Académico 2010, celebrada en
Ecosur unidad san cristóbal de las casas. Asimismo, las aportaciones del Dr. José
Ernesto sánchez Vázquez, investigador de Ecosur unidad Tapachula, resultaron
invaluables para la presente obra. En particular, Araceli Pompa agradece a sus ami-
gos Manuel Leónides Flores León, por las ilustraciones y diseño de esta guía, a Pedro

12
Méndez Aguirre, por su apoyo incondicional en las soluciones informáticas de la
obra, y a María Luisa Medina Moisés, por sus sugerencias para mejorar el texto.
Finalmente, mas no menos importante, Araceli Pompa reconoce el apoyo de sus
hijos Gerardo y Alejandra, quienes, con su paciencia y compañía en diversas recolec-
ciones, fueron el soporte fundamental en el desarrollo de este trabajo y a los que debe
su constante superación personal y profesional; de la misma manera, a sus padres, a
sus compañeros y amigos, que compartieron la experiencia de recolectar hongos por
primera vez y conocieron directamente la belleza e importancia de estos organismos.

13
Introducción
Tomando en consideración la posición geográfica privilegiada de México y su
amplia biodiversidad, las posibilidades de contribuir al conocimiento de la mi-
cobiota, especialmente en el estado de Quintana Roo, son muy grandes. No
obstante, falta mucho trabajo por hacer para conocer totalmente la diversidad
de hongos macroscópicos con la que cuenta nuestro país. La mayoría de los
trabajos taxonómicos realizados en México se ha dedicado principalmente a
las zonas templadas, a pesar de la riqueza de las zonas tropicales; las investiga-
ciones en este rubro son escasas, lo cual representa un grave rezago de conoci-
mientos sobre nuestros recursos naturales,mismos que probablemente desapa-
rezcan antes de ser conocidos, debido a que actualmente enfrentan un serio
problema de devastación. Existen informes de un gran número de endemis-
mos, puesto que en nuestro territorio confluyen dos zonas biogeográficas:
Neártica y Neotropical (figura 1), además de poseer topografías muy variadas
de diversas altitudes, diferentes tipos de suelos y una gran variedad de climas y
vegetación, que de manera conjunta provocan la generación de microhábitats
muy particulares. Una de las regiones que más contribuye a esta megadiversi-
dad es el sureste del país (Toledo 1994,Toledo et al. 1995).
Figura 1. Mapa de zonas biogeográficas.
Paleártica
Etiópica Oriental
Australiana
Neártica
Neotropical

14
Los trabajos relacionados con la diversidad de la micobiota en el estado de
Quintana Roo se remiten en sus inicios a investigaciones sobre diversas locali-
dades aisladas y no a zonas definidas para un estudio sistemático. Hasta 1993,
se tenían registradas para esta entidad unas 200 especies de hongos macroscó-
picos (Chio y Guzmán 1982; Guzmán 1982, 1983; Guzmán-Dávalos y Guz-
mán 1982). Sin embargo, se hace mención de solo 32 especies (ver apéndice)
como existentes en el Jardín Botánico de ECOSUR “Dr. Alfredo Barrera Marín”
(Pérez-Silva et al. 1992, Ryvarden y Guzmán 1993).
Por otro lado, en el primer trabajo realizado en un área de conservación
ubicada al norte del estado, Los hongos de El Edén, Quintana Roo (Guzmán,
2003) se mencionan más de 140 especies de hongos macroscópicos para esa
localidad. Sin embargo, hasta el momento no existe investigación alguna que
verse exclusivamente sobre la diversidad de macromicetos (hongos macroscópi-
cos) del Jardín Botánico de ECOSUR “Dr. Alfredo Barrera Marín”, por lo que la
presente obra pretende contribuir al conocimiento de los mismos y lograr que
los visitantes del jardín botánico puedan reconocer las especies que permiten la
regeneración de esta zona protegida conformada por ecosistemas tropicales.
Las áreas protegidas en nuestro país se han convertido en el ícono del
denominado ecoturismo. En ellas se puede apreciar in vivo nuestra riqueza
biológica, sin ningún tipo de perturbación humana, y ofrecen un sinfín de
posibilidades en el manejo de los recursos naturales que ahí se encuentran.
Además, las áreas protegidas son una excelente oportunidad para conocer más
de cerca a los macromicetos.
Si bien las áreas protegidas permiten preservar de manera eficiente la ma-
yor parte de la biodiversidad de la región, con significativos vacíos en bosques
tropicales y subtropicales (Godoy 2003), es innegable que el modelo de gestión
prevaleciente se ha agotado. La capacidad de los gobiernos estatales para admi-
nistrar todas las áreas protegidas,con diferentes categorías de manejo y como lo
han venido haciendo hasta ahora,se ha desgastado.Por otro lado,hay evidencia
de que las comunidades aledañas a las áreas protegidas, incluyendo pueblos
indígenas, no están dispuestas a seguir desempeñando un papel marginal en
dicha gestión. Por su parte, el Corredor Biológico Mesoamericano facilita la
desconcentración de la conservación y estimula la producción amigable en las
zonas de interconexión. Así, se impone un nuevo arreglo entre los diversos su-
jetos y organizaciones que actúan en torno a las áreas protegidas, entendiendo
esto como responsabilidades y beneficios compartidos entre los mismos.

15
Retomando lo anterior, en la actualidad cobra una singular importancia
reconocer que los jardines botánicos son una de las opciones de conservación y
protección de especies con las que cuenta nuestro país. En Quintana Roo, el
jardín botánico es la última área de vegetación conservada entre Cancún y
Tulúm. Cuenta, además, con programas alternos que coadyuvan a la generación
de conocimientos sobre el manejo de los recursos naturales,así como al desarro-
llo de una educación ambiental.Ello lo convierte en un sitio idóneo para realizar
investigaciones que enriquecen nuestro conocimiento sobre biodiversidad.
Quintana Roo y los estados mexicanos de Yucatán, Campeche,Tabasco y
Chiapas,junto con Guatemala,Belice,El Salvador,Honduras,Nicaragua,Cos-
ta Rica y Panamá conforman la región Mesoamericana (Miller et al. 2001).
Estudios biogeográficos señalan que esta región contiene 22 ecorregiones dis-
tintas, es el puente para diversas especies entre América del Norte y América
del Sur y, aunque representa solo el 0.5% del total de la superficie del planeta,
posee cerca del 7% de la biodiversidad mundial. El que el Jardín Botánico se
encuentre en Quintana Roo le confiere una posición privilegiada para el estu-
dio y conservación de la biodiversidad, ya que, además de lo dicho, esta entidad
es parte de la porción mexicana del llamado Corredor Biológico Mesoamerica-
no (CBM), que surge ante la necesidad de generar un enfoque integral de la re-
gión mesoamericana para resolver sus problemas ambientales y cuyo principal
objetivo es la conservación de especies y el fomento del desarrollo sostenible.
Los hongos tropicales son un componente esencial para la supervivencia
de otros organismos, cruciales en los procesos ecológicos globales, fuente de
nuevos compuestos bioactivos y agentes de control biológico, entre otros as-
pectos relevantes (Hawksworth 2002). Los hongos están considerados, actual-
mente, como el segundo grupo de organismos más diverso en la Tierra, des-
pués de los insectos, pues se calcula que hay alrededor de 1.5 millones de
especies de hongos, mientras que para los insectos se da una estimación de 8
millones de especies. Ante estos datos, la pregunta que surge es: ¿Por qué si es
el segundo grupo más biodiverso hay un número de especies registradas tan
bajo en relación con los insectos? Quizá se deba a la falta de micólogos que
determinen las especies de hongos, lo cual es preocupante en un momento en
que la demanda de los conservacionistas y personas interesadas en el desarrollo
sostenible es mayor que nunca, ya que muchas especies desaparecerán sin ha-
ber sido registradas debido a la velocidad con la que se devasta su hábitat.

17
El Jardín Botánico de ECosur
El Jardín Botánico fue inaugurado el 16 de marzo de 1990. Desde 1995, El
Colegio de la Frontera Sur (ECOSUR) es responsable de su mantenimiento,
cuidado y operación, bajo el nombre actual de Jardín Botánico de ECOSUR
“Dr. Alfredo Barrera Marín”.
Después de un tiempo y de valioso trabajo científico, el Jardín Botánico
fue inscrito en la Asociación Mexicana de Jardines Botánicos y en la Botanic
Gardens Conservation International (BGCI),con características estructurales y
un enfoque de la conservación in situ que le han permitido ser considerado
como modelo aplicable para otros jardines botánicos nacionales.
Características generales
Extensión y localización
Abarca una extensión de 65 hectáreas, por lo que es el más grande del país. Se
localiza sobre la carretera federal 307 Chetumal-Cancún, a 33.5 kilómetros al
sur de Cancún, 3.7 kilómetros al sudoeste de Puerto Morelos y a dos kilóme-

18
tros en línea recta de la playa,en el municipio de Benito Juárez,Quintana Roo.
Sus coordenadas geográficas son 20º 50’ latitud Norte y 86º 53’ longitud Oes-
te, con una altitud de tres metros.
Clima
Cálido subhúmedo con lluvias en verano, precipitación media anual de 1105
mm, temperatura media anual de 27 ºC, lluvia invernal del 13.9%, oscilación
anual de las temperaturas medias mensuales de 5.9 ºC y una estación seca bien
definida de marzo a abril. La cercanía al mar ocasiona una humedad relativa
del 80%, con vientos la mayor parte del año Este-Sureste en primavera-verano
y Norte en invierno; alta nubosidad y en ocasiones huracanes y tormentas tro-
picales con lluvias torrenciales.
Topografía
Terreno plano, con abundante y aflorante roca caliza, así como numerosas de-
presiones naturales. Se presenta una pendiente de 13º con dirección Oeste-
Este, excepto en el límite Este del jardín y en una franja Norte-Sur de aproxi-
madamente 50 metros de ancho.Esto marca diferencias en el tipo de vegetación,
de selva mediana subperennifolia a manglar.
Cancún
Puerto Morelos
Playa del Carmen
Quintana Roo
Yucatán
Campeche
Cozumel
Chetumal
Mar Caribe
Golfo de
México
Mérida
Campeche
Localización del Jardín
Botánico de ECOSUR
“Dr. Alfredo Barrear Marín”

19
Suelos
Delgados,de color marrón obscuro a marrón grisáceo,con mucha roca afloran-
te, un 26.8% de materia orgánica y una textura de arena francosa a franco
arenosa. Según lo propuesto por la FAO, es un litosol-rendzina. Durante las
lluvias fuertes se observa un lento arrastre laminar hacia el manglar y las depre-
siones; en estas últimas, se presenta un suelo notoriamente diferente, de un
metro o más de profundidad y de color marrón rojizo, resultado indudable de
la deposición coluvial. Estos datos están basados en cuatro perfiles realizados
por Sigfredo Escalante (Sánchez y Escalante 2000).
Arriba suelos delgados
con roca aflorante.
Abajo Suelos con
gran cantidad de
materia orgánica en
descomposición.
Fotos: Araceli Pompa González

