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Identificación e Incidencia de Especies de Pestatolia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp. PROYECTO TERMINAL QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE INGENIERO EN BIOTECNOLOGÍA P R E S E N T A : OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE Asesor Interno: DIANA ELINOS CALDERÓN Asesor Externo: MIRELLA ROMERO BASTIDAS UnADM | DCSBA | 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Agradecimientos Al Departamento Académico de Agronomía a través del Laboratorio de Fitopatología, por brindarme la oportunidad de realizar diversas actividades experimentales y para el logro de los resultados alcanzados; así mismo a todos y cada una de las personas involucradas en el desarrollo de mi proyecto de grado, en especial a la Doctora Mirella Romero Bastidas y al Ingeniero Agrónomo Jonathan Savin Molina. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Dedicatoria A mis maestros y familia Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Tabla de Contenido RESUMEN .............................................................................................................................. 7 1. JUSTIFICACIÓN................................................................................................................... 8 2. MARCO TEÓRICO ............................................................................................................... 9 2.1. Importancia económica del mango y su distribución a nivel mundial ..................................... 9 2.1. Producción de mango en México .......................................................................................... 10 2.2. Principales variedades comerciales de mango ...................................................................... 15 2.3 Enfermedades comunes ......................................................................................................... 17 2.4 La incidencia de pestalotia spp. en huertos comerciales ....................................................... 18 2.5 Sintomatología del daño ......................................................................................................... 18 2.6 Factores ambientales que favorecen su desarrollo ................................................................ 19 2.7 Ciclo infectivo de Pestalotia spp. ............................................................................................ 20 2.8 Principales especies de Pestalotia spp.................................................................................... 22 2.9 La importancia de la identificación de los patógenos............................................................. 31 3. HIPÓTESIS ........................................................................................................................ 33 4. OBJETIVO GENERAL ......................................................................................................... 33 5. Objetivos específicos ....................................................................................................... 33 6. METODOLOGÍA................................................................................................................ 33 6.1 Objetivo 1. Evaluar la incidencia de Pestalotia spp. en árboles de mango............................. 33 6.1.1. Colecta de muestras enfermas ..................................................................................................... 33 6.1.2. Evaluación de la incidencia de daño en arboles ........................................................................... 34 6.2. Objetivo 2. Identificar mediante caracteres morfológicos las especies de Pestalotia spp. encontradas .................................................................................................................................. 35 6.2.1. Aislamiento y siembra de tejidos enfermos.................................................................................. 35 6.2.2. Caracterización morfológica de los aislados ................................................................................. 36 6.2.3. Tasa de crecimiento micelial ......................................................................................................... 37 6.2.4. Morfología colonial ....................................................................................................................... 38 6.3. Objetivo 3. Evaluar in vitro la actividad antifúngica de Trichoderma spp. sobre aislados de Pestalotia spp. .............................................................................................................................. 38 7. RESULTADOS ................................................................................................................... 39 7.1. Incidencia de Pestalotia spp. en cuatro cultivares de mango................................................ 39 7.2. Identificación morfológica de la especie de Pestalotia spp. en mango ................................. 41 7.2.1. Morfología colonial ....................................................................................................................... 41 7.2.2. Estructura de esporas ................................................................................................................... 42 7.2.3. Tasa de Crecimiento micelial ........................................................................................................ 43 7.3. Bioensayo in vitro de Trichodema spp. contra 3 aislados de Pestalotia spp. ........................ 44 Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 8. DISCUSIÓN ....................................................................................................................... 47 8.1. Incidencia ............................................................................................................................... 47 8.2. Morfología e identificación .................................................................................................... 47 8.3. Bioensayo .............................................................................................................................. 48 9. CONCLUSIONES ............................................................................................................... 49 10. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................................ 50 Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Índice de figuras Figura 1. Principales países exportadores de mango en millones de toneladas 2016 ...................... 10 Figura 2. 17 regiones productoras de mango en México. ...................................................................... 11 Figura 3. Producción de Mango en México 2018 por estados .............................................................. 14 Figura 4. Hoja de mango causada por Pestalotia spp. ........................................................................... 19 Figura 5. Árbol de mango con sintomatología de Pestalotia spp. ......................................................... 19 Figura 6. Ciclo infectivo de Pestalotia spp. ............................................................................................... 22 Figura 7. Caracteres conidiales para la identificación de especies de Pestalotia spp. de forma morfológica............................................................................................................................................ 32 Figura 8. Colecta de muestras enfermas en huertos de mango ........................................................... 34 Figura 9. Conteo de arboles enfermos ...................................................................................................... 35 Figura 10. Corte de tejido vegetal de cuatro cultivares de mango con sintomatología de daño ...... 36 Figura 11. Cortes en los tejidos enfermos de aproximadamente 1 cm ................................................ 36 Figura 12. Materiales vegetales cortados y desinfectados superficialmente ...................................... 36 Figura 13. Caracterización morfológica de los aislados ................................................................................... 37 Figura 14. Medición del radio micelial al cuarto día ................................................................................ 37 Figura 15. Morfología de la colonia............................................................................................................ 38 Figura 16. Incidencia de daño por Pestalotia spp. en cultivares de mango ........................................ 39 Figura 17. Incidencia del hogo en la variedad Kent ................................................................................ 40 Figura 18. (a) formación de acérvulos a lo largo de todo el micelio como estructuras de conservación (b) reverso del aislado (c) Colonia de Pestalotia spp. (d) esporas dentro del cuerpo fructífero, todos ellos color oscuro (x40) sonde se observa la estructura abierta sobre la superficie deja expuestos los conidios ........................................................................................................................ 42 Figura 19. (a) conidios de Pestalotia spp. (60x) con septas de hasta seis células y apéndices robustos, en el extremo apical de 3 y en el extremo distal 1. (b) conidio de Pestalotia spp. (100x) ligeramente alargados y curvos ......................................................................................................... 