20
Vegetación
El tipo de vegetación corresponde a una selva mediana subperennifolia, la cual
colinda en su extremo este con una angosta franja de vegetación de manglar
(Sánchez y Escalante 2000). La presencia en el jardín botánico de estos dos
tipos de vegetación es muy representativa, ya que la entidad solía contar con
ambas, en grandes extensiones, pero han venido desapareciendo paulatina-
mente por diversas razones,tanto de orden natural como por la acción humana
ejercida en la línea de costa del estado de Quintana Roo. Dada la creciente
demanda de espacios para el desarrollo turístico del mismo, este jardín botáni-
co resulta de un valor incalculable, como parte de los recursos naturales prote-
gidos de nuestro país.
Selva mediana
subperenifolia: estrato
superior
Foto: Araceli Pompa González

21
De acuerdo con la webgrafía www.ecosur-qroo.mx/jardin.htm, la vegeta-
ción se describe particularmente de la siguiente manera:
Selva mediana subperennifolia
Su característica principal es que 25 a 50% de sus especies pierden sus hojas
durante la época seca del año. Su composición florística está conformada por
unas 300 especies. La vegetación presenta dos estratos arbóreos (uno superior
de 15 a 25 m, y otro inferior, de hasta 10 m), uno arbustivo y otro herbáceo,
compuesto principalmente por plantas jóvenes de especies arbóreas y trepado-
ras. Es notoria la presencia de trepadoras leñosas.
Las especies más importantes del estrato superior son: el chicozapote
(Manilkara zapota), el ramón (Brosimum alicastrum), la guaya (Talisia olivaei-
formis), el guayabillo (Myrcianthes fragans), el kulimche (Astronium graveolens)
y el corpulento subul o caracolillo (Mastichodendrom foetidissimum).
En el estrato inferior sobresalen, por su abundancia, el ekulub (Drypetes
lateriflora), yaite (Gymnanthes lucida), y las palmas chit (Thrinax radiata) y
nacax (cocothrinax readii).
Selva mediana
subperennifolia:
estrato inferior con
palmas chit
Foto: Araceli Pompa
González

22
Manglar
La especie predominante en este tipo de vegetación es el mangle rojo Rhizo-
phora mangle. Su cubierta vegetal es bastante densa.
Es importante mencionar que el jardín botánico de ECOSUR posee una
gran diversidad vegetal y que los hongos tienen un papel fundamental en el re-
ciclamiento de la materia orgánica que la soporta y en las relaciones simbióticas
denominadas micorrizas, que favorecen el adecuado crecimiento de las plantas.
Manglar con
predominio de
mangle rojo.
Foto: Araceli Pompa
González

23
Metodología
Se realizaron 25 exploraciones al Jardín Botánico “Dr. Alfredo Barrera Marín”
de 2005 a 2009, aprovechando la temporada de lluvias y procurando recolectar
durante todos los meses del año para tener datos más precisos sobre los hongos
existentes en el jardín botánico.Los ejemplares se trasladaron al laboratorio del
Colegio Británico del Caribe S.C.,donde se levantaron las características mor-
fológicas macroscópicas de los especímenes en fresco, como tamaño, forma,
color, consistencia, superficie y textura u ornamentación de todas las partes de
los basidiomas (píleo, himenóforo, estípite y contexto), siguiendo las sugeren-
cias de Cifuentes et al. (1986). Además, se registraron los datos de la recolec-
ción: fecha en que se realizó, sitio o localidad, tipo de vegetación, hábito de
crecimiento, hábitat (sustrato donde se desarrolla: suelo, hojarasca, madera,
hospedero, etc.) y datos del recolector del espécimen.
Los hongos se recolectaron extrayéndolos del sustrato sobre el cual cre-
cían, utilizando una navaja, cuchillo de campo o palita jardinera; después, los
cuerpos fructíferos se envolvieron en papel encerado y se colocaron dentro de
una canasta de mimbre, procurando colocar abajo los más pesados y los más
ligeros, arriba. La extracción de los especímenes se hizo con todo cuidado, sin
dejar partes del basidioma del hongo que pudieran ser importantes para su
Recolecta de
hongos.
Foto: Alejandra Rocha
Pompa

24
determinación. Las fotografías fueron tomadas preferentemente in situ, con la
finalidad de tener los especímenes en fresco y ver su hábitat natural,además de
conservar algunas de sus características morfológicas. Posteriormente, fueron
herborizados: se deshidrataron a 60° C durante 48 horas con una parrilla eléc-
trica (Cifuentes et al. 1986). Finalmente, se guardaron en cajas, se etiquetaron
y depositaron en las colecciones de hongos de ECOSUR unidad Chetumal, del
Herbario Nacional MEXU del Instituto de Biología de la UNAM y duplicados
en el Herbario de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto
Politécnico Nacional (IPN), anexando los datos de campo, las descripciones en
fresco y su descripción microscópica, así como su etiqueta de determinación
taxonómica.
En el Laboratorio del Herbario de la Escuela Nacional de Ciencias Bio-
lógicas del IPN se realizó la determinación de los ejemplares recolectados, pre-
viamente herborizados, empleando las técnicas tradicionales de la micología,
propuestas por Largent et al. (1977). Se hicieron preparaciones temporales con
KOH al 5% y reactivo de Melzer y se hicieron cortes transversales y longitudi-
nales de las diferentes partes del basidioma: píleo, contexto, himenóforo y estí-
pite, para su observación al microscopio. Se tomaron las características morfo-
lógicas microscópicas de importancia taxonómica: tamaño,forma y color de las
esporas, basidios, cistidios, setas e hifas, y se observó el tipo de sistema hifal y
la presencia de fíbulas.
Toma de fotografías
in situ.
Foto: Araceli Pompa
González

25
Generalidades de los hongos
Los hongos son organismos sumamente variables y polimorfos, tanto micros-
cópica como macroscópicamente. Por ello, es extremadamente difícil generali-
zar su morfología. Es necesario estudiar cada grupo, ya sea en géneros o espe-
cies, para poder dar los detalles en este aspecto (Herrera y Ulloa 1990).
Antes, los hongos eran parte del reino vegetal, pero actualmente, por su
forma de nutrición,la ausencia de clorofila y las estructuras fundamentales que
presentan, forman un reino aparte: el Fungi (o reino de los hongos). Se cono-
cen más de 80000 especies de hongos en el mundo, pero algunos científicos
han hecho cálculos y consideran que puede haber más de 1500000. En Méxi-
co, se conocen alrededor de 7000, pero se calcula que puede haber más de
150000 especies. Los hongos, como descomponedores de materia orgánica,
son uno de los grupos de organismos que juegan un papel ecológico importan-
te en la naturaleza, pues participan activamente en los procesos de recicla-
miento de los elementos naturales, en la formación y conservación del suelo,
además de mantener el equilibrio de los ecosistemas naturales por sus relacio-
nes con otros organismos.
Los hongos tienen importancia económica para el hombre. Los hay per-
judiciales porque, como descomponedores, pueden contaminar nuestros ali-
mentos, como frutos, semillas, pan, tortillas, o pueden destruir o degradar pa-
pel, cartón, cuero, madera, telas. Otros hongos atacan a las plantas cultivadas o
a los animales domésticos, con lo que disminuyen la producción de alimentos
y causan grandes pérdidas en la agricultura y en la ganadería. También atacan
al hombre y pueden causarle diversas enfermedades en piel, cabello, uñas, pul-
mones y otros órganos vitales.
Por otro lado, tenemos los hongos que nos aportan beneficios, por ejem-
plo: los de importancia industrial, que producen antibióticos y vitaminas en el
área farmacéutica o los que se utilizan en la fermentación, para elaborar pan,
vino,licores o cerveza,o para obtener saborizantes,como el ácido cítrico,o para
extraer enzimas que se utilizan en los detergentes biológicos. También cobran
importancia los hongos comestibles, como el champiñón y las setas, ahora cul-
tivados industrialmente y muy valorados por su contenido proteínico.
Por último, tenemos a los hongos de importancia etnobiológica: los que
el hombre ha utilizado a lo largo de la historia en diversas culturas; principal-

26
mente, los hongos comestibles silvestres que usa como alimento en su dieta.
También están los hongos con propiedades curativas, que forman parte de la
medicina tradicional y, de manera destacada, los hongos alucinógenos, que han
sido utilizados en diversas culturas del mundo, entre ellas, las mexicanas, en
ceremonias mágico-religiosas para comunicarse con los dioses o curar cierto
tipo de enfermedades.
Los macromicetos
A los hongos que producen cuerpos reproductores o esporocarpos macroscó-
picos se les denomina macromicetos. Pertenecen a los hongos superiores, que
se agrupan de acuerdo con la clasificación taxonómica más reciente de los
Phyla: Glomeromycota,Ascomycota y Basidiomycota (Kirk et al.2008).Algu-
nos de ellos, los más conocidos por su forma de fructificación, reciben el ape-
lativo popular de setas o sombrillas.
Estos cuerpos macroscópicos se denominan Ascocarpos para el Phylum
Ascomycota, Basidiocarpos para el Phylum Basidiomycota y Esporocarpos
para el Phylum Glomeromycota.
Nos permiten identificarlos las características que presentamos a conti-
nuación:
Geastrum sp.
hongo en forma
de estrella.
Foto: Araceli Pompa
González

27
Partes de un macromiceto
Las partes más sobresalientes de un macromiceto son: el píleo, que es la parte
superior del cuerpo del hongo, en la que se encuentra la porción fértil llamada
himenóforo y que presenta variaciones morfológicas; un pie denominado estí-
pite, que sostiene al píleo, y el anillo, que se presenta como una estructura ad-
herida al estípite en el grupo de los agaricales, es un fragmento del velo que
cubre al himenóforo en desarrollo. Todas estas partes se pueden apreciar en la
figura 2.
Cabe mencionar que no en todas las especies de macromicetos se en-
cuentran todas estas partes, pero es importante conocerlas en su totalidad para
poder identificar otras características más específicas.
Forma del píleo
Esta característica nos permite reconocer hongos de diferentes grupos taxonó-
micos. Hay una gran variedad de formas con y sin estípite, como se puede
apreciar en la figura 3, donde se nombra cada una.
Hábito de crecimiento
Se refiere a la forma de crecer de los hongos en el sustrato: solitario, si crece
aisladamente; gregario,si crece uno cerca de otro; cespitoso,si crecen en grupos
Figura 2. Partes de un
macromiceto.
Ilustración: Manuel Leonides
Flores León