43 Figura 20. Tasa de crecimiento micelial.................................................................................................... 44 Figura 21. 3 aislados al sexto día de evaluación ..................................................................................... 44 Figura 22. Crecimiento micelial in vitro de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. ............................. 45 Figura 23. Crecimiento micelial in vitro de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. al tercer día ....... 46 Figura 24. Cuatro aislados de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. comparado con el control al tercer día ............................................................................................................................................... 46 Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Índice de tablas Tabla 1. Principales productores de Mango por países en millones de toneladas ............................. 9 Tabla 2. Producción de Mango por Entidad Federativa 2017 ........................................................... 12 Tabla 3. Prospecto de cosecha 2018 para cultivos de mango en ciclo perenne ............................... 13 Tabla 4. Principal variedad de mango comercial .............................................................................. 16 Tabla 5. Enfermedades comunes del mango .................................................................................... 17 Tabla 6. Especies de Pestalotia spp. reportadas ............................................................................... 23 Tabla 7. Condiciones geográficas del estudio ................................................................................... 40 Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA RESUMEN Los hongos que afectan Mangifera indica L. (familia: anacardiaceae) han proliferado en la región, arraigándose a climas más secos; entre estos, el más importante es Pestalotia spp., que causa daño principalmente a las hojas y los frutos. Su sintomatología se manifiesta inicialmente como diminutas manchas color marrón y/o grisáceas que posteriormente se tornan más oscuras y aumentan de tamaño, formando una costra que puede llegar a cubrir toda la superficie de la epidermis y no permite la maduración del fruto. Su daño es tal, que el 63% de los 300 árboles evaluados tienen sintomatología del daño antes descrita. Por otro lado, se describió macro y microscópicamente una de las 560 especies reportadas, de las cuales Pestalotia spp. presentó cuerpos seccionados de hasta seis conidios, diferenciados por su forma, color y posición. Se purificaron 10 de 21 cepas madres que ayudaron a la identificación morfológica de la colonia, micelio y esporas y dichos resultados coincide con las descritas para Pestalotia spp. en mango. Finalmente, mediante un bioensayo, fueron observadas a través de un sembrado dual, 4 cepas del patógeno y un control (Pestalotia spp.) enfrentadas a un antagonista (Tichoderma spp.) que dio como resultado que Trichoderma spp. tiene un claro efecto antagonista e inhibitorio al frenar el crecimiento del patógeno en ensayos in vitro. Estos resultados se comprobaron al tercer día de haber iniciado las pruebas. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 1. JUSTIFICACIÓN Debido a la creciente demanda de producción, las huertas han reportado sintomatología de Pestalotia spp. Este hongo está asociado con problemas fitosanitarios y su crecimiento se ve favorecido por factores climáticos idóneos en la región y por la capacidad virulenta del microorganismo de dañar el follaje y el fruto, presentando daños de hasta el 100% si no se controla. El uso de químicos no corresponde a las necesidades del mercado, siendo este uno de los principales problemas para controlar el hongo de manera sustentable. Debido a esto, el estudio del microorganismo será de gran ayuda para identificar la presencia de diversas especies y evaluar in vitro su control mediante el uso de microorganismos antagonistas que sean efectivos en la inhibición de Pestalotia spp. e inocuos para el ambiente. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 2. MARCO TEÓRICO 2.1. Importancia económica del mango y su distribución a nivel mundial El mango (Mangifera indica L.) es la especie cultivada de mayor distribución mundial y el tercer cultivo tropical de importancia económica, superado solo por el plátano y la piña (Galán, 1999). Se producen más de 39.3 millones de toneladas en más de 100 países de los trópicos y subtrópicos (FAO, 2000; Honja, 2014). Es decir, en el año de 2000 la producción mundial era de 24 millones de toneladas y se incrementó 57% para el 2016. El principal productor es Asía con un 78% de la total mundial, seguido por África y América. El principal país productor es India (15.18 millones de toneladas), seguida de China (4.35 millones), Tailandia (2.6 millones) e Indonesia (2.13 millones) (Tabla 2) pero para el año 2016 México se posicionó en el quinto lugar con 1 millón 451 mil 890 toneladas, superado por la india que produce actualmente el 40% del total de esa fruta (SIAP, 2018; SAGARPA, 2017; FAO, 2000; Kuhn et al., 2017). Tabla 1. Principales productores de Mango por países en millones de toneladas País Millones Toneladas India 15.18 China 4.35 Tailandia 2.6 Indonesia 2.13 México 1.5 Fuente: (FAOSTAT, 2016) La demanda de mango se incrementó en el mundo. Los principales países exportadores de Mango en 2015 eran México (21%), India (16%), Tailandia (15%) y Perú (8%). Las exportaciones de México siguen al alza. Los países a los que llega el mango mexicano en orden de importancia son: Estados Unidos, Canadá, Japón, Reino Unido, Países Bajos, Bélgica, España, Francia, Alemania, Guatemala, Australia, Suiza, Austria, Costa Rica, Israel, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Italia, Luxemburgo, Nueva Zelanda, Brasil, Corea del Sur, Colombia y Suecia (SAGARPA, 2014; Pat et al., 2017; FAOSTAT, 2016). 400 Principales países exportadores de mango en millones de toneladas 2016 350 Millones de toneladas 300 Toneladas 250 200 150 100 50 0 México India Tailandia Perú Brasil Países Bajos Ecuador Costa de marfil Egipto Indonesia Países Figura 1. Principales países exportadores de mango en millones de toneladas 2016 (FAOSTAT, 2016) 2.1. Producción de mango en México En México, los españoles lo introdujeron a fines del siglo XVII y principios del sigo IXI (Mata y Mosqueda, 1995). Actualmente 25 de los 32 estados de la República Mexicana producen este frutal. Su importancia económica es tal que en el año 2001 la producción total del país superó el millón y medio de toneladas (Chávez et al, 2001). La producción se ha incrementado debido a la demanda nacional e internacional, ocupando el quinto lugar después de India y China como principal productor y es el principal país exportador del fruto a nivel mundial tal cual se muestran en la Tabla 1 y Grafica 1 (Chávez et al, 2001; FAO, 2016). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA El cultivo de mango se produce entre los 600 metros sobre el nivel del mar con temperaturas promedio de 25 grados centígrados y precipitaciones que rondan los 1,500 milímetros anuales (Mota, J. 2003). El estado de Sinaloa es el estado con mayor superficie sembrada de mango con 30,095.87 toneladas, Chiapas con 27,691.19, Nayarit con 25,221.60, Guerrero con 24,952.40 y Michoacán con 22,926.56 toneladas (PAT-FERNÁNDEZ et al., 2017; SIAP, 2015). Los principales estados productores de Mango son Guerrero con el 22 por ciento de la producción a nivel nacional, Nayarit 17%, Sinaloa con 15%, Chiapas con el 10% y Oaxaca con el 9% entre estos cuatro estados acumulan el 80 por ciento de la producción nacional (Figura 2) (PAT-FERNÁNDEZ et al., 2017; SIAP, 2015). Para el 2018 estos estados concentran más del 70% de las áreas sembradas, cosechadas y en producción. (SAGARPA, 2003; SIAP 2018). Entre las variedades de mango que México produce se encuentran Kent, Keitt, Tommy Atkins, Haden, Ataulfo y Manila (PAT-FERNÁNDEZ et al., 2017). Figura 2. 17 regiones productoras de mango en México (SAGARPA, 2017). Al ser Guerrero, Sinaloa, Nayarit, Chiapas y Oaxaca los principales productores de mango en México (Tabla 2) el fruto juega un importante papel económico y social para las regiones Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA descritas por SAGARPA en 2017 (Figura 2) porque ofertan el 37% de la producción integral en América Latina (SAGARPA, 2017). Tabla 2. Producción de Mango por Entidad Federativa 2017 Entidad Federativa Producción en miles de toneladas Guerrero 358.235 Sinaloa 334.239 Nayarit 312.039 Chiapas 237.530 Oaxaca 158.847 Fuente: (SIAP, 2017). Se estima que el cultivo de mango en México va en aumento, sembrándose en un área de 191 mil toneladas con una ganancia por hectáreas de 9.7 toneladas y un valor productivo de cinco mil 439 millones de pesos (Tabla 3). El número de productores dedicados a esta actividad es de cerca de 40 mil. Por otro lado, son seis las variedades de mango que concentran el 90% del total de producción entre las que destacan Ataulfo, Manila, Tommy, Hadden, Kent y Keitt (Garduño, 2018). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Tabla 3. Prospecto de cosecha 2018 para cultivos de mango en ciclo perenne Estado Producción 2018 en toneladas Baja California Sur Campeche Chiapas Colima Durango Guerrero Hidalgo Jalisco Michoacán Morelos México Nayarit Oaxaca Puebla Querétaro San Luis Potosí Sinaloa Sonora Tabasco Tamaulipas Veracruz Yucatán Zacatecas Total en toneladas 9.261 31.668 279.043 58.559 1.599 388.52 521.1 114.706 160.452 5.497 2.837 350.878 169.14 549.1 481.1 910.1 381.283 630.1 1.215 16.671 109.594 1.466 233.1 2,085,731 Fuente: (SIAP, 2018) Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Producción 2017 en toneladas 1000 900 800 Toneladas 700 600 500 400 300 200 100 Ba ja Ca lif or ni Ca a Su m r pe c Ch he iap a Co s lim Du a ra Gu ngo er re Hi ro da lg Ja o M lis ich co oa c M an or el M os ex ic Na o ya Oa rit xa c Pu a e Q b Sa ue la n r Lu éta is ro Po to Sin sí alo So a no Ta ra Ta bas m co au li Ve pas ra cr Yu uz ca Za tán ca te ca s 0 Producción por Estados Figura 3. Producción de Mango en México 2018 por estados (SIAP, 2018) México como líder mundial en exportación de mango a nivel mundial tienen muchos retos, porque si bien su participación en el mercado estadunidense es el más redituable con el 70% de este mercado, en los últimos años a perdido participación, pasando en 1995 del 90% al 70% en 2001 por restricciones arancelarias y problemas fitosanitarias en la cosecha (Mota, 2003). En consideración, el mango mexicano está disponible para exportación durante siete meses del año (febrero a agosto). En ese sentido, el mango mexicano enfrenta competencia de productores de países centroamericanos y del Caribe (Mota, 2003). La producción de mango en México es de calidad y no supone muchos retos debido a la aplicación de normas que rigen su producción, así como la sanidad e inocuidad que profesionaliza la inspección, verificación y certificación de los huertos. Para obtener un producto de calidad altamente competitivo, a partir de frutos sanos, inocuos y libres de moscas de la fruta se aplican las Normas Oficiales Mexicanas NOM-023 y NOM-075 que establecen los requisitos y especificaciones fitosanitarias para la movilización de frutos hospederos de mosca de la fruta (Mota, 2003). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 2.2. Principales variedades comerciales de mango Mangifera indica L, es el miembro más importante de las Anacardiáceas o familia del marañon. El genero Mangifera comprende más de 69 especies de mango nativas de Asia, pero solo cuatro producen frutos comestibles. Aunque se conocen alrededor de 500 variedades, las que destacan por su importancia en el mercado son el Tom, Haden, Irvin, Kent, Keitt y Golden Nugett (Pat-Fernández et al., 2017). Alguna de las variedades introducidas en el país muestraron adaptación debido a su clima y están siendo cultivadas, especialmente por sus caracterísitcas que las hacen aptas para exportación (Garduño, 2018). Al contar con una gama de variedades a nivel mundial entre las que destacan Kent, Haden, Irwing, Tommy Atkins, y Manila Super, entre otros, en México las principales variedades que se cultivan son las siguientes: • Tommy Atkins: Variedad de Florida de tamaño mediano a grande (450700 g) aspecto ovalado y ápice redondeado. La coloración es verde y rojiza con numerosas lenticelas grandes de color verde amarillento. La pulpa es anaranjada jugosa y fibrosa. • Haden: Variedad de Florida de tamaño mediano (350-550 g) y aspecto redondo. Su coloración es amarillo y roja con lenticelas. Es poco productiva. La pulpa es amarillo anaranjada y un poco acidulada. Tiene una buena calidad gustativa. • Kent: Variedad de Florida de gran tamaño (hasta 800 g) y aspecto redondo. Su coloración es verde rojizo con algunas zonas de color amarillo anaranjado, aunque varía considerablemente según las zonas de producción. Es una variedad productiva y resistente con una buena calidad gustativa. El Kent se ha convertido poco a poco en el referente del mango. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Keitt: variedad de Florida de tamaño mediano a grande (500-700 g) y aspecto oblongo. Su coloración es verde amarillento rosado con tonos pastel y numerosas lenticelas amarillas. La pulpa es anaranjada jugosa y firme con fibras finas poco molestas. Está muy repartida en América Latina y África. Suele completar las campañas de exportación de la Kent. Otros cultivares en el país pueden incluir Manila, manzanillo Núñez, Diplomático, Irwin. Las variedades producidas en México para consumo nacional son aquellos frutos criollos, para la producción de jugo se emplea el Mango Manila y para el mercado de exportación se utilizan cultivares como Tommy Atkins (49%), Haden (23%), Kent (24%) y Keitt (SAGARPA 2013; SIACON 2009; Reho, 2016). Tabla 4. Principal variedad de mango comercial Nombre Tamaño Color Susceptible a enfermedades Tommy Atkins Mediano a Rojizo con • Dothiorella dominicana grande lenticelas amarillas • Fusarium mangiferae • Colletotrichum gloeosporoides Kent De gran tamaño Verde rojizo con • Glomerella cingulata y redondo manchas • Oidium mangiferae anaranjadas • Alternaria alternata • Lasiodiplodia theobromae Keitt Haden De mediano a Verde amarillento grande y en rosado y líneas forma oblonga amarillas Mediano y Color amarillo y redondo rojo • Mycosphaerella • Cercospora • Aspergillus • Phytophthora • Pestalotia spp. • Entre otras. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 2.3 Enfermedades comunes El cultivo de mango enfrenta problemas fitosanitarios que provocan daños directos en la producción y calidad de los frutos, lo que afecta notablemente la comercialización (Vega, 1994; Chávez et al, 2001; Ponce de León, et al. 2003). Se han identificado 90 patógenos (hongos y bacterias) que afectan el cultivo (Galán, et al., 1982) entre los que destacan Antracnosis, que la causa Colletotrichum gloeosporioides; Malformación o escoba de bruja atribuida a Fusarium subglutinans y oxysporum; Oidio o cenicilla cuyo patógeno es Oidium mangiferae; muerte descendente por Botryodiplodia theobromae; pudriciones de la base del fruto, por Pestalotiopsis mangiferae, Phomosis mangiferae y Dothiorella; mancha foliar gris, Pestalotia mangiferae y pudrición negra y roña, por Alternaria alternata y Elsinöe mangiferae, respectivamente (Pacheco et al., 2016). Tabla 5. Enfermedades comunes del mango Enfermedad Pudriciones apicales del fruto Enfermedades Agente patógeno Imagen Lasiodiploidia theobromae, Dothiorella dominicana, D. mangiferae, Phomopsis mangiferae, Pestalotiopsis mangiferae, Nattrassia mangiferae Colletotrichum gloeosporioides poscosecha y Antracnosis Malformación o Fusarium subglutinans y oxysporum escoba de bruja Oidio o cenicilla Oidium mangiferae Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 2.4 La incidencia de pestalotia spp. en huertos comerciales El incremento de la producción de mango desde hace tres décadas ha ido en aumento, por lo que los cambios ligados a la producción con miras a la exportación son factores que inciden en el desarrollo de más enfermedades (Castillo, 1980). En India y Tailandia se ha reportado que la pudrición de la fruta es causada por Pestalotia spp. aunque el daño por este hongo no se considera un factor de perdida a nivel local; sí lo es en mercados más exigentes que piensan en la exportación (Lim y Kuppelweiser, 1992). Otro factor de incidencia es por el mal manejo de la fruta durante y después de la cosecha, a lo que se denomina Causa de perdida post cosecha la cual asciende en mercados como el de Costa Rica a perdidas en más del 40% (Arauz et al., 1994). En China, las enfermedades reducen el rendimiento de la cosecha de 20-30% (Li GuiZhen et al., 2006). Al ser una enfermedad fúngica a nivel mundial, está presente en los huertos de mango y su importancia fitopatógena varía en cada país (Mamani, 2018). En los huertos de mango la enfermedad se encuentra estacionada y de acuerdo con la sintomatología que presenta la enfermedad se indican los compuestos agroquímicos para su tratamiento, sin embargo, el agente causal no es controlado en su totalidad porque se desconoce su modo de actuar y la manera correcta para su biocontrol cuando los cultivos orgánicos quieren hacerle frente. El agente causal está presente durante todo el ciclo de cultivo si no se emplean tratamientos o agentes para controlarla y afecta diferentes partes de la planta, principalmente es un hospedadero foliar e incluso causa daños poscosecha (Mamani, 2018). 2.5 Sintomatología del daño El síntoma provocado por el hongo Pestalotia spp. afecta dependiendo de la especie; por sus características se observa la aparición de clorosis en sus hojas, de amarillo se torna plateado al necrosarse el área afectada; dota de manchas foliar color gris, lo que afecta el crecimiento sano del árbol y por consiguiente el volumen de producción. Si bien el árbol no muere, este pierde vigor y se vuelve susceptible a otras enfermedades (Arguedas, 2005). Una vez cosechado el fruto, la pudrición en la base también se ve afectada. Este microorganismo es una de las mayores enfermedades de la planta, por lo que su Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA tratamiento es costoso y en su mayoría se emplean fertilizantes y agroquímicos sintéticos que le restan presencia en el mercado orgánico que va al alza (Cabrera et al., 2003; Ibarra y Tapia, 2018). Figura 4. Hoja de mango causada por Pestalotia spp. (Flores et al., 2008) Figura 5. Árbol de mango con sintomatología de Pestalotia spp. (Flores et al., 2008) 2.6 Factores ambientales que favorecen su desarrollo Los cultivares de mango predominan en un microclima subtropical que favorece el crecimiento del hongo, en ambientes con un índice de humedad de hasta 35°C. Sin embargo, la mayoría de los acérvulos en condiciones controladas se han obtenido por debajo de los 30°C. Estos factores permiten que los micelios no se vean afectados por las altas temperaturas (Keith et al., 2006). Otro factor que favorece el desarrollo y la formación de acérvulos es cuando luego de fuertes lluvias se salta a periodos secos. El patógeno de Pestalotia spp. tiene una fase saprofita, es decir pueden sobrevivir en tejidos muertos en Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA periodos prolongados. El medio por donde ingresa el patógeno puede ser ocasionado por heridas, sea por daños mecánicos o manuales en la planta (OIRSA, 2003). Por ultimo, el desarrollo de Pestalotia spp. se ve favorecido por las condiciones ambientales de alta humedad en el riego y que se debe a un suelo mal drenado. El riego debe ser manejado con una buena fertilización, esto contribuye a disminuir puntos de entrada del patógeno (Infoagro, 2017). 