29
muy juntos, pero nacen de forma independiente, y connato, si crecen unidos
desde el estípite.
Tipo de unión con el sustrato
Los hay estipitados y sésiles. En estos últimos, el píleo se encuentra unido di-
rectamente al sustrato.También encontramos otras variantes como resupinado,
efuso-reflejado e imbricado, como se muestra en la figura 4.
Color de las partes
El color es una de las características que más varía ya que responde a la madu-
rez del hongo, a la humedad del ambiente y a la cantidad de luz que haya en el
momento de la recolección. Es importante tener en cuenta que el color café es
uno de los más comunes e imprecisos de los utilizados en las descripciones,por
lo que es mejor referir las diferentes tonalidades.
Margen del píleo
Esta característica consiste en las diferentes formas en las que se puede presen-
tar la orilla del píleo, como se puede apreciar en la figura 5.
Figura 3. Formas de píleo.
Ilustraciones: Manuel
Leonides Flores León

30
Ornamentación
Hace referencia a dos partes del cuerpo del hongo: la superficie del píleo y la
superficie del estípite,en caso de presentarse.La ornamentación puede ir desde
la ausencia total de cualquier estructura, lo que se denomina glabro, hasta la
presencia de pequeñas granulaciones, fibras, escamas o estructuras semejantes
a pelos. Dichas ornamentaciones pueden observarse en las figuras 6 y 7.
Figura 5. Margen del píleo.
Figura 4. Tipo de unión con el sustrato.
Ilustraciones: Manuel Leonides Flores León

31
Figura 6. Ornamentación.
Ilustraciones: Manuel Leonides Flores León

32
Figura 7. Ornamentación.
Ilustraciones: Manuel
Leonides Flores León

33
Clasificación de las especies estudiadas
(Kirk et al. 2008)
Reino Fungi
Phylum Glomeromycota
Clase Glomeromycetes
Orden Glomerales
Familia Glomeraceae
Glomus fulvum (Berk. & Broome) Trappe & Gerd.
Phylum Ascomycota
Clase Sordariomycetes
Orden Xylariales
Familia Xylariaceae
Daldinia concentrica (Bolton) Ces. & De Not
Daldinia eschscholzii (Ehrenb.) Rehm
Phylacia globosa Lév.
Xylaria hypoxylon (L.) Grev.
Phylum Basidiomycota
Clase Agaricomycetes
Orden Agaricales
Familia Agaricaceae
Leucocoprinus birnbaumii (Corda) Singer
Familia Coprinaceae
Coprinus lagopus (Fr.) Fr.
Familia Marasmiaceae
Marasmius crinis-equi F. Muell. ex Kalchbr.
Marasmius pulcherripes Peck
Familia Mycenaceae
*Xeromphalina complex tenuipes
Familia Nidulariaceae
Cyathus colensoi Berk.
Familia Pleurotaceae
Pleurotus djamor (Rumph. ex Fr.) Boedijn
Familia Schizophyllaceae
*Schizophyllum commune Fr.

34
Familia Tricholomataceae
Melanoleuca yucatanensis Guzmán & Bon
Orden Auriculariales
Familia Auriculariaceae
Auricularia fuscosuccinea (Mont.) Henn.
*Auricularia polytricha (Mont.) Sacc.
Orden Boletales
Familia Sclerodermataceae
Scleroderma sinnamariense Mont.
Orden Hymenochaetales
Familia Hymenochaetaceae
Aurificaria luteoumbrina (Romell) D.A. Reid
Fulvifomes sanjanii (Lloyd) Bondartseva & S. Herrera
Fuscoporia gilva (Schwein.) T. Wagner & M. Fisch.
Inonotus linteus (Berk. & M.A. Curtis) Teixeira
Inonotus porrectus Murrill
Phellinus fastuosus (Lév.) Ryvarden
Phellinus nilgheriensis (Mont.) G. Cunn.
Phylloporia chrysita (Berk.) Ryvarden
Orden Phallales
Familia Phallaceae
Clathrus ruber P. Micheli ex Pers.
Orden Polyporales
Familia Fomitopsidaceae
Fomitopsis feei (Fr.) Kreisel
Familia Ganodermataceae
Ganoderma flaviporum (Murrill) Sacc. & Trotter
Familia Gloeophyllaceae
Gloeophyllum striatum (Sw.) Murrill
Familia Meruliaceae
Flavodon flavus (Klotzsch) Ryvarden
Familia Phanerochaetaceae
Antrodiella versicutis (Berk. & M.A Curtis) Gilb. & Ryvarden

35
Familia Polyporaceae
*Coriolopsis brunneo-leuca (Berk.) Ryvarden
Coriolopsis byrsina (Mont.) Ryvarden
*Coriolopsis polyzona (Pers.) Ryvarden
*Earliella scabrosa (Pers.) Gilb. & Ryvarden
*Hexagonia hydnoides (Sw.) M. Fidalgo
*Hexagonia variegata Berk.
Lentinus badius (Berk.) Berk.
Lentinus bertieri (Fr.) Fr
Lentinus velutinus Fr.
Polyporus arcularius (Batsch) Fr.
Polyporus grammocephalus Berk.
Polyporus guianensis Mont.
*Polyporus tenuiculus (P. Beauv.) Fr.
*Polyporus tricholoma Mont.
Pycnoporus sanguineus (L.) Murrill
Trametes elegans (Spreng.) Fr.
*Trametes maxima (Mont.) A. David & Rajchenb.
Trametes pavonia (Hook.) Ryvarden
*Trametes villosa (Sw.) Kreisel
*Trichaptum sector (Ehrenb.) Kreisel
Trichaptum sprucei (Berk.) Rajchenb. & Bianchin.
Orden Russulales
Familia Bondarzewiaceae
Amylosporus campbelli (Berk.) Ryvarden
Clase Dacrymycetes
Orden Dacrymycetales
Familia Dacrymycetaceae
Calocera cornea (Batsch) Fr.
Dacryopinax spathularia (Schwein.) G.W. Martin
Clase Tremellomycetes
Orden Tremellales
Familia Tremellaceae
Tremella rubromaculata Lowy
* Especies recolectadas y consideradas en la presente obra, que ya habían sido citadas previamente del Jardín
Botánico (Pérez-Silva et al. 1992; Ryvarden y Guzmán 1993).

37
Fenología de las especies recolectadas
Un factor determinante para la aparición de los hongos es la humedad, es decir,
cuanto mayor sea ésta, mayor es la probabilidad de encontrarlos en su hábitat.
Así, la fenología correlaciona la presencia de macromicetos en el tiempo con los
factores climáticos que prevalecen en el momento de la recolección. A partir de
los datos que proporciona la Comisión Nacional del Agua sobre sequías en
América del Norte (www.smn.cna.gob.mx/climatologia/sequia), se elaboró la
tabla 1,en la que se muestran las condiciones prevalecientes para la zona geográ-
fica del jardín botánico,tomando como punto de partida enero de 2005,cuando
se inició la recolección formal de hongos. Se incluyen especies recolectadas en
los meses de enero y septiembre de 2004, durante recolecciones exploratorias.
En 2004 y 2005 se presentaron solo cinco meses de precipitación normal;
en la segunda mitad de 2005 se registraron tres fenómenos hidrometeorológi-
cos. En 2006 se registraron nueve meses de precipitación normal. En 2007 se
registró solo un mes de precipitación normal, mientras que en 2008 se presen-
tó una franca recuperación con cinco meses de precipitación normal. Final-
mente, en 2009 se observaron dos meses con condiciones favorables de preci-
pitación. Es importante señalar que los años que registraron sequías severas
son 2007, 2008 y 2009.
Cabe destacar que 2005 fue un año decisivo para la presente investigación,
pues se vivió la influencia directa de tres huracanes: Emily, categoría II, regis-
trado los días 17 y 18 de julio; Stan, categoría I, ocurrido el 2 y 3 de octubre, y
Wilma,categoría IV,acaecido los días 21 y 22 de octubre,pero instalado sesen-
ta horas continuas sobre un área geográfica que incluyó al jardín botánico.
La destrucción en la zona de estudio fue palpable.A esta situación hemos
de sumar la sequía moderada que se presentó inmediatamente después del fe-
nómeno: la precipitación estuvo por debajo de los niveles normales durante los
dos meses posteriores al huracán. Por un lado, la salinidad marina, introducida
a la zona, causó modificaciones en la composición química de los suelos; por
otro lado, la destrucción del dosel de la selva permitió la evaporación inmedia-
ta de la humedad del ecosistema, lo que ocasionó la desecación de múltiples
especies vegetales de la zona durante once meses. Al terminar este periodo, el
follaje inició su proceso de recuperación y es cuando la enorme cantidad de
troncos caídos y tocones muertos fueron un elemento importante para la de-

38
Tabla 1. Nivel de sequía mensual por año de recolección
Mes 2004 2005 2006 2007 2008 2009
Enero
Precipitaciones
cercanas a los
niveles promedio
para este mes.
Febrero Sin registro
Marzo
Abril
Mayo
Junio
Julio
El huracán Emily
ayudó a eliminar un
período de sequía
en algunas zonas
de la península de
Yucatán.
Agosto
Septiembre
Precipitaciones
por debajo de lo
normal.
Octubre
Abundantes
lluvias. 2 y 3 de
oct influencia del
huracán Stan. 21 y
22 de oct. huracán
Wilma 750 mm en
tres días.
Noviembre
Precipitaciones
por debajo de lo
normal.
Diciembre
Precipitaciones
por debajo de lo
normal.
Sin sequía
Anormalmente seco
Sequía moderada
Sequía severa

39
gradación protagonizada por los hongos. Si a esto le sumamos la presencia de
mayor humedad en la zona, entenderemos la reaparición de macromicetos.
Por otra parte, en la tabla 2 se puede observar la fenología de las especies
recolectadas. Es importante mencionar que en la fenología no están incluidas
las especies coriolopsis byrsina y Polyporus tenuiculus, ya que ejemplares de di-
chas especies se encuentran depositados en el herbario de la Escuela Nacional
de Ciencias Biológicas del IPN y corresponden a recolecciones en la localidad,
en otros años. Sin embargo, se incluyen en las descripciones del presente tra-
bajo para ser registradas. Las especies y ejemplares reportados en la tabla 2,
correspondientes a noviembre de 2009, fueron registradas exclusivamente a
partir de observaciones con fotografía,pues de estas especies ya se tenían ejem-
plares y no fueron recolectadas nuevamente.
Después de realizar el análisis estadístico de la tabla 2, en la gráfica 1 se
observa que los años con el mayor número de especies fueron 2005 y 2006, en
cada uno de los cuales se registraron 21 y 32 especies respectivamente. En
Gráfica 1. Número de especies por año.
Número
de
especies
2005 2006 2007 2008 2009
45
40
35
30
25
20
15
10
5
0

40
Tabla 2. Fenología de las especies recolectadas
Especie Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
Amylosporus campbelli
Antrodiella versicutis
Auricularia fuscosuccinea
Auricularia polytricha
Aurificaria luteoumbrina
Calocera cornea
Clathrus ruber
Coprinus lagopus
Coriolopsis polyzona
Coriolopsis brunneoleuca
Cyathus colensoi
Daldinia concentrica
Daldinia eschscholzii
Dacryopinax spathularia
Earliella scabrosa
Flavodon flavus
Fomitopsis feei
Fulvifomes sanjanii
Fuscoporia gilva
Ganoderma flaviporum
Gloeophyllum striatum
Glomus fulvum
Hexagonia hydnoides
Hexagonia variegata
Inonotus linteus
Inontus porrectus
Lentin us badius
Lentinus bertieri
Lentinus velutinus
Leucocoprinus birnbaumii
Marasmius crinis-equi
Marasmius pulcherripes

41
Especie Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
Amylosporus campbelli
Antrodiella versicutis
Auricularia fuscosuccinea
Auricularia polytricha
Aurificaria luteoumbrina
Calocera cornea
Clathrus ruber
Coprinus lagopus
Coriolopsis polyzona
Coriolopsis brunneoleuca
Cyathus colensoi
Daldinia concentrica
Daldinia eschscholzii
Dacryopinax spathularia
Earliella scabrosa
Flavodon flavus
Fomitopsis feei
Fulvifomes sanjanii
Fuscoporia gilva
Ganoderma flaviporum
Gloeophyllum striatum
Glomus fulvum
Hexagonia hydnoides
Hexagonia variegata
Inonotus linteus
Inontus porrectus
Lentin us badius
Lentinus bertieri
Lentinus velutinus
Leucocoprinus birnbaumii
Marasmius crinis-equi
Marasmius pulcherripes

42
Tabla 2. Fenología de las especies recolectadas
Especie Enero Febrero Marzo Abril Mayo Junio
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
Melanoleuca yucatanensis
Phellinus fastuosus
Phellinus nilgheriensis
Phylacia globosa
Phylloporia chrysita
Pleurotus djamor
Polyporus arcularius
Polyporus
grammocephalus
Polyporus guianensis
Polyporus tricholoma
Pycnoporus sanguineus
Schizophyllum commune
Scleroderma
sinnamariense
Trametes elegans
Trametes maxima
Trametes pavonia
Trametes villosa
Tremella rubromaculata
Trichaptum sector
Trichaptum sprucei
Xeromphalina complex
tenuipes
Xylaria hypoxylon

43
Especie Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
2005
2006
2007
2008
2009
Melanoleuca yucatanensis
Phellinus fastuosus
Phellinus nilgheriensis
Phylacia globosa
Phylloporia chrysita
Pleurotus djamor
Polyporus arcularius
Polyporus
grammocephalus
Polyporus guianensis
Polyporus tricholoma
Pycnoporus sanguineus
Schizophyllum commune
Scleroderma
sinnamariense
Trametes elegans
Trametes maxima
Trametes pavonia
Trametes villosa
Tremella rubromaculata
Trichaptum sector
Trichaptum sprucei
Xeromphalina complex
tenuipes
Xylaria hypoxylon

44
2007 se presentó un declive: un total de 19 especies. El descenso en número de
especies se agudiza en 2008 y 2009,con apenas 2 y 6 especies,respectivamente.
Dicha disminución coincide con los años en que se presentaron meses de se-
vera sequía, como se muestra en la tabla 1.
En la gráfica 2 se observa que los meses con mayor número de especies
son los de octubre, con 20, y noviembre, con 18 especies. El análisis fenológico
de las especies estudiadas respecto del número de ejemplares recolectados por
mes (tabla 2) nos muestra que los meses con el mayor número de ejemplares
son, nuevamente, octubre y noviembre. En la gráfica 3, ejemplares por año, se
observa que 2006 es el año más rico en fructificaciones: 51 especímenes, y
corresponde al año en que se registró la mayor cantidad de meses con lluvia, de
acuerdo con la tabla 1.
Por otro lado, las especies que presentan un mayor número de fructifica-
ciones durante el tiempo de recolección fueron schizophyllum commune, con
una incidencia de seis veces en diferentes años y meses y con un total de 10
especímenes; le sigue Lentinus bertieri, con siete incidencias y ocho especíme-
nes; Trametes villosa, con seis incidencias y siete especímenes; Pycnoporus san-
guineus, con seis incidencias y seis especímenes; Leucocoprinus birnbaumii, con
cuatro incidencias y seis especímenes; Hexagonia hydnoides, con cinco ejempla-
res, y clathrus ruber con cuatro especímenes.
Finalmente, 29 de las especies estudiadas se encontraron exclusivamente
en un solo mes y en un solo año; 12 especies,dos veces,y seis especies tres veces
en todo el periodo de recolección del presente estudio.

45
Gráfica 2. Número de especies recolectadas por mes
Número
de
especies
ene feb mar abr may jun jul ago sept oct nov dic
25
20
15
10
5
0
Gráfica 3. Número de ejemplares por año
Número
de
ejemplares
2005 2006 2007 2008
60
50
40
30
20
10
0

47
Descripciones
En este apartado se ubican las descripciones de las 56 especies estudiadas, or-
denadas taxonómicamente, de acuerdo a la clasificación de Kirk et al. (2008) y
con los nombres de los autores para cada una de ellas. Por cada especie se
presenta una fotografía característica y son descritas macroscópicamente, con-
siderando de manera general características taxonómicas como forma, hábito,
tamaño (en milímetros), consistencia, color, tipo de himenóforo, contexto, tipo
de ornamentación, entre otras. De la misma forma se menciona el hábitat y, en
los casos que aplica, se menciona el tipo de pudrición que producen.
Asimismo, se hace una descripción microscópica, básicamente de las ca-
racterísticas de las esporas como forma, tamaño (expresado en micras y, en al-
gunos casos se presentan medidas entre paréntesis que denotan tamaños poco
frecuentes) y color.También se incluyen observaciones que corresponden a las
características que nos permiten reconocer a la especie descrita e inclusive
aquellas que nos ayudan a identificarla de otras.
Finalmente es importante mencionar que varias de las características ma-
croscópicas se encuentran detalladas en la información y figuras de las páginas
27 a 32.

48
Foto:
Araceli
Pompa
González
Glomus fulvum (Berk. & Broome) Trappe & Gerd.
Esporocarpo subgloboso a globoso, con algunos rizomorfos; de hábito gregario,
subterráneo, se desarrolla a 1-2 cm de profundidad en el suelo; consistencia carno-
sa, con un tamaño de 10-30 mm de diámetro, de color blanco en la base, el resto de
la superficie es de color amarillo-anaranjado con tintes naranja pardo y los rizomorfos
blanquecinos; superficie glabra. Su peridio es de blanco a beige, de menos de 1 mm
de grosor, carnoso; gleba blanquecina. Presenta un sabor ligeramente dulce.
Hábitat: Crece en el suelo y es hipogeo.
Datos microscópicos: Esporas subglobosas, de 64-100 x 48-80 µm, lisas, de pared
gruesa.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por sus fructificaciones subterráneas, su
coloración amarilla-anaranjada y el gran tamaño de sus esporas.

49
Foto:
Araceli
Pompa
González
Daldinia concentrica (Bolton) Ces. & De Not.
Ascocarpo hemisférico-globoso, de hábito gregario, consistencia carbonosa, con
un tamaño de 22-40 mm de diámetro, de color negruzco con tintes café obscuro. La
superficie presenta puntos que corresponden a los ostiolos de los peritecios. La car-
ne es completamente dura y presenta una coloración en anillos concéntricos interca-
lados de color plata y gris negruzco.
Hábitat: Crece sobre madera muerta.
Datos microscópicos: Esporas elípticas fusiformes, de 11-21.5 x 5.5-9.5 µm, de
color pardo obscuro a negro.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la zonación concéntrica de su carne
y la coloración obscura de la fructificación.

50
Foto:
Araceli
Pompa
González
Daldinia eschscholzii (Ehrenb.) Rehm
Ascocarpo hemisférico-subgloboso, de hábito gregario, consistencia carbonosa,
con un tamaño de 28-46 mm de diámetro, de color vináceo muy claro a púrpura muy
pálido. La carne es completamente dura y presenta zonación concéntrica de color
café negruzco en el fondo y blanquecinas hacia el borde, separadas por unas líneas
negras más obscuras.
Datos microscópicos: Esporas elípticas subfusiformes, de 11-15 x 5-6.5 µm, de
color pardo obscuro.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la coloración vinácea clara de la
fructificación y el tamaño de sus esporas, que la diferencian de D. concentrica.

51
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Phylacia globosa Lév.
Ascocarpo subgloboso, de hábito gregario a cespitoso, consistencia carbonosa-
quebradiza, con un tamaño de 1-3 mm de diámetro y de 2-3 mm de alto, de color
negro. Cuando está maduro, la parte apical se rompe dejando visible un hueco.
Datos microscópicos: Esporas elípticas, de 6-15 x 5-5.5 µm, lisas, moreno claras.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por sus ascocarpos subglobosos carbo-
nosos, frecuentemente abiertos en su porción apical al madurar.

52
Foto:
Araceli
Pompa
González
Xylaria hypoxylon (L.) Grev.
Ascocarpo filiforme a clavarioide con ramificaciones, de hábito gregario a cespitoso,
consistencia correosa, con un tamaño de 33-56 mm de largo, de color negruzco
hacia la base, color café obscuro hacia el ápice y blanco en el ápice.
Datos microscópicos: Esporas elípticas, de 12-16 x 5-6.5 µm, lisas, morenas, con
hendidura germinal ligeramente menor que la longitud de la espora.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por sus fructificaciones ramificadas con
la parte apical blanquecina.

53
Foto:
Araceli
Pompa
González
Leucocoprinus birnbaumii (Corda) Singer
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito solitario, consistencia carnosa. Píleo con
un tamaño de 10-33 mm de diámetro, cónico con el centro mamelonado cuando jo-
ven y convexo al madurar, de color amarillo azufre cuando joven y amarillo pálido
hasta blanquecino al madurar, superficie granulosa-escamosa; margen recto y es-
triado. Himenóforo laminar, concoloro al píleo, láminas libres, juntas, estrechas, con
el borde liso y con lamélulas. Anillo simple y súpero. Contexto amarillo pálido a blan-
quecino, de 1 mm de grosor, carnoso. Estípite central, de 15-38 x 2-3 mm, cilíndrico
y bulboso hacia la base, superficie pruinosa y concoloro al píleo.
Hábitat: Crece sobre humus, suelo, madera viva o muerta.
Datos microscópicos: Esporas ligeramente elipsoides, de 8-10 x 5-7 µm, hialinas,
de pared gruesa con poro germinal amplio.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la forma y color amarillo azufre del
basidiocarpo, así como por su ornamentación escamosa muy evidente en estado
joven.