2.7 Ciclo infectivo de Pestalotia spp. Las especies patógenas de Pestalotia spp. inicialmente hacen contacto con el huésped donde se produce la infección (inóculo), probablemente por medio de la conidia o esporas fragmentadas (Espinoza et al. 2008). Estos inóculos pueden sobrevivir durante las condiciones climáticas adversas y pueden causar infecciones primarias. El inóculo secundario producido en el tejido enfermo puede causar infecciones secundarias y aumentar la gravedad de la enfermedad. La fuente del inóculo puede ser plantaciones silvestres (Keith et al. 2006), flores (Pandey 1990), desechos de cultivos, plantas de población de enfermedades, medios de cultivo utilizados, suelos y herramientas de vivero contaminadas (McQuilken y Hopkins 2004), gotas de agua salpicadas (Hopkins y McQuilken 1997; 2004) y también esporas en el aire (Xu et al. 1999). Las especies de Pestalotia spp. se han aislado constantemente como endófitos de los tejidos vegetales (Wei et al., 2009; 2010). Muchas especies endófitas permanecen como habitantes infructuosos latentes de las plantas hasta que está estresada, y los endófitos se convierten en patógenos (Gehlot et al. 2008). La fase patógena puede desencadenarse por una combinación de factores ambientales, susceptibilidad vegetal y la virulencia del patógeno. Pestalotia spp. se considera un patógeno débil (Madar et al. 1991), y la mayoría de los patógenos débiles penetran en el huésped a través de aberturas naturales como el estoma y lenticelas (Agrios 2005). La característica de Pestalotia spp. es que sólo infectan plantas heridas o estresadas, por lo que las heridas de poda u otros medios físicos desempeñan un papel importante en el desarrollo de enfermedades (Elliott et al. 2004; McQuilken y Hopkins 2004; 2006). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA La infección ocurre en cuatro etapas. Al principio, la célula mediana inferior germina y se une firmemente al sustrato. Las infecciones sucesivas futuras pueden lograrse mediante dos células medianas superiores. En la primera etapa, la adhesión débil se logra mediante la matriz mucilaginosa que recubre la conidia. Una segunda adhesión débil ocurre en las bases del pedicelo. Las dos etapas siguientes proporcionan un fuerte apego por liberación de sustancias adhesivas fibrilares. En la tercera etapa, las sustancias adhesivas fibrilares se producen a lo largo del pedicelo hasta el ápice de la célula basal y a veces se libera una cantidad menor de material fibrilar de los apéndices apicales. La cuarta etapa consiste en la liberación de material fibrilar en el punto de aparición del tubo de gérmenes. Pestalotia spp. puede producir un gran número de esporas que se dispersan fácilmente en el aire o por salpicaduras de agua, por lo que el saneamiento y la gestión de enfermedades son fundamentales. (Elliot et al, 2004). Las estrategias de gestión del agua, como la eliminación del riego aéreo, la disminución de la humedad de las hojas, el aumento del espaciamiento de las plantas y el aumento de la circulación del aire, pueden reducir las enfermedades en las plantaciones de mango. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Figura 6. Ciclo infectivo de Pestalotia spp. (Maharachchikumbura et al., 2011) 2.8 Principales especies de Pestalotia spp. De acuerdo con Maycobank.org hay 559 especies de Pestalotia spp reportadas, mientras que en Index Fungorum 601 especies; entre las más recurrentes están Pestalotia mangiferae, sin embargo, existen otras especies de Pestalotia que afectan la planta, entre ellos P. mangifolia asociada a las manchas en hoja y fruto. P. versicolor que afecta la flor y P. grandicola es el agente causal post cosecha del fruto (Lim, 1998). Este hongo bajo condiciones controladas se logran observar conidios septados de hasta cinco células, con Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA colores oscuros a café. En P. uvicola se observan conidios lisos, uniformes, 24,6 ± 1.6 a 25.1 ± 1.7 μm de longitud y anchura media de 7,2 a 7,9 ± 0,6 μm (Mahmoud et al., 2012). Tabla 6. Especies de Pestalotia spp. reportadas Pestalotia abietina, Pestalotia affinis, Pestalotia americana, Pestalotia acaciae, Pestalotia affinis, Pestalotia americana, Pestalotia acaciicola, Pestalotia albomaculans, Pestalotia ampelogena, Pestalotia aceris, Pestalotia aletridis, Pestalotia ananas, Pestalotia adusta, Pestalotia algeriensis, Pestalotia andropogonis, Pestalotia aeruginea, Pestalotia alnea, Pestalotia angustata, Pestalotia aesculi, Pestalotia aloës, Pestalotia annulata, Pestalotia anthurii, Pestalotia arengae, Pestalotia anomala, Pestalotia aomoriensis, Pestalotia artemisiae, Pestalotia antennaeformis, Pestalotia apiculata, Pestalotia asphodeli, Pestalotia aquatica, Pestalotia aucoumeae, Pestalotia antenniformis, Pestalotia ardisiae, Pestalotia aucubae, Pestalotia banksiana, Pestalotia bicilia, Pestalotia aucubae, Pestalotia batatae, Pestalotia bicolor, Pestalotia austrocaledonica, Pestalotia batatas, Pestalotia bicornis, Pestalotia berberidis, Pestalotia bignoniae, Pestalotia besseyi, Pestalotia bischofiae, Pestalotia betazamiae, Pestalotia bladhiae, Pestalotia betulae, Pestalotia brachypoda, Pestalotia avenae, Pestalotia baarnensis, Pestalotia banksiae, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia brachypoda, Pestalotia camphori, Pestalotia cesatii, Pestalotia brassicae, Pestalotia camptosperma, Pestalotia chamaecyparidis, Pestalotia canangae, Pestalotia chamaeropis, Pestalotia brassicicola, Pestalotia breviaristata, Pestalotia canangae, Pestalotia chartarum, Pestalotia brevipes, Pestalotia brevipes, Pestalotia canariensis, Pestalotia choenostroma, Pestalotia breviseta, Pestalotia capiomonti, Pestalotia chrysanthemi, Pestalotia briardii, Pestalotia capitata, Pestalotia cibotii, Pestalotia brideliae, Pestalotia carbonacea, Pestalotia cinchonae, Pestalotia briosiana, Pestalotia carissae, Pestalotia cinnamomi, Pestalotia bromeliicola, Pestalotia caroliniana, Pestalotia cinnamomi, Pestalotia burchelliae, Pestalotia carveri, Pestalotia cinnamomi, Pestalotia buteae, Pestalotia cassines, Pestalotia citri, Pestalotia bykovii, Pestalotia cassinis, Pestalotia citrina, Pestalotia byrsonimae, Pestalotia castagnei, Pestalotia clavata, Pestalotia caffra, Pestalotia casuarinae, Pestalotia clavispora, Pestalotia calabae, Pestalotia caudata, Pestalotia cliftoniae, Pestalotia calami, Pestalotia caulicola, Pestalotia clusiae, Pestalotia callophylli, Pestalotia cavendishiae, Pestalotia coccolobae, Pestalotia callunae, Pestalotia celastri, Pestalotia cocculi, Pestalotia calophylli, Pestalotia cephalotaxi, Pestalotia coffeae, Pestalotia camelliae, Pestalotia ceratoniae, Pestalotia coffeicola, Pestalotia camphorae, Pestalotia ceratospora, Pestalotia coffeicola, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia compacta, Pestalotia crataegi, Pestalotia duporti, Pestalotia compta, Pestalotia cruenta, Pestalotia ecdysantherae, Pestalotia comptospermae, Pestalotia cryptomeriae, Pestalotia effusa, Pestalotia cryptomeriicola, Pestalotia elaeagni, Pestalotia concentrica, Pestalotia elasticae, Pestalotia conceptionis, Pestalotia cuboniana, Pestalotia elasticola, Pestalotia congensis, Pestalotia cupressina, Pestalotia elegans, Pestalotia congesta, Pestalotia curta, Pestalotia elephants, Pestalotia conglomerata, Pestalotia cycadis, Pestalotia conigena, Pestalotia decolorata, Pestalotia conorumpiceae, Pestalotia depazaeformis, Pestalotia ellisii, Pestalotia embeliae, Pestalotia encephalartos, Pestalotia depazeiformis, Pestalotia epigaea, Pestalotia consocia, Pestalotia depazeoides, Pestalotia epilobii, Pestalotia conspicua, Pestalotia depazeoides, Pestalotia eriobotrifolia, Pestalotia coperniciae, Pestalotia dianellae, Pestalotia eriobotryae, Pestalotia coptospermae, Pestalotia dianellicola, Pestalotia dianthi, Pestalotia eriobotryaejaponicae, Pestalotia dichaeta, Pestalotia eriobotryicola, Pestalotia diospyri, Pestalotia espaillatii, Pestalotia discosioides, Pestalotia eucalypti, Pestalotia disseminata, Pestalotia eugeniae, Pestalotia distincta, Pestalotia euonymi, Pestalotia dodonaeae, Pestalotia eupyrena, Pestalotia corni, Pestalotia cornifolia, Pestalotia cornu-cervae, Pestalotia coryli, Pestalotia coryneoidea, Pestalotia corynoidea, Pestalotia coumarounae, Pestalotia crassiuscula, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia europaea, Pestalotia fuscescens, Pestalotia eusora, Pestalotia galactis, Pestalotia guepiniivaccinii, Pestalotia harongae, Pestalotia evansii, Pestalotia gallica, Pestalotia hartigii, Pestalotia everhartii, Pestalotia gastrolobi, Pestalotia excelsa, Pestalotia gastrolobii, Pestalotia exilis, Pestalotia gaultheriae, Pestalotia f. abietis, Pestalotia gaurae, Pestalotia hendersonioides, Pestalotia f. versicolor, Pestalotia genistae, Pestalotia herbicola, Pestalotia fautreyi, Pestalotia gibberosa, Pestalotia herteri, Pestalotia feijoae, Pestalotia gibbosa, Pestalotia heteroconis, Pestalotia