54
Foto:
Araceli
Pompa
González
Coprinus lagopus (Fr.) Fr.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito solitario a disperso, consistencia carno-
sa. Píleo con un tamaño de 10-26 mm de diámetro, campanulado a plano-convexo,
de color gris acero, superficie sulcada; margen recto a levantado. Himenóforo lami-
nar, color gris obscuro; láminas adheridas, juntas, estrechas y con el borde liso.
Contexto concoloro al píleo, de 1 mm de grosor, compacto y fibroso. Estípite central,
cilíndrico, de 37-113 x 1-3 mm, de color blanco y de contexto fibroso.
Hábitat: Crece sobre humus.
Datos microscópicos: Esporas elípticas, de 7-12.8 µm, lisas, apiculadas, de color
moreno.
Observaciones: Esta especie se caracteriza porque el píleo en la madurez tiene una
superficie sulcada y las láminas se vuelven delicuescentes

55
Foto:
Araceli
Pompa
González
Marasmius crinis-equi F. Muell. ex Kalchbr.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario a cespitoso, consistencia carno-
sa. Píleo con un tamaño de 2-7 mm de diámetro, convexo, de color naranja obscuro
a naranja pálido, superficie glabra y hacia el margen, rimoso; margen recto. Hime-
nóforo laminar, color blanquecino naranja a naranja pálido y hasta naranja claro; lá-
minas adheridas, separadas, anchas y con el borde ligeramente crenulado. Contexto
de menos de 1 mm de grosor. Estípite central, filiforme de 30-45 x 1 mm, de color
tabaco.
Datos microscópicos: Esporas lagrimoides a fusoides, de 9-13 x 3.5-5 µm, lisas,
hialinas y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza macroscópicamente por el pequeño ta-
maño del basidiocarpo y el color naranja del píleo.

56
Foto:
Elvira
Aguirre
Acosta
Marasmius pulcherripes Peck
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario a cespitoso, consistencia carno-
sa. Píleo con un tamaño de 4-15 mm de diámetro, convexo a plano convexo, de
color cereza a vináceo, superficie glabra y hacia el margen rimoso; margen recto.
Himenóforo laminar, color blanquecino; láminas adheridas, separadas, anchas y
con el borde liso. Contexto de menos de 1 mm de grosor. Estípite central de 30-40
x 1 mm, de color negro.
Datos microscópicos: Esporas angostamente curvado-clavadas, en forma de pepi-
ta, de 11-15.2 x 2.8-4.3 µm.
Observaciones: Esta especie se caracteriza macroscópicamente por la coloración
cereza a vinácea del píleo y el reducido tamaño del basidiocarpo.

57
Foto:
Araceli
Pompa
González
Xeromphalina complex tenuipes
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario, consistencia carnosa. Píleo con
un tamaño de 7-35 mm de diámetro, plano a plano-convexo con el centro umbona-
do, de color naranja, superficie ligeramente fibrilosa; margen recto. Himenóforo
laminar, color amarillo pálido; láminas adheridas, con lamélulas, juntas, estrechas y
con el borde liso. Contexto amarillento a naranja, de 2 mm de grosor, compacto sim-
ple y carnoso. Estípite central, de 30-90 x 2-4 mm, concoloro al píleo, densamente
velutinoso y de contexto fibroso.
Datos microscópicos: Esporas elípticas, de 6.5-7.6 x 3.5-4.5 µm, hialinas, amiloides
y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por el color del basidiocarpo y por su
estípite totalmente aterciopelado, el cual se conserva en especímenes secos.

58
Foto:
Araceli
Pompa
González
Cyathus colensoi Berk.
Basidiocarpo en forma de copa, de hábito gregario, consistencia correosa, con un
tamaño de 3-7 x 3-10 mm, la superficie externa de color café obscuro, la cual se
encuentra cubierta de setas (pelos gruesos) de color café-rojizos; cuando joven, las
copas en su porción superior se encuentran tapadas por una delgada membrana
blanquecina, que al madurar se rompe dejando visible una cavidad blanquecina, ra-
dialmente estriada, en la que se encuentran regularmente siete peridiolos de color
gris acero.
Datos microscópicos: Las esporas varían en forma y tamaño, de elipsoides (10-12 x
8-10 µm) a subglobosas (9-12 µm de diámetro) y hialinas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por el reducido tamaño de sus esporas.
Una de sus especies afines, Cyathus olla, posee esporas más pequeñas, de 10-14 x
7-8 µm.

59
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Pleurotus djamor (Rumph. ex Fr.) Boedijn
Basidiocarpo anual, lateralmente subestipitado, de hábito gregario a cespitoso e
imbricado, consistencia carnosa. Píleo con un tamaño de 35-68mm de ancho, di-
midiado a flabeliforme, de color blanco y al madurar de color beige, superficie gla-
bra; margen recto a ligeramente decurvado y con el borde lobulado. Himenóforo
laminar, color blanquecino; láminas decurrentes, juntas, delgadas y con el borde liso.
Contexto concoloro al himenóforo, de 1-3 mm de grosor. Estípite lateral, poco evi-
dente, concoloro al píleo.
Hábitat: Crece sobre madera muerta y produce pudrición blanca.
Datos microscópicos: Esporas cilíndricas a elipsoides, de 6-7.5 x 2.5-3 µm, lisas,
hialinas y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza macroscópicamente por su cuerpo fruc-
tífero en forma de abanico color blanco.

60
Foto:
Araceli
Pompa
González
Schizophyllum commune Fr.
Basidiocarpo anual, sésil a subestipitado, de hábito cespitoso y generalmente imbri-
cado, consistencia correosa. Píleo con un tamaño de 2-50 mm de diámetro, flabe-
liforme a petaloide, de color gris claro a obscuro con tintes de color rosa, superficie
densamente velutinosa; margen enrollado, con el borde lobulado. Himenóforo lami-
nar, color gris a crema; láminas divididas longitudinalmente, con lamélulas, juntas,
estrechas y con el borde liso. Contexto concoloro al píleo, hasta 1 mm de grosor,
correoso.
Datos microscópicos: Esporas subcilíndricas, de, 3-4 x 1-2 µm, lisas y hialinas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por el píleo flabeliforme, su ornamenta-
ción densamente velutinosa y color grisáceo, así como por sus láminas divididas
longitudinalmente.

61
Foto:
Araceli
Pompa
González
Melanoleuca yucatanensis Guzmán & Bon
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario, consistencia carnosa. Píleo con
un tamaño de 20-30 mm de diámetro, plano-convexo, de color café pardo, superfi-
cie glabra; margen recto a ligeramente decurvado. Himenóforo laminar, color blan-
co a crema; láminas adheridas, muy juntas, anchas, con el borde crenulado y con
lamélulas. Contexto de 1-4 mm de grosor, compacto carnoso, con un sabor ligero a
sangre. Estípite central, de 32-40 x 10-15 mm, que se ensancha hacia el ápice con-
coloro al píleo.
Datos microscópicos: Esporas subglobosas, de 6-7.5 (8) x 4.5- 6 (7) µm, muy verru-
cosas, hialinas, amiloides y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la forma del basidiocarpo y contras-
te de color entre el píleo y las láminas, así como por la presencia de pleurocistidios.

62
Foto:
Araceli
Pompa
González
Auricularia fuscosuccinea (Mont.) Henn.
Basidiocarpo subestipitado, de hábito gregario a cespitoso, consistencia cartilagi-
nosa, con un tamaño de 3-23 mm de diámetro. Píleo discoide hasta con forma de
oreja, de color café con tintes anaranjados a café obscuro, aclarándose hacia la
base; superficie vilosa a velutinosa, los pelos presentan un color blanquecino; mar-
gen recto. Himenóforo liso o venuloso, color al principio rosado a café rojizo; al se-
carse más obscuro. Carne de 1-2 mm de grosor.
Datos microscópicos: Hifas con fíbulas y esporas curvado-cilíndricas, de 11-13.5 x
4-5 µm, lisas y hialinas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por sus basidiocarpos suaves y de color
púrpura.

63
Foto:
Araceli
Pompa
González
Auricularia polytricha (Mont.) Sacc.
Basidiocarpo sésil, lateralmente subestipitado, de hábito cespitoso, consistencia
gelatinosa-cartilaginosa, con un tamaño de 10-57 mm de ancho. Píleo en forma de
disco cuando joven y de oreja al madurar, de color externo con fondo púrpura y tintes
café, superficie velutinosa-vilosa y hacia el borde los pelos sobresalen; margen on-
dulado. Himenóforo liso, color negruzco. Carne de menos de 1 mm de grosor, con-
colora al himenóforo, con sabor a grenetina húmeda. Contexto amarillento a naranja,
de menos de 1 mm de grosor, compacto simple y delgado. Estípite lateral, poco
evidente, apenas de 3-3.5 x 5-7 mm, concoloro al contexto, velutinoso y ampliamen-
te adherido al sustrato.
Datos microscópicos: Hifas con fíbulas y esporas curvado-cilíndricas, de 11.5-15 x
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la forma de oreja de sus basidiocar-
pos maduros y su color púrpura con tintes color café y de superficie velutinosa a vilosa.

64
Foto:
Araceli
Pompa
González
Scleroderma sinnamariense Mont.
Esporocarpo globoso, con algunos rizomorfos; de hábito gregario, subterráneo de-
sarrollándose aproximadamente a 1 cm de profundidad en el suelo; consistencia
carnosa, con un tamaño de 15-18 mm de diámetro, de color amarillo pardo y blanco
hacia la base; los rizomorfos son de color blanquecinos; superficie glabra. El con-
texto o endoperidio es de color blanco a café-grisáceo obscuro, de menos de 1 mm
de grosor, carnoso; gleba de color gris obscuro.
Hábitat: Crece en el suelo y es hipogeo.
Datos microscópicos: Esporas globosas, de 7-10 µm de diámetro, equinuladas de
color pardo.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por sus fructificaciones subterráneas, su
coloración y el tamaño y ornamentación equinulada de sus esporas.

65
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Aurificaria luteoumbrina (Romell) D. A. Reid
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito simple a imbricado, consistencia cor-
chosa, con un tamaño de 35-110 x 30-70 mm. Píleo dimidiado flabeliforme aplana-
do, de color amarillo naranja, amarillo rojizo, cuando joven, y cambia de café amarillo
a café canela hasta negruzco al madurar, superficie aterciopelada a tomentosa en los
ejemplares jóvenes y glabro al madurar; margen agudo de color amarillo y estéril.
Himenóforo poroide, color café claro, café dorado, café amarillento hasta café; po-
ros 6-8 por mm, de forma circular a angular; tubos concoloros al himenóforo de 5
mm de profundidad. Contexto zonado de color amarillo brillante, amarillo naranja y
amarillo rojizo, hasta 10 mm de grosor, simple y fibroso.
Hábitat: Crece sobre madera muerta y ocasiona pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal monomítico, esporas subglobosas a amplia-
mente elipsoides, de 4.5-6 x 3.5-4.4 µm, lisas, de color café amarillentas en agua y
café oliváceas en KOH, inamiloides de paredes ligeramente engrosadas (hasta 0.5 µm
de grosor).
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la coloración amarillo brillante del
basidiocarpo cuando joven y su gradación a obscuro al madurar, así como por el ta-
maño pequeño de los poros y de las esporas, lo que la diferencia fácilmente de otras
especies.

66
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Fulvifomes sanjanii (Lloyd) Bondartseva & S. Herrera
Basidiocarpo perenne, pileado-sésil, de hábito solitario, de convexo a ungulado, de
consistencia leñosa con un tamaño de 40 x 30 x 25 mm. Píleo semicircular a dimi-
diado, de color café obscuro a negro, con una costra de 0.5 mm de grosor, superfi-
cie glabra, lisa a rugosa, zonada, con surcos concéntricos; margen obtuso, fértil, de
color café amarillento. Himenóforo poroide, de color café amarillento a color café;
poros circulares a angulares, de 1-2 por mm, tubos estratificados, hasta 3 mm de
profundidad, concoloros al himenóforo. Contexto de color marrón amarillento, azona-
do, de hasta 20 mm de grosor, simple, con una línea negra en la superficie del píleo.
Hábitat: Crece sobre madera viva o muerta y causa pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas ampliamente elipsoides a elipsoi-
des, de 4.8-5.6 x 4-4.8 µm, lisas, de color café rojizo, de pared gruesa.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por tener un basidiocarpo ungulado,
zonado y surcado con una costra negra y delgada y poros muy grandes. Se distingue
de F. rimosus y F. robiniae en que éstas tienen los poros más pequeños.

67
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Fuscoporia gilva (Schwein.) T. Wagner & M. Fisch.
Basidiocarpo anual a perenne, sésil, de hábito gregario a imbricado, consistencia
leñosa, con un tamaño de 30-50 mm de diámetro. Píleo en forma de abanico, de
color marrón amarillento obscuro hasta café obscuro, superficie con anillos concén-
tricos leñosos, escalonados en general fibriloso, aunque existen algunas zonas donde
la ornamentación se hace más densa; margen recto. Himenóforo poroide, color café
a café obscuro; poros circulares, de 8 a 10 por mm; tubos concoloros al himenóforo
de 1-5 mm de profundidad. Contexto concoloro al píleo, de hasta 9 mm de grosor,
fibroso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas elipsoides a ovoides, de 3-4 x
Observaciones: Se caracteriza porque la parte superior del píleo tiene un tinte rojizo,
la capa de poros es café púrpura y presenta abundantes setas y esporas angosta-
mente elipsoides.

68
Foto:
Araceli
Pompa
González
Inonotus linteus (Berk. & M.A. Curtis) Teixeira
Basidiocarpo perenne, de hábito solitario o disperso, consistencia leñosa, con un
tamaño de 117-125 mm de diámetro. Píleo ungulado, de color café negruzco, su-
perficie velutinosa, agrietada en zonas concéntricas; margen grueso, entero y esca-
broso. Himenóforo poroide, de color amarillo obscuro a pardo; poros circulares, 7
por mm; tubos de color café mate, de 4-5 mm de profundidad. Contexto leñoso, de
color pardo amarillento de hasta 20 mm de grosor.
Hábitat: Crece sobre madera viva y causa pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico y esporas globosas a subglobosas, de
4-5.5 X 3.5-5 µm, lisas, de color café amarillento.
Observaciones: Esta especie se reconoce fácilmente por sus esporas ovoides a
subglobosas, de color café dorado pálido y abundantes setas en el himenóforo.

69
Foto:
Araceli
Pompa
González
Inonotus porrectus Murrill
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito solitario, aunque puede ser imbricado,
aplanado, de consistencia corchosa, con un tamaño de 90 x 40 x 30 mm. Píleo
semicircular a dimidiado, con una base constreñida, de color café amarillo dorado a
café rojizo y negro hacia la base, superficie ligeramente tomentosa, zonada, lisa a
rugosa; margen obtuso, estéril, aterciopelado, de color amarillo brillante a amarillo
dorado, con gotas color ambar. Himenóforo poroide, de color café rojizo obscuro a
café obscuro; poros circulares a angulares, de 5-6(-8) por mm, tubos concoloros al
himenóforo, de 6-8 mm de profundidad. Contexto de color café dorado, lustroso,
zonado, de hasta 20 mm de grosor, simple y fibroso.
Hábitat: Crece sobre madera viva o muerta y causa pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal monomítico y esporas ovoides a ampliamente
elipsoides, de 4.8-6.4 x 4.0-4.8 µm, lisas, de color café amarillento a café rojizo y de
pared gruesa.
Observaciones: Esta especie se distingue por la ausencia de setas, por el color y
tamaño de sus esporas, el tamaño de los poros, los colores amarillo brillante a dorado
del contexto y por su himenóforo más obscuro.

70
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Phellinus fastuosus (Lév.) Ryvarden
Basidiocarpo perenne, sésil, de hábito solitario a imbricado, consistencia leñosa,
con un tamaño de 30-55 x 20-35 mm. Píleo aplanado a ungulado, de color café
chocolate, superficie escabrosa en anillos concéntricos; margen recto. Himenóforo
poroide, color café canela; poros circulares, de 7 a 8 por mm; tubos concoloros al
himenóforo de 1-3 mm de profundidad y estratificados. Contexto de color pardo-
amarillento, de 10 mm de grosor, compacto y leñoso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas elipsoides a subglobosas, de
4.5-6 x 4-5.5 µm, lisas y de color pardo.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por su cuerpo fructífero aplanado a un-
gulado y zonado concéntricamente, de color canela aterciopelado o color café óxido,
después glabro de color obscuro, con una costra distintiva agrietada o rimosa.

71
Foto:
Araceli
Pompa
González
Phellinus nilgheriensis (Mont.) G. Cunn.
Basidiocarpo perenne, sésil, de hábito solitario o disperso, consistencia leñosa,
con un tamaño de 113-163 x 96-120 x 32-45 mm. Píleo dimidiado, de color café
negruzco, superficie fuertemente escabrosa en anillos concéntricos; margen recto.
Himenóforo poroide, color café ocre; poros circulares, (5-)7-10 por mm; tubos de
color café obscuro de 1-3 mm de profundidad y estratificados, con más de 4 mm de
ancho en la base. Contexto color marrón obscuro, de 25-38 mm de grosor, compac-
to y leñoso.
Hábitat: Crece sobre madera viva o muerta y produce pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas subglobosas, de 4-5 x 4-4.5
µm, lisas, de color amarillo de pared gruesa.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por presentar una línea negra en el con-
texto, y por su basidiocarpo aplanado que lo distingue de P. fastuosus.

72
Foto:
Araceli
Pompa
González
Phylloporia chrysita (Berk.) Ryvarden
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito solitario aunque puede ser imbricado,
de convexo a ungulado, de consistencia corchosa, con un tamaño de 70 x 35 x 20
mm. Píleo semicircular a dimidiado, de color café amarillento a café rojizo, con tonos
obscuros hacia la base, superficie tomentosa, hasta 15 mm de grosor, azonada o
zonada con surcos angostos; margen obtuso, estéril, aterciopelado, de color amarillo
a café amarillento. Himenóforo poroide, de color café amarillento; poros circulares,
de 7-9 por mm, tubos de hasta 1 mm de profundidad, concoloros al himenóforo.
Contexto de color café amarillento, azonado, de hasta 3 mm de grosor, dúplex, con
una línea negra que lo separa del tomento.
Hábitat: Crece sobre madera viva y causa pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal monomítico y esporas subglobosas a globosas,
de 3-4 x 2.5-3 µm, lisas, de color amarillo pálido, con paredes ligeramente engrosadas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por tener el basidioma fuertemente zo-
nado, surcado y con poros muy pequeños y el contexto con una línea negra. Se dis-
tingue de Ph. frutica y Ph. weberiana, porque ambas tienen los poros más grandes.

73
Foto:
Araceli
Pompa
González
Clathrus ruber P. Micheli ex Pers.
Basidiocarpo al principio es una esfera globosa blanca con marcas hexagonales en
toda la superficie, al madurar es globoso en forma de red alveolada; la parte inferior
presenta rizomorfos evidentes; de hábito solitario, consistencia gelatinosa, con un
tamaño, cuando maduro, de 60-73 x 76-115 mm, de color rojo brillante en la red y la
base blanca. Carne de 6 mm de grosor y con un olor característico a carne en des-
composición.
Datos microscópicos: Esporas elipsoides, de 4-6 x 1.5-2 µm, lisas y de color café-
oliváceo.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la coloración rojo brillante de su red
y el color de sus esporas café-oliváceo.

74
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Fomitopsis feei (Fr.) Kreisel
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, ocasionalmente con una constricción a manera de
estípite, de hábito gregario, consistencia correosa a corchosa, con un tamaño de
25-90 x 20-65 x 5-10 mm. Píleo dimidiado con disposición forma de repisa, zonado,
ligeramente surcado, de color naranja brillante a naranja grisáceo, con manchas co-
lor café rojo caoba, rojo sangre oxidado a café granate, superficie glabra; margen
entero, agudo y estéril; todo el basidiocarpo presenta un ligero tinte lila, a manera de
sombra. Himenóforo poroide, de color naranja pálido a naranja brillante con tonos
rojo pastel; poros de 3-6(-9) por mm, de forma circular a angular, regulares, de bordes
delgados y lisos a ondulados; tubos concoloros al himenóforo, hasta de 2 mm de
profundidad, no estratificados. Contexto del mismo color que los tubos, hasta de 1
mm de grosor, simple, fibroso, de sabor terroso y olor ligeramente fungoide.
Hábitat: Sobre madera muerta y ocasiona pudrición al café.
Reacciones macroquímicas: En KOH al 5% cambia a café púrpura con negro púr-
pura en todas sus partes.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas elipsoides, de 4.8-6.4 x 2.4
µm, lisas, hialinas.
Observaciones: Esta especie se singulariza por presentar basidiocarpos con tintes
rosados a lilas; himenóforo con poros pequeños, circulares a angulares. Una especie
afín es F. cupreo-rosea (Berk.) Carranza & Gilbn., la cual se diferencia por los poros de
mayor tamaño (2-3 por mm), angulares a dedaloides.