fibricola, Pestalotia glandicola, Pestalotia heterocornis, Pestalotia fibriseda, Pestalotia gongrogena, Pestalotia heteromorpha, Pestalotia fici, Pestalotia goramghatensis, Pestalotia heterospora, Pestalotia helichrysi, Pestalotia helichrysii, Pestalotia ficicola, Pestalotia heucherae, Pestalotia gossypii, Pestalotia filisetula, Pestalotia homalomenae, Pestalotia gracilis, Pestalotia flacourtiae, Pestalotia granati, Pestalotia hordeidestruens, Pestalotia grandis, Pestalotia hughesii, Pestalotia gravesii, Pestalotia hypericina, Pestalotia guaranitica, Pestalotia hypodermia, Pestalotia gubaiana, Pestalotia hysteriiformis, Pestalotia guepinii, Pestalotia ilicina, Pestalotia guepinii, Pestalotia ilicis, Pestalotia flagellata, Pestalotia flagellifera, Pestalotia flagisetula, Pestalotia flavidula, Pestalotia foedans, Pestalotia fuchsiae, Pestalotia funerea, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia inquinans, Pestalotia lagerstromiae, Pestalotia lignorum, Pestalotia inquinans, Pestalotia lambertiae, Pestalotia liliorum, Pestalotia insidens, Pestalotia langloisii, Pestalotia linearis, Pestalotia insueta, Pestalotia lapageriae, Pestalotia litchii, Pestalotia intermedia, Pestalotia lapageriicola, Pestalotia littoralis, Pestalotia ixorae, Pestalotia laricicola, Pestalotia longiaristata, Pestalotia jacksoniae, Pestalotia lateripes, Pestalotia longiseta, Pestalotia jaczewskii, Pestalotia laughtonae, Pestalotia longisetula, Pestalotia japonica, Pestalotia laurina, Pestalotia lucae, Pestalotia javanica, Pestalotia laurocerasi, Pestalotia lucumae, Pestalotia jefferisii, Pestalotia laurophylli, Pestalotia lupini, Pestalotia jeolikotensis, Pestalotia lawsoniae, Pestalotia lusitanica, Pestalotia jodhpurensis, Pestalotia lepidospermatis, Pestalotia lycopadina, Pestalotia juniperi, Pestalotia lycopodina, Pestalotia lepironiae, Pestalotia juniperi, Pestalotia macrochaeta, Pestalotia leprogena, Pestalotia kalmicola, Pestalotia macrospora, Pestalotia lespedezae, Pestalotia kansensis, Pestalotia macrotricha, Pestalotia leucodisca, Pestalotia karstenii, Pestalotia macrozamiae, Pestalotia leucothoes, Pestalotia kasagiensis, Pestalotia maculans, Pestalotia leucothoës, Pestalotia kawakamii, Pestalotia maculicola, Pestalotia leurodisca, Pestalotia kriegeriana, Pestalotia maculiformans, Pestalotia libertiana, Pestalotia lagerstroemiae, Pestalotia magocsyi, Pestalotia lignicola, Pestalotia mali, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia malicola, Pestalotia molleriana, Pestalotia nicolai, Pestalotia malorum, Pestalotia monochaeta, Pestalotia novaecaledoniae, Pestalotia mangalorica, Pestalotia monochaetioides, Pestalotia nucicola, Pestalotia mangiferae, Pestalotia mangifolia, Pestalotia monochaetoidea, Pestalotia nuciseda, Pestalotia nummulariae, Pestalotia mariae, Pestalotia monochaetoides, Pestalotia nymphaeae, Pestalotia monochroa, Pestalotia ocoteae, Pestalotia monorhincha, Pestalotia oenotherae, Pestalotia monorhyncha, Pestalotia oleandri, Pestalotia montellica, Pestalotia olivacea, Pestalotia moorei, Pestalotia opuntiicola, Pestalotia mori, Pestalotia ornithogali, Pestalotia multiseta, Pestalotia oryzae, Pestalotia mycophaga, Pestalotia osyrella, Pestalotia myricae, Pestalotia osyridella, Pestalotia myrticola, Pestalotia osyridis, Pestalotia nandina, Pestalotia oxyanthi, Pestalotia nandinae, Pestalotia paeoniae, Pestalotia natalensis, Pestalotia paeoniae, Pestalotia nattrassii, Pestalotia paeoniicola, Pestalotia neglecta, Pestalotia pallida, Pestalotia nervalis, Pestalotia pallida, Pestalotia matildae, Pestalotia maura, Pestalotia mayumbensis, Pestalotia medinillae, Pestalotia melaleucae, Pestalotia melicoccae, Pestalotia menezesiana, Pestalotia menthicola, Pestalotia metasequoiae, Pestalotia micheliae, Pestalotia micheneri, Pestalotia microsora, Pestalotia microspora, Pestalotia microspora, Pestalotia milletiae, Pestalotia millettiae, Pestalotia moelleriana, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia pallidicolor, Pestalotia phacidioides, Pestalotia pterocelastri, Pestalotia palmarum, Pestalotia phoenicicola, Pestalotia punctiformis, Pestalotia palmarum, Pestalotia phoenicis, Pestalotia puttemans, Pestalotia palmicola, Pestalotia photiniae, Pestalotia puttemansii, Pestalotia pampeana, Pestalotia phyllostictea, Pestalotia puyae, Pestalotia pandani, Pestalotia pipericola, Pestalotia pycnidiformis, Pestalotia pandani, Pestalotia piperis, Pestalotia pycnidiiformis, Pestalotia paraguariensis, Pestalotia pitospora, Pestalotia pycnoides, Pestalotia paraguariensis, Pestalotia plagiochaeta, Pestalotia quadriciliata, Pestalotia paraguayensis, Pestalotia planimi, Pestalotia quercidentatae, Pestalotia parrotiae, Pestalotia platani, Pestalotia pauciseta, Pestalotia podocarpi, Pestalotia peckii, Pestalotia podocarpi, Pestalotia pelargonii, Pestalotia podocarpi, Pestalotia quercusdentatae, Pestalotia penzigii, Pestalotia polychaeta, Pestalotia ramealis, Pestalotia peregrina, Pestalotia polygoni, Pestalotia ramosa, Pestalotia pergrina, Pestalotia polygoni, Pestalotia ramulosa, Pestalotia drymifoliae, Pestalotia poonensis, Pestalotia rapanea, Pestalotia populi-nigrae, Pestalotia rapaneae, Pestalotia potentillae, Pestalotia rapaneae, Pestalotia pestalozzioides, Pestalotia primaria, Pestalotia raphiolepidisliukiuensis, Pestalotia peyronelii, Pestalotia psidii, Pestalotia pezizoides, Pestalotia pteridis, Pestalotia quercicola, Pestalotia quercina, perseae- Pestalotia pestalozzia, Pestalotia rhamni, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia rhipsalidis, Pestalotia siliquastri, Pestalotia rhododendri, Pestalotia sinensis, Pestalotia subsp. macrospora, Pestalotia rollandii, Pestalotia smilacis, Pestalotia subsp. monochaeta, Pestalotia rosae, Pestalotia sonsensis, Pestalotia suffocata, Pestalotia rostrata, Pestalotia soraueriana, Pestalotia swieteniae, Pestalotia royenae, Pestalotia sorbi, Pestalotia sydowiana, Pestalotia sabinae, Pestalotia spectabilis, Pestalotia syringae, Pestalotia saccardensis, Pestalotia sphaerelloides, Pestalotia taphrinicola, Pestalotia saccardiana, Pestalotia taslimiana, Pestalotia statices, Pestalotia saccardoana, Pestalotia tecomae, Pestalotia staticis, Pestalotia salicis, Pestalotia salicis, Pestalotia terebinthi, Pestalotia stellata, Pestalotia teucrii, Pestalotia salicispurpureae, Pestalotia stevensonii, Pestalotia theae, Pestalotia stictica, Pestalotia sapotae, Pestalotia theobromae, Pestalotia strobilicola, Pestalotia thuemenii, Pestalotia sarcomphali, Pestalotia subcuticularis, Pestalotia thujae, Pestalotia sarmenti, Pestalotia sarothamni, Pestalotia scirpina, Pestalotia subgen. Monochaetia, Pestalotia subgen. Pestalotia, Pestalotia thujae, Pestalotia thujicola, Pestalotia thujopsidis, Pestalotia scirrofaciens, Pestalotia seiridioides, Pestalotia subgen. Pestalozzina, Pestalotia tiliae, Pestalotia senegalensis, Pestalotia subsessilis, Pestalotia torrendia, Pestalotia sessilis, Pestalotia subsp. decolorata, Pestalotia torrendii, Pestalotia shiraiana, Pestalotia torulosa, Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Pestalotia toxica, Pestalotia vaccinicola, Pestalotia viridis, Pestalotia trevoae, Pestalotia vaccinii, Pestalotia vismiae, Pestalotia trichocladi, Pestalotia vacciniicola, Pestalotia vismifolia, Pestalotia triseta, Pestalotia valdiviana, Pestalotia vitalbae, Pestalotia truncata, Pestalotia vangueriae, Pestalotia viticola, Pestalotia truncatula, Pestalotia vanillae, Pestalotia watsoniae, Pestalotia tubericola, Pestalotia var. conigena, Pestalotia weinmanniae, Pestalotia tumefaciens, Pestalotia var. libertiana, Pestalotia westerdijkii, Pestalotia turgida, Pestalotia veneta, Pestalotia westerdijkii, Pestalotia uljanischevii, Pestalotia ventricosa, Pestalotia westerdykiae, Pestalotia uncinata, Pestalotia vermiformis, Pestalotia westerdykiae, Pestalotia unicolor, Pestalotia veronicae, Pestalotia zahlbruckneriana, Pestalotia unicornis, Pestalotia versicolor, Pestalotia uniseta, Pestalotia virgatula, Pestalotia uvicola, Pestalotia virginiana, Pestalotia zonata. 2.9 La importancia de la identificación de los patógenos La importancia de investigar e identificar el genero Pestalotia spp. es agruparla en una base de datos que permita a futuro, reconocer e identificar especies por la característica de su colonia, micelio y la longitud del conidio, que permitan diferenciarlas. La dificultad con la que se enfrenta el productor para identificar la patología se reducirá en gran medida cuando los géneros estén plenamente identificados (Faleiro et al., 2003). Regularmente se presentan conidióforos hialinos, irregularmente ramificados, septados, lisos y cortos, así como de conidios oscuros, rectos o ligeramente curvados que poseen cinco células con la basal y la terminal hialina y esta ultima puntiaguda con dos o más apéndices apicales Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA hialinos. Como resultado de esta caracterización se corroboró lo descrito por Sutton (1980) para el género Pestalotia spp. La morfología conidial es el carácter taxonómico más utilizado para el género de Pestalotia spp. La mayoría de las especies se dividen en diferentes grupos basados en el tamaño de la conidia. La longitud y la anchura son buenos marcadores taxonómicos para el género y estables dentro de los diferentes medios y las generaciones en la mayoría de los casos (Hu et al., 2007). El color de las células medianas sigue siendo un carácter ampliamente utilizado, y todas las especies se separan en tres grupos basados en olivaceo de umber concoloroso, versícoloro y versicoloro fuliginoso olivaceo. La evidencia molecular indica que es más preciso agrupar las especies según las concoloras y versicoloras en lugar de los tres grupos anteriores (Jeewon et al. 2003). La longitud de los apéndices apicales y el número de los apéndices apicales también son caracteres ampliamente utilizados para la identificación de especies. Algunas especies pueden ser identificadas por la presencia de apéndices apicales. Los apéndices apicales pueden surgir de las posiciones superior, media, inferior o diferentes en las células hialinas apicales y tales caracteres son ampliamente utilizados en la identificación de especies. Además, los apéndices apicales se pueden dividir en ramas; en algunas especies la presencia o ausencia de los apéndices basales es otro carácter para el diagnóstico de especies. Figura 7. Caracteres conidiales para la identificación de especies de Pestalotia spp. de forma morfológica (Maharachchikumbura et al., 2014) Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 3. HIPÓTESIS Se estima que por lo menos se identificarán dos especies de Pestalotia spp. presentes en los huertos de mango, que la incidencia será superior al 50% en los huertos y al menos una especie será susceptible al antagonismo de microorganismos antagonistas. 