75
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Ganoderma flaviporum (Murrill) Sacc. & Trotter
Basidiocarpo anual a perenne, pileado-estipitado, lateral o excéntricamente estipitado, de há-
bito solitario o cespitoso, consistencia leñosa, con un tamaño de 12-97 mm de diámetro. Píleo
convexo a plano-convexo, de color café pálido a café obscuro, supeficie velutinosa cuando
joven, glabra al madurar, concéntricamente zonado, de colores café a café obscuro, con la edad
se torna café grisáceo a café obscuro, casi negro, concéntricamente sulcado; margen delgado
a grueso, decurvado, amarillo blanquecino cuando joven y café claro en la madurez. Himenófo-
ro poroide, de color crema, con tonos naranja pálido o naranja pardo; poros de 6-7 por mm,
circulares, de paredes gruesas; tubos concoloros al himenóforo, de 2-3 y hasta 6 mm de pro-
fundidad, estratificados, alternándose con capas de contexto o en una capa. Contexto de color
naranja pálido a naranja grisáceo, de 1 mm de grosor, simple, de corchoso a leñoso, fibroso,
compacto y duro, con sabor a jabón y olor ligeramente tostado. Estípite lateral, de 31-82 x 3-13
mm, con una porción subterránea, engrosándose hacia la base, frecuentemente con restos de
la raíz hospedera, de color café, velutinoso a glabro con la edad.
Hábitat: Crece sobre madera muerta y humus.
Reacciones macroquímicas: Todas las partes del basidiocarpo se tornan café pálido al contacto
con KOH al 5%, después se decoloran lentamente y presentan una falsa reacción xantocroica.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas ovoides a elípticas, truncadas, de
(9.5)10.5-12(13) x 7.0-8.0 µm, con doble pared, exosporio liso y endosporio subreticulado o con
crestas, amarillentas a color café pálido.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la ornamentación subreticulada y con crestas
horizontales de sus esporas. Una especie afín es G. coffeatum, que se distingue por la ornamen-
tación de sus esporas con crestas longitudinales.

76
Foto:
Araceli
Pompa
González
Gloeophyllum striatum (Sw.) Murrill
Basidiocarpo anual, sésil imbricado, efuso reflejado hasta resupinado, de hábito
gregario a cespitoso, consistencia correosa-corchosa, con un tamaño de 32-75 x
25-32 mm. Píleo en forma de abanico al madurar, de color café canela, ocre y blan-
quecino hacia el borde, superficie con algunas zonas ligeramente tomentosas; mar-
gen entero. Himenóforo laminar, color canela; láminas subdecurrentes, separadas,
estrechas y con el borde liso, se presentan láminas (algunas se bifurcan) y lamélulas.
Contexto concoloro al píleo, de 2-5 mm de grosor, correoso-corchoso.
Hábitat: Crece sobre madera muerta y ocasiona pudrición café.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas subcilíndricas, de 6-9 x 2.5-
4.5 µm, lisas y hialinas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por su himenóforo laminar y el tamaño
de sus esporas.

77
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Flavodon flavus (KIotzsch) Ryvarden
Basidiocarpo anual, sésil, de hábito cespitoso, consistencia leñosa a flexible, con
un tamaño 25-60 mm de diámetro. Píleo efuso reflejado, de color amarillo, cuando
maduro de pálido grisáceo a pálido bronceado, superficie viloso-tomentoso a subto-
mentoso, concéntricamente sulcado; margen obtuso a subanguloso de color amari-
llo limón. Himenóforo al principio poroide, después dentado, de más de 5 mm de
longitud, de color amarillo mostaza; poros de 0.3-0.8 (-1) mm de ancho, angulosos,
los cuales son más notorios hacia el borde del margen, pues hacia el centro se trans-
forman en dientes de 2-4 mm de largo; tubos concoloros al himenóforo. Contexto de
color amarillo a leonado, de 0.5-2 mm de grosor, de consistencia flexible.
Reacciones macroquímicas: El basidiocarpo se torna de color rojizo a café con
KOH.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico con esporas elipsoides, de 5.5-6.5 x
3-4 µm, lisas, hialinas a color blanco en la masa, de paredes finas, no dextrinoides.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por su color amarillento y por los fila-
mentos amarillo brillantes localizados por debajo del basidiocarpo, así como el hime-
nóforo aculeado. Los ejemplares jóvenes pueden ser confundidos morfológicamente
con Oxyporus cervinogilvus (Jungh.) Ryvarden, el cual presenta un sistema hifal mo-
nomítico.

78
Foto:
Araceli
Pompa
González
Antrodiella versicutis (Berk. & M.A. Curtis) Gilb. & Ryvarden
Basidiocarpo anual, pileado-subestipitado, de hábito gregario, de consistencia co-
rreosa, con un tamaño de 32-53 mm de diámetro. Píleo en forma de abanico, dimi-
diado, de color beige obscuro, superficie con una fina cutícula fibrilosa de tintes
ocráceos; margen ondulado. Himenóforo poroide, de color beige claro; poros 8-10
por mm, circulares a ligeramente angulares; tubos de más de 2 mm de profundidad.
Contexto concoloro al himenóforo, de 1 mm de grosor, correoso, simple.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas cilíndricas a alantoides, de
4-4.5 (5) x 1-1.5 µm, lisas, hialinas.
Observaciones: Se caracteriza por presentar esporas alantoides y poros muy pe-
queños.

79
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Coriolopsis brunneo-leuca (Berk.) Ryvarden
Basidiocarpo anual, efuso-reflejo a imbricado, de hábito gregario, consistencia co-
rreosa, con un tamaño de 17-53 x 26-100 x 2-3 mm. Píleo ampliamente adherido,
convexo, zonado, de color gris café, amarillo rubio a anaranjado café de la base al
borde, superficie aterciopelada a vilosa; margen agudo, ligeramente ondulado esté-
ril. Himenóforo poroide, de color naranja café a café claro, con el borde estéril de
color naranja claro; poros de 2-3 por mm, de forma angular; tubos concoloros al hi-
menóforo, de 1 a 2 mm de profundidad. Contexto del mismo color que el himenóforo,
hasta 1 mm de grosor, simple y flocoso.
Hábitat: Crece sobre madera muerta, causando pudrición blanca.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, basidiosporas cilíndricas a alantoides,
lisas, de 10.6-12.8 x 3.2-4.0 µm hialinas e inamiloides.
Observaciones: Esta especie se reconoce claramente por su píleo delgado estrecho
y flexible, la forma de los poros, que usualmente son decurrentes y se muestran alar-
gados. En contraste con muchas otras especies de Coriolopsis, es frecuente encon-
trar basidiomas fértiles.

80
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Coriolopsis byrsina (Mont.) Ryvarden
Basidiocarpo anual, efuso-reflejo a resupinado, fácilmente separable, imbricado, de
hábito disperso a gregario, consistencia correosa, con un tamaño de 60-170 x 30-
85 x 1-2.5 mm. Píleo circular a semicircular, de color amarillo linóleo a color beige,
con tonalidades de color miel a café pálido, superficie vilosa; margen agudo, ondu-
lado a ligeramente crenado, pubescente y estéril. Himenóforo poroide de color na-
ranja claro a color ocre claro; poros 3-6 por mm, circulares, de bordes gruesos y li-
sos; tubos concoloros al himenóforo, de hasta de 0.5 mm de profundidad, no
estratificados. Contexto color naranja grisáceo, dorado rojizo o café naranja, hasta
de 0.5 mm de grosor, simple, fibroso y correoso.
Reacciones macroquímicas: En KOH al 5%, el píleo y el contexto se tornan negros
y después de color café, mientras que el himenóforo cambia a café obscuro y poste-
riormente tiende a aclararse, en contacto con la misma solución.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas oblongas a cilíndricas, lisas,
de 7.2-12 X 4.2-5.6 µm, hialinas, inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: La especie se identifica por la consistencia suave y delgada de los
basidiocarpos y lo poco profundo de sus tubos; microscópicamente presenta espo-
ras más anchas que las especies restantes de Coriolopsis. Una especie afín es C.
brunneo-leuca (Berk.) Ryvarden, que presenta basidiocarpos similares, distinguibles
macroscópicamente por el tamaño de sus poros y la profundidad de los tubos.

81
Foto:
Araceli
Pompa
González
Coriolopsis polyzona (Pers.) Ryvarden
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito gregario, consistencia correosa, con
un tamaño de 50-110 x 45-65 x 8-12 mm. Píleo dimidiado, de color dorado a ama-
rillo mantequilla, superficie tomentosa de color ocre claro, sulcado; margen agudo,
ondulado y estéril. Himenóforo poroide, de color crema a ocre claro; poros 2-3 por
mm, circulares a angulares, irregulares, con bordes medianos y lisos a ligeramente
ondulados; tubos concoloros al himenóforo, de 2 mm de profundidad, no estratifica-
dos. Contexto crema a amarillo pálido, hasta de 10 mm de grosor, fibroso y esponjo-
so, con una capa café obscuro bajo el tomento y con un sabor ligeramente amargo.
Reacciones macroquímicas: El píleo y el contexto cambian a color café y el hime-
nóforo cambia a sepia en presencia de KOH al 5%; posteriormente, todas las partes
tienden a aclararse.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas oblongas a ligeramente elip-
soides, de 4.8-6.4 x 2.4-3.2 µm, lisas, hialinas, inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie puede ser confundida con Trametes hirsuta (Wulfen) Pilát,
aunque las esporas de esta última son más angostas (de 1.5-2.5 µm de ancho) (Ryvar-
den y Johansen 1980). Macroscópicamente, es parecida a Trametes maxima, pero se
distingue porque C. polyzona presenta colores coriáceos e himenóforo con poros de
bordes lisos, que contrastan con los colores amarillentos y poros de bordes dentados de
T. maxima.

82
Foto:
Araceli
Pompa
González
Earliella scabrosa (Pers.) Gilb. & Ryvarden
Basidiocarpo pileado-sésil, efuso-reflejo a resupinado, de hábito disperso a gregario, de
consistencia corchosa, con un tamaño de 33-116 x 42-60 x 2-5 mm. Píleo semicircular,
con una cutícula dura y de color rojizo a vino cerca de la base, el resto del píleo es blanco
amarillento, beige claro o amarillo mantequilla, cambia a naranja grisáceo al tocarlo; su-
perficie glabra a velutinosa, zonado y rugoso; margen obtuso, irregularmente ondulado y
estéril. Himenóforo poroide de color crema a amarillo mantequilla; poros 1-2 por mm, de
forma variada, desde circular, pasando por angular, hasta laberintiforme en algunas partes,
bordes medianamente gruesos, lisos o dentados; tubos del mismo color que el himenófo-
ro de hasta 2 mm de profundidad, no estratificados, en zonas decurrentes se observan
escalonados. Contexto amarillo pálido a beige, de 1-3 mm de grosor, flocoso, simple, de
olor fungoide desgradable y sabor ligeramente picante.
Reacciones macroquímicas: En KOH al 5%, la cutícula cambia a negro; el resto del píleo,
el himenóforo y el contexto cambian a color café claro.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, basidiosporas cilíndricas, de 7-10.5 x 3-4
µm, lisas, hialinas, inamiloides, de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza macroscópicamente por la cutícula rojiza que
se extiende desde la base del píleo, y por los poros relativamente grandes, frecuentemen-
te laberintiformes en las zonas resupinadas del basidiocarpo. Una especie similar, Fomite-
lla supina (Swartz.: Fr.) Murr., difiere en el color del himenóforo, contexto y tubos (café
púpura a gris humo el primero y café obscuro las estructuras restantes), de acuerdo con
Ryvarden y Johansen (1980) y Gilbertson y Ryvarden (1986).