4. OBJETIVO GENERAL Identificar especies de Pestalotia e incidencia en huertos de mango (Mangifera Indica) y su biocontrol con Trichoderma spp. 5. Objetivos específicos • Identificar mediante caracteres morfológicos las especies de Pestalotia encontradas. • Evaluar la incidencia de Pestalotia spp. en árboles de cuatro cultivares de mango. • Evaluar in vitro la actividad antifúngica de Trichoderma spp. sobre aislados de Pestalotia spp. 6. METODOLOGÍA 6.1 Objetivo 1. Evaluar la incidencia de Pestalotia spp. en árboles de mango 6.1.1. Colecta de muestras enfermas Durante el mes de junio, dos huertos comerciales de mango fueron visitados en la localidad de Santiago, B.C.S. donde se determinó la incidencia y la distribución espacial de Pestalotia spp., en el que se realizaron muestreos en cuatro cultivares de este frutal (Haden, Kent, Keith y criollo). Para cada huerto, fueron tomados al azar 5 árboles; de cada árbol se muestrearon 10 hojas con síntomas de daño por Pestalotia spp. Las muestras fueron colocadas en bolsas plásticas en temperaturas frescas para su conservación y posteriormente llevadas al laboratorio de fitopatología perteneciente al Departamento Académico de Agronomía de la Universidad Autónoma de Baja California Sur. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Figura 8. Colecta de muestras enfermas en huertos de mango 6.1.2. Evaluación de la incidencia de daño en arboles Para determinar la incidencia de la enfermedad, han sido contadas las plantas afectadas, las cuales presentaban los síntomas característicos de Pestalotia spp. como mancha foliar en hojas color grisáceo y café claro, follaje raquítico o clorosis. Los dos huertos evaluados presentaban patología asociadas a Pestalotia spp. y otras enfermedades como fumagina y escoba de bruja. En base en la siguiente fórmula, la incidencia fue determinada en base al numero de arboles enfermos frente a la población total evaluada, expresadas en porcentaje. 𝐼𝑛𝑐𝑖𝑑𝑒𝑛𝑐𝑖𝑎 (%𝐼) = 𝑛ú𝑚𝑒𝑟𝑜 𝑑𝑒 á𝑟𝑏𝑜𝑙𝑒𝑠 𝑒𝑛𝑓𝑒𝑟𝑚𝑜𝑠 𝑥100 𝑛ú𝑚𝑒𝑟𝑜 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑝𝑙𝑎𝑛𝑡𝑎𝑠 𝑒𝑣𝑎𝑙𝑢𝑎𝑑𝑎𝑠 En cada huerto de mango evaluado, han sido registrados datos sobre el sistema de producción, la altitud (m.s.n.m.), el número de árboles por unidad de superficie (densidad) y la edad de los árboles, entre otras. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Figura 9. Conteo de arboles enfermos 6.2. Objetivo 2. Identificar mediante caracteres morfológicos las especies de Pestalotia spp. encontradas 6.2.1. Aislamiento y siembra de tejidos enfermos Los patógenos, fueron aislados y sembrados a partir de las muestras de hojas colectadas in situ (Figura 10). Para ello, fueron realizados cortes en los tejidos enfermos de aproximadamente 1 cm (Figura 11). Los materiales vegetales fueron desinfectados superficialmente por lavado secuencial con una solución de 0.5% NaCl por 30 segundos, luego enjuagados en agua estéril destilada (Figura 12) y posteriormente sembrados en cajas Petri con Papa Dextrosa Agar (PDA), empleando pinzas estériles. Todo el proceso de aislar y sembrar fue hecho en la campana de flujo laminar. Las cajas Petri con los patógenos, fueron depositados en la incubadora a 28°C. Después de siete días de crecimiento, las cepas fueron purificadas e incubadas bajo condiciones de luz y sombra por 12 horas a 28°C±2°C, para su uso posteriormente. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Figura 10. Corte de tejido vegetal de cuatro cultivares de mango con sintomatología de daño Figura 11. Cortes en los tejidos enfermos de aproximadamente 1 cm Figura 12. Materiales vegetales cortados y desinfectados superficialmente 6.2.2. Caracterización morfológica de los aislados Para identificar las especies a partir de cultivos puros, fue hecho un análisis morfológico. Dicha caracterización fue realizada mediante el registro de la forma de la colonia, color y textura de esta, forma y color de las esporas, septos, el largo de los apéndices, así como el tipo de micelio y forma de sus conidióforos. Estas características fueron evaluadas mediante observaciones en un microscopio óptico a una magnificación de 100x y 40x. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Figura 13. Caracterización morfológica de los aislados 6.2.3. Tasa de crecimiento micelial Para medir la tasa de crecimiento micelial, fueron depositaron discos de 5 mm de diámetro en el centro de la caja Petri con medio PDA. Cada aislado contó con cuatro repeticiones y posteriormente fueron evaluadas el crecimiento de la colonia diariamente hasta que cubrió la totalidad de la caja Petri. Los datos fueron expresados en centímetros por día (cm/d). Cuando el micelio alcanzó el sexto día de crecimiento, fue descrita morfológicamente, registrando la textura, tipo de borde y color. Al finalizar, se obtuvo un promedio de diámetro de la colonia en direcciones diametralmente opuestas. Figura 14. Medición del radio micelial al cuarto día Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 6.2.4. Morfología colonial Los aislados purificados, fueron observados durante siete días después de cultivados; que fue el tiempo que tomó la colonia en alcanzar el borde de la caja. Los aislados fueron caracterizados morfológicamente haciendo descripción macro y microscópicamente del patógeno, incluyendo textura, color y forma de la colonia, aspecto y color del medio. Cuando los cultivos esporularon, la forma y color de los conidios fueron observados utilizando microscopio óptico y calibrado para el objetico 100X. Figura 15. Morfología de la colonia 6.3. Objetivo 3. Evaluar in vitro la actividad antifúngica de Trichoderma spp. sobre aislados de Pestalotia spp. Para evaluar la actividad antifúngica de Trichoderma spp. el laboratorio de fitopatología de la Universidad Autónoma de Baja California Sur proporcionó la cepa pura, la cual, dentro del bioensayo fue contrapuesta contra los aislados patogénicos de Pestalotia spp. Para ello se empleó el método de cultivo dual, a partir de cultivos puros del hongo patógeno y el antagonista. Posteriormente, fueron sembraron discos de 1 cm de diámetro del antagonista y del patógeno en cada extremo de una misma caja Petri de 9 cm de diámetro con medio PDA ácido láctico. Las repeticiones fueron sometidas a similares condiciones de incubación y se tomó registro del crecimiento micelial diariamente, mediante el uso de una regla Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA graduada (mm). Las mediciones fueron de cuatro aislados y un control y se concluyó hasta que el control llenó la caja petri completamente. 7. RESULTADOS 7.1. Incidencia de Pestalotia spp. en cuatro cultivares de mango La incidencia fue determinada en base a la evaluación de árboles enfermos por cultivar en los dos huertos de mango. El total de árboles evaluados (300) en los huertos orgánicos representó el 62.33% de incidencia de Pestalotia spp. Las cuatro variedades de mango presentes en la huerta demostraron sintomatología del daño. El porcentaje de árboles enfermos con presencia marcada del daño por Pestalotia spp. también tuvieron presencia de otras plagas como “fumagina” y “Escoba de bruja” (Figura 17). Para la variedad de “Machete” se observó que el manejo fitosanitario era pobre, con presencia de humedad excesiva en el plantío, así como crecimiento de maleza y resto de hojarasca con sintomatología del hongo depositada en la base del árbol. Estas observaciones se repiten en menor medida a lo largo del resto de los cultivares del huerto. De la misma manera, se observó que las podas en los árboles se efectuaron antes de la floración, pero los troncos y brazos de los árboles yacían en el huerto. Esto permite deducir que tal vez el daño por el hongo en la base foliar del árbol se incrementó debido al pobre o nulo manejo agronómico. Porcentaje de árboles enfermos 120% 100% 100% 100% 100% 100% Machete Haden Kit Kent 80% 60% 40% 20% 0% Cultivares de mango Figura 16. Incidencia de daño por Pestalotia spp. en cultivares de mango Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA La variedad “Haden”, también presentó sintomatología de daño, lo que ayudó a que la incidencia del patógeno se siguiera perpetuando. Las variedades Kent y Kit, aunque presentó daño por el hongo evaluado (Figura 18), destacó del resto de los cultivares porque el estado general del daño era visualmente menor, con podas laterales, lo que