83
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Hexagonia hydnoides (Sw.) M. Fidalgo
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito gregario, consistencia correosa a cor-
chosa, con un tamaño de 40-120 x 40-60 x 5-10 mm. Píleo dimidado, en forma de
abanico, plano, de color café obscuro a negro; superficie híspida, con pelos rígidos
hasta de 5 mm de longitud, zonado, café obscuro a negro, con algunas zonas púrpu-
ra negro; margen agudo, ondulado y estéril. Himenóforo poroide, de color café cla-
ro; poros 3-6 por mm, circulares, de bordes gruesos y lisos u ondulados; tubos café
gris claro, hasta de 3 mm de profundidad, no estratificados. Contexto café claro, de
1.5- 3 mm de grosor, simple y fibroso.
Reacciones macroquímicas: El himenóforo cambia a café o café grisáceo en pre-
sencia de KOH al 5%.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas elipsoides, de 9.6 x 4 µm (en
estado inmaduro de 3.6-4.8 x 2.8-3.6 µm), lisas, hialinas, inamiloides y de pared del-
gada.
Observaciones: La especie se caracteriza por la ornamentación híspida de sus basi-
diocarpos, la cual consiste en pelos largos, rígidos y negros, así como por sus poros
pequeños de bordes gruesos.

84
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Hexagonia variegata Berk.
Basidiocarpo anual, pileado-sésil a efuso reflejado, de hábito gregario a imbricado,
consistencia correosa, con un tamaño de 60-110 x 27-65 x 1-2 mm. Píleo dimidiado
en forma de abanico o flabeliforme, de color café chocolate hacia el centro y hacia el
margen café negruzco, con zonas concéntricas más claras, superficie velutinosa;
margen delgado y ondulado. Himenóforo poroide de color café claro a beige pardo;
poros 2-4 por mm, hexagonales hacia el centro y circulares hacia el margen; tubos
café chocolate, poco profundos de hasta 1 mm de profundidad. Contexto café cho-
colate, de 1 mm de grosor y correoso.
Reacciones macroquímicas: El basidiocarpo se obscurece con KOH.
Datos microscópicos: Sistema hifal trimítico, esporas cilíndricas, de 9-14 x 4.5-5.5
µm, lisas, hialinas, inamiloides, de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por su basidiocarpo delgado, flexible y
fuertemente zonado, de color café obscuro.

85
Foto:
Araceli
Pompa
González
Lentinus badius (Berk.) Berk.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito solitario, consistencia correosa. Píleo
con un tamaño de 35- 60 mm de diámetro, turbinado cuando maduro, de color café
claro en el fondo, superficie hirsuta, los pelos de color café marrón; margen enrolla-
do. Himenóforo laminar, color canela; láminas decurrentes, juntas, estrechas y con
el borde liso. Contexto concoloro al píleo, de 1 mm de grosor, correoso. Estípite ci-
líndrico, central, de 90 x 2 mm, concoloro al píleo, velutinoso y correoso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas oblongo-cilíndricas, de 4.7-
6.5 x 2-3 µm, lisas y blancas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la forma turbinada del píleo al ma-
durar, por la superficie hirsuta del mismo y por sus láminas bifurcadas. Microscópica-
mente se reconoce por abundantes clavijas hifales. Una especie similar es L. poly-
chrous, sin embargo esta especie tiene una ornamentación escuarrosa y las esporas
son de mayor tamaño, 6-9.5 x 3-3.7 µm

86
Foto:
Araceli
Pompa
González
Lentinus bertieri (Fr.) Fr.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario, consistencia correosa. Píleo
con un tamaño de 10-25 mm de diámetro, plano-convexo con el centro umbilicado,
de color café dorado a café obscuro, superficie hirsuta, los pelos de color café obs-
curo; margen incurvado a enrollado. Himenóforo laminar, color beige a marfil; lámi-
nas subdecurrentes, juntas, estrechas y con el borde crenulado. Contexto concoloro
al píleo, delgado, de hasta 1 mm de grosor, correoso. Estípite cilíndrico central, de
14-55 x 1-2 mm, concoloro al píleo, fibriloso y correoso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas angostamente cilíndricas, rec-
tas o curvadas, de 5.5-7 x 1.8- 2.7 µm, lisas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por la forma del basidiocarpo cuyo píleo
es glabrescente con un margen enrollado, láminas abundantes y, microscópicamen-
te, presenta abundantes clavijas hifales. Se separa de L. crinitus (L.) Fr. por presentar
los basidiomas más obscuros.

87
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Lentinus velutinus Fr.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito solitario, consistencia correosa. Píleo
con un tamaño de 40 mm de diámetro, turbinado cuando maduro, de color café
obscuro, superficie vilosa, el color de los pelos es café pardo obscuro; margen in-
curvado. Himenóforo laminar, color café claro; láminas decurrentes, muy juntas,
anchas y con el borde liso. Contexto de color blanco, de más 1 mm de grosor, co-
rreoso. Estípite cilíndrico, central, de 75 x 4 mm, concoloro al píleo, velutinoso y co-
rreoso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas oblongo-cilíndricas, de 5-7 x
3-3.7 µm, lisas.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por su píleo velutinoso y por la presen-
cia de un seudosclerocio que se encuentra inmerso en el sustrato.

88
Foto:
Araceli
Pompa
González
Polyporus arcularius (Batsch) Fr.
Basidiocarpo anual, pileado-estipitado, de hábito solitario o gregario, consistencia
correosa-cartilaginosa. Píleo con un tamaño de 3-22 mm de diámetro, circular de
convexo a plano con el centro ligeramente deprimido, de color paja a café obscuro,
superficie glabra a escuamulosa; margen usualmente ciliado, agudo, estéril en la
parte inferior. Himenóforo poroide, de color crema a café amarillento; poros 1-2 por
mm, hexagonales arreglados radialmente y ligeramente decurrentes al estípite; tubos
concoloros al himenóforo arriba de 1.5 mm de profundidad. Contexto de color blan-
co a café amarillento, de hasta 1 mm de grosor, compacto. Estípite central de hasta
10-27 mm de longitud y 1-4 mm de ancho, concoloro al píleo y glabro.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas cilíndricas, rectas a ligeramente
curvadas, de 7-9 x 2.5-3 µm, lisas, hialinas en KOH, inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: Los poros hexagonales grandes y alargados radialmente, junto con
su margen ciliado hacen a esta especie fácil de identificar. P. ciliatus es una especie
similar cuyos poros y esporas son más pequeños.

89
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Polyporus grammocephalus Berk.
Basidiocarpo anual, pileado-sésil, de hábito solitario, consistencia carnosa, con un
tamaño de 60-125 mm de ancho. Píleo dimidiado o flabeliforme, de color ocre, su-
perficie glabra; margen fértil, agudo y ondulado a ligeramente desgarrado. Himenó-
foro poroide, color beige obscuro a marrón claro; poros 3-5 por mm, angulares; tu-
bos concoloros al himenóforo de 3 mm de profundidad. Contexto de color crema a
ocre, de 1-4 mm de grosor y compacto.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas oblongo-elipsoides, de 4.5-6
x 2-3 µm, lisas, hialinas e inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por tener un basidiocarpo flabeliforme y
la superficie con estrías radiales formadas por pequeñas fibras y escuámulas. Es muy
parecida a Antrodiella versicutis, pero se separan por las esporas pequeñas y alantoi-
des de esta última.

90
Foto:
Araceli
Pompa
González
Polyporus guianensis Mont.
Basidiocarpo anual, estipitado, de hábito gregario a cespitoso, consistencia sub-
carnosa a correosa. Píleo con un tamaño de 10-35 mm de diámetro, turbinado, de
color amarillo ocre, superficie glabra; margen decurvado, estéril y agudo; al madu-
rar, el borde se presenta desgarrado. Himenóforo poroide, color crema a beige claro;
poros 2-3 por mm, angulares elongados hacia el estípite; tubos concoloros al hime-
nóforo, de hasta 1 mm de profundidad. Contexto de color blanco a amarillo pálido,
de 2 mm de grosor, compacto y simple. Estípite central de 15-60 x 1-4 mm, de color
café obscuro a negro, velutinoso a pubescente y finalmente glabro en especímenes
viejos.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas cilíndricas, de 8-12 x 3-4 µm,
lisas, hialinas, inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se reconoce en el campo por sus poros grandes y
alargados hacia el estípite, finamente velutinoso, y microscópicamente por sus espo-
ras cilíndricas.

91
Foto:
Ricardo
Valenzuela
Garza
Polyporus tenuiculus (P. Beauv.) Fr.
Basidiocarpo anual, pileado-estipitado, de hábito gregario a cespitoso, consisten-
cia carnosa, con un tamaño de 32-41 x 23-38 mm. Píleo dimidiado, de color varia-
ble, de blanco amarillento a beige con tonos color naranja a café naranja, higrófano,
superficie radialmente fibrilosa, dichas fibrillas le confieren tonalidades obscuras;
margen incurvado, fértil y agudo. Himenóforo poroide, de color blanquecino; poros
de 1-2 mm de diámetro, angulares a hexagonales a radialmente elongados en los
bordes; tubos concoloros al himenóforo, más o menos velutinosos en el interior, de
1-3 mm de profundidad. Contexto blanquecino a amarillento, de menos de 1 mm de
grosor, compacto simple y delgado. Estípite lateral, de 30-40 x 5-7 mm, concoloro al
contexto, velutinoso.
Datos microscópicos: Sistema hifal dimítico, esporas cilíndricas a subfusoides, de 8.8-
12.8 x 3.2-4.8 µm, lisas, hialinas e inamiloides y de pared delgada.
Observaciones: Esta especie se caracteriza por los grandes poros angulares, que
con la edad tienden a alargarse. Gilbertson y Ryvarden (1986) mencionan la presencia
de fíbulas claramente observables en los ejemplares frescos, pero que son muy difí-
ciles de observar cuando el material está seco.

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