permitió tener mejor aireación, impidiendo el establecimiento de otros hongos presentes en el huerto. Las condiciones geográficas, siendo esta, una zona árida y costera reúne las condiciones necesarias para que el hongo prolifere (Tabla 7). Figura 17. Incidencia del hogo en la variedad Kent Tabla 7. Condiciones geográficas del estudio Condiciones geográficas in situ en la localidad de Santiago, BCS Variables Sistema de Producción Altitud (m.s.n.m) Temperatura Humedad relativa Densidad de siembra Edad de los árboles Huerto 1 Orgánico 120 m.s.n.m 33° / 25° 50% 210 4 años Huerto 2 Orgánico 132 m.s.n.m 33° / 25° 50% 187 8 años Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Etapa vegetativa En producción Sintomatología del daño Deficiencia de minerales En producción • Pestalotia spp. • Alternaria y • Fusarium oxysporum 7.2. Identificación morfológica de la especie de Pestalotia spp. en mango 7.2.1. Morfología colonial En los resultados obtenidos de la determinación de los caracteres morfológicos de los aislados de Pestalotia spp. obtenidos de hojas de mango de cuatro cultivares, fueron observados diferentes características al respeto. Los 21 aislados fueron inicialmente categorizados en un solo grupo de acuerdo con la textura de la colonia y color y su identificación morfológica se basó en los criterios que describen el tamaño del conidio, septación y número de apéndices. La morfología colonial de cada cepa (a) mostró la presencia de colonias color blanco cremoso, de crecimiento tipo plano, con textura afelpada, creciendo al margen de la caja petri en forma de roseta, con los anillos concéntricos con márgenes irregulares, mientras que el reverso de la colonia (b) presentó tonalidades blancas a cremoso debido a la carencia de nutrientes en el medio de cultivo y también se observó el crecimiento radial en forma de roseta de manera difuminada. El medio cambió de color blanco a amarillento una vez que la colonia alcanzó el borde de la caja. Los cultivos fueron observados durante 6 días después de cultivados, lo que las llevó a alcanzar el borde de la caja. A la colonia le bastó a ese tiempo en cubrir la caja petri de 8 cm de diámetro. A los siete días se desarrollaron acérvulos (c) de forma esclerosada a lo largo del micelio en forma de masa de esporas negras, dispersos de forma irregular, los cuales mostraban dentro y fuera del micelio un basto numero de estos (d). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA a b c d c Figura 18. (a) formación de acérvulos a lo largo de todo el micelio como estructuras de conservación (b) reverso del aislado (c) Colonia de Pestalotia spp. (d) esporas dentro del cuerpo fructífero, todos ellos color oscuro (x40) sonde se observa la estructura abierta sobre la superficie deja expuestos los conidios 7.2.2. Estructura de esporas El micelio color cremoso produjo acérvulos esclerosados los cuales contenía conidios de forma alargada o ligeramente curvos, con extremos angostos, con septas de hasta seis células color marrón oscuro(a)(b) incluyendo los extremos; la célula basal y apical hialinas. En ambos extremos se observan apéndices, en el extremo apical de tres apéndices y en el extremo distal solo un apéndice más corto que los apicales(c). Los conidios presentan apéndices sólidos y las células están pigmentadas en cada división. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA a b c Figura 19. (a)(c) conidios de Pestalotia spp. (60x) con septas de hasta seis células y apéndices robustos, en el extremo apical de 3 y en el extremo distal 1. (b) conidio de Pestalotia spp. (100x) ligeramente alargados y curvos 7.2.3. Tasa de Crecimiento micelial Los resultados correspondientes a la fase de crecimiento micelial obedecieron a las condiciones del cultivo, la composición del medio, temperatura, etc. así como las características genéticas de la especie que se describen a continuación: El medio de cultivo en el que creció fue Papa Dextrosa agar ácido láctico ya que sus características nutritivas favorecen el crecimiento de la mayoría de los hongos y ausencia de bacterias. La temperatura de incubación fue de 30.2°𝐶 por seis días, cuando el crecimiento micelial alcanzó el borde de la caja Petri de 8cm. El crecimiento micelial por día osciló entre 1.4 y 1.7 cm (Figura 20), con un promedio general entre 1.7 a 2.47 cm por día (Figura 21). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 CRECIMIENTO MICELIAL (CM) 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 DÍA 1 DÍA 2 DÍA 3 DÍA 4 DÍA 5 DÍA 6 TIEMPO DE EVALUACIÓN Figura 20. Tasa de crecimiento micelial Figura 21. 3 aislados al sexto día de evaluación 7.3. Bioensayo in vitro de Trichodema spp. contra 3 aislados de Pestalotia spp. La evaluación del efecto antifúngico de Trichoderma spp. contra el hongo Pestalotia spp. mostró los siguientes resultados: a partir del primer día de evaluación fueron observados claramente que la combinación de Trichoderma spp. contra Pestalotia spp. redujo el crecimiento micelial y se puede ver en el control (Figura 22). Al segundo día de iniciado el bioensayo el crecimiento del micelio (2.1, 2.0, 2.0 y 2.1 cm) se redujo con base al control (2.3 cm) y al tercer día (2.3, 2.2, 2.2 y 2.2 cm) los resultados con respecto al testigo (2.9 cm) fueron claramente inhibitorios. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 3.5 3.0 Crecimiento micelial (Cm) 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 DÍA 1 A1 DÍA 2 A2 A3 DÍA 3 A4 CONTROL Figura 22. Crecimiento micelial in vitro de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. El valor promedio de crecimiento del micelio, de la combinación de Pestalotia spp. contra Trichoderma spp. fue entre 2.2 y 2.3 cm al tercer día con respecto al control (2.9 cm). Esto permite ver que el crecimiento lineal de cada colonia al enfrenarse una con otra, la colonia del patógeno es claramente inhibida al tercer día ya que el Trichoderma spp. creció completamente sobre el micelio de cultivo y sobre el organismo patógeno. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Crecimiento micelial (cm) 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 A1 A2 A3 A4 CONTROL Crecimiento micelial por aislados Figura 23. Crecimiento micelial in vitro de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. al tercer día Figura 24. Cuatro aislados de Pestalotia spp. con Trichoderma spp. comparado con el control al tercer día Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 8. DISCUSIÓN 8.1. Incidencia Los hongos se cuentan entre las plagas que afecta el mango, entre estos, el más importante es Pestalotia spp. Sosa et al (2003) reporta que la sintomatología del daño se manifiesta inicialmente en árboles susceptibles como diminutas manchas de color grisácea, que eventualmente se tornan más oscuras y aumentan de tamaño formando una costra que eventualmente no le permite a la planta realizar sus funciones fotosintéticas y la maduración del fruto. Este reporte concuerda con el trabajo de Akrofi y Amoah (2009), que también aisló Pestalotia spp. de hojas enfermas en Ghana. Esta sintomatología descrita concuerda a la también citada por Pádua et al., (2014) y que afecta principalmente en la base foliar y fruto. En frutales como el mango, los hongos Colletotrichum, Alternaría y Pestalotia spp. se asocian con problemas fitosanitarios relevantes, que se incrementan debido a factores climáticos idóneos, la densidad de siembra y por la capacidad virulenta del microorganismo. La falta de un manejo adecuado que implique estrategias oportunas de practicas culturales, control biológico y químico permite que algunos huertos se tornen improductivos (Blanco, 2003). Este autor informó que dichas prácticas intensifican la incidencia del hongo en huertos frutales tal cual se reporta en este trabajo. 8.2. Morfología e identificación Los aislados de mango fueron identificados morfológicamente como Pestalotia spp. debido a su morfología, la cual coincide con lo descrito por Maharachchikumbura et al (2014). Los aislados crecieron en un medio de cultivo PDA. Por sus características, estos resultados concuerdan con Jarial et al, (2017) que describe la colonia con una textura color blanco cremoso, de crecimiento tipo plano, con textura afelpada, creciendo al margen de la caja petri en forma de anillos concéntricos, con márgenes irregulares, mientras que el reverso de la colonia la describe con tonalidades blancas a cremoso debido a la carencia de nutrientes en el medio de cultivo y el crecimiento radial en forma de roseta de manera difuminada. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA Agrios (2005) encontró que a los siete días se desarrollaron acérvulos de forma esclerosada a lo largo del micelio en forma de masa de esporas negras, dispersos de forma irregular, los cuales mostraban dentro y fuera del micelio un basto numero de estos. Abundantes acérvulos esclerosados contenían conidios de forma alargada o ligeramente curvos, con extremos angostos, con septas de hasta seis células color marrón oscuro (incluyendo los extremos; la célula basal y apical hialinas). De acuerdo con las características microscópicas y después de compararlas con estudios previos Jeewon et al. (2003), el patógeno fue identificado como Pestalotia spp. ya que en ambos extremos se observan apéndices, en el extremo apical de tres apéndices y en el extremo distal solo un apéndice más corto que los apicales. Los conidios presentan apéndices sólidos y las células están pigmentadas en cada división. Otros estudios que concuerdan con la descripción de la cepa, color y morfología de la colonia son las reportadas por Rahman et al., (2013) y Keith et al. (2010). 8.3. Bioensayo Un total de 6 cepas de Trichoderma spp. con fuerte actividad antifúngica en contra de Pestalotia spp. fueron aisladas. De las seis, el total de las aislados mostró fuerte actividad antagonista frente a Pestalotia spp. Varios investigadores ya han reportado actividad antifúngica similar de Trichoderma spp. contra patógenos fúngicos. Estos microorganismos son bien conocidos como agentes de biocontrol antifúngicos que inhiben varios hongos patógenos de plantas ya que colonizan rápidamente el suelo, debido a que son naturalmente resistentes a muchos compuestos químicos tóxicos, incluyendo herbicidas, fungicidas, plaguicidas y compuestos fenólicos, sobre todo, porque son invasores oportunos y productores de antibióticos poderosos (Lorito, 2006). Al segundo día de iniciado el bioensayo el crecimiento del micelio (2.1, 2.0, 2.0 y 2.1 cm) se redujo con base al control (2.3 cm). Para Infante (2013) esto se debe principalmente a la producción de los antibióticos peptaibol y trichozianinas. Mediante la producción de estos Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA metabolitos, Trichoderma spp. logra inhibir la germinación de las esporas y la elongación de hifas de hongos fitopatógenos. Para Bhuvaneswari y Rao (2001) la eficacia del antagonista pudiera deberse a que produce altas concentraciones de este metabolito. El valor promedio de crecimiento del micelio, de la combinación de Pestalotia spp. contra Trichoderma spp. fue entre 2.2 y 2.3 cm al tercer día con respecto al control (2.9 cm). La distribución de Pestalotia spp. en todos los tratamientos con Trichoderma spp. fue significativamente menor con respecto al control sin aplicación, por lo que es evidente desde el día dos el efecto antagonista de Trichoderma spp. frente a Pestalotia spp. Esto coincide con lo descrito por Bhuvaneswari y Rao (2001) que observaron menor distribución de hongos patógenos cuando se realizaron aplicaciones con Trichoderma spp. al igual que González et al (2005) que menciona la eficacia de Trichoderma spp. para el control de hongos fitopatógenos. 9. CONCLUSIONES La mayor incidencia de Pestalotia en el huerto 2 por número de árboles fue Machete, seguida de haden, kitt y kent. La identificación de aislados de Pestalotia spp. permitió describirlos mediante caracteres morfológicos, tanto macro y microscopicamente. Dicha caracterización colonial, micelial y conidial permitirá identificar la especie. Se observaron las características que presenta Pestalotia spp. la forma de la colonia, así como del micelio, acérvulos y conidios. Los acérvulos color negro corresponde a las estructuras de conservación del hongo. Los conidios se observaron de forma alargada o ligeramente curvos, con extremos angostos, con septas de hasta seis células color marrón oscuro incluyendo los extremos; (la célula basal y apical hialinas). Por ultimo, Trichoderma spp. tiene potencial de biocontrol por su efecto antagonista sobre Pestalotia spp. en condiciones in vitro. Trichoderma spp. es un fungicida eficaz para inhibir la germinación de esporas de Pestalotia spp. y puede contemplarse como un buen método de prevención para este genero. Su aplicación tiene la ventaja de ser un biofungicida que no deja residuos tóxicos y no crea resistencia al hongo porque su función antagonista le permite competir por el medio. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA 10. BIBLIOGRAFÍA • Agrios, G. N. 2005. Fitopatologia. 2a Edición, 7a Reimpresión. Editorial Limusa. Mexico. pp 420. • Agrios, N. G. 2002. Plant Pathology, Quinta ed. University of Florida. United States of America. 922 p. • Akrofi, A. Y., & Amoah, F. M. 2009. Pestalotia spp. causes leaf spot of Vitellaria paradoxa in Ghana. African Journal of Agricultural Research, 4(4), 330-333. • Alfenas, A., Ferreira, F., Mafia, R., Gonçalves, R. 2007. Isolamento De Fungos Topatognicos. Mafia, R. (Ed.). Métodos em topatologia. Viçosa: Ed. da UFV. p.53-91. • Arauz-Cavallini, L. F., Wang-Wong, A., Durán-Quirós, A., & Monterrey-López, M. (1994). Causas de pérdidas poscosecha de mango a nivel mayorista en Costa Rica. Causes of postharvest losses of mango at the wholesale market level in Costa Rica. Agronomía Costarricense., 18(1), 47-51. • Arguedas, M. 2005. Plagas y enfermedades forestales en Costa Rica. . En Costa Rica, Instituto Tecnológico de Costa Rica. (pág. 182). • ASERCA. 1996. Producción Mundial de Mango. Revista Claridades Agropecuarias. México. • Bell DK, Wells HD, Markham CR. 1982. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology. 72(4):379–82. • Bell, D., Wells, H., & Markham, C. 1982. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology, 72(4), 379-382. • Bhuvaneswari, V., & Rao, M. 2001. Evaluation of Trichoderma viride antagonistic to post-harvest pathogens on mango. Indian Phytopathology, 54(4), 493-494. • Blanco, J. 2003. Manejo de enfermedades en la fe oa. En: cultivo, poscosecha y exportación de la fe oa (Acca sellowiana Berg). Universidad Nacional de Colombia, Fondo Nacional de Fomento Hortofrutícola, Asociación Hortofrutícola de Colombia. Pp. 152 • Camacho, Juan. 2003. Estadística con SPSS versión 11 para Windows. México: Editorial Alfaomega. s.p. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Castillo O. 1980. Prueba de fungicidas y dos sistemas de almacenamiento para el combate de antracnosis y pudrición basal del fruto en mango (Mangifera indica). Tesis Ing. Agr. San José. Universidad de Costa Rica. Facultad de Agronomía. • Chao, L., J. Castaño y G. Caballero. 1996. Estadística para las ciencias administrativas. Santa Fe de Bogotá, Colombia: 3 ed. Mc Graw-Hill interamericana. s.p • Cruz, C.D. Programa Genes: diversidad genética. Viçosa: Ed. da UFV, 2008. 278p • de Castro, S., Nélida, T., Álvarez, R. E., & Cabrera, M. G. 2003. Ocurrencia de Pestalotia sp. causando lesiones necróticas en plantas de Jazmín del Cabo (Gardenia Augusta), en Corrientes, Argentina. • Doyle, J; Doyle, J. 1991. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus, v.1, p.13-15, • Elliott ML, Broschat TK, Uchida JY, Simone GW (eds). 2004. Diseases and disorders of ornamental palms. American Phytopathological Society, St. Paul. • Espinoza, J. G., Briceño, E. X., Keith, L. M., & Latorre, B. A. 2008. Canker and twig dieback of blueberry caused by Pestalotiopsis spp. and a Truncatella sp. in Chile. Plant Disease, 92(10), 1407-1414. • Faleiro, F.G.; Luz, E.D.M.N.; Cerqueira, A.O.; Rocha, C.S.S. 2003. Uso de marcadores RAPD na classi cação de isolados de Phytophthora spp. causadores da podridão parda do cacaueiro no Brasil. Fitopatología Brasileira, v.28, p.312-315. • Flores, C., Rivadeneira, M., Aguirre, C. M., Rueda, E. R., Rueda, N. M., & Bejarano, S. G. (2008). Patógenos presentes en cultivos de papaya y mango de las provincias de Salta y Jujuy. In Congreso Argentino de Fitopatología. 1. 2008 05 28-30, 28-30 de mayo de 2008. Córdoba. AR. • Garduño, A. (2018). Proyecto de Exportación de Polvo de Mango Deshidratado de Toluca, Estado de México a Milán, Italia para el año 2018. • Gehlot P, Bohra NK, Purohit DK (2008) Endophytic mycoflora of inner bark of Prosopis cineraria a key stone tree species of Indian desert. Am-Eur J Bot 1(1):01–04 • González RM, Castellanos GL, Ramos FM, González GP. 2005. Efectividad de Trichoderma spp. para el control de hongos patógenos de la semilla y el suelo en el cultivo del frijol. Fitosanidad. 9(1):37–41. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Guba, E. F. (1961). Monograph of Monochaetia and Pestalotia. Monograph of Monochaetia and Pestalotia. • Hall, T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium, v.41, p.95-98, 1999. • Honing, P. Principios básicos de la industria azucarera. 1982. Editorial Continental, México DF. s.p. • Honja, T. (2014). Review of mango value chain in Ethiopia. Journal of biology, agriculture and health care, 4(25), 230-240. • Ibarra Anchundia, D. C., & Tapia González, D. R. (2018). Aplicación de buenas prácticas culturales para el manejo de roya y pestalotia sp. en el cultivo de fruto milagroso (Synsepalum dulcificum A. DC.), en Quinindé (Bachelor's thesis, Universidad de las Fuerzas Armadas ESPE. ESPESD. Carrera de Ingeniería Agropecuaria.). • Infante D, Martínez B, Peteira B, Reyes Y, Herrera A. 2013. Identificación molecular y evaluación patogénica de trece aislamientos de Trichoderma spp. frente a Rhizoctonia solani Kühn. Biotecnología Aplicada. 30(1):23–8. • Jarial, K., Jarial, R. S., Thakur, P. D., Banyal, S. K., & Mandradia, R. K. (2017). Pestalotia versicolor a Predominant Pathogen Associated with Decline Disease of Mango in Sub-tropical Zone of Himachal Pradesh. International Journal of Bio-resource and Stress Management, 8(1), 122-128. • Jeewon R, Liew E, Hyde, D (2004) Phylogenetic evaluation of species nomenclature of Pestalotiopsis in relation to host association. Fungal Divers 17:39–55 • Johnson, G. (1994). Stem-end rots. In R. C. Ploetz, G. A. Zentmyer, W. T. Nishijima, K. G. Rohrbach, & H. D. Ohr (Eds.), Compendium of tropical fruit diseases (pp. 39– 41). St. Paul: American Phytopathological Society. • Keith LM, Zee FT (2010) Guava disease in Hawaii and the characterization of Pestalotiopsis spp. affecting guava. Acta Horticulturae (ISHS) 849:269–276 Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Keith, L. M., Velasquez, M. E., & Zee, F. T. (2006). Identification and characterization of Pestalotiopsis spp. causing scab disease of guava, Psidium guajava, in Hawaii. Plant Disease, 90(1), 16-23. • Kuhn, D. N., Bally, I. S., Dillon, N. L., Innes, D., Groh, A. M., Rahaman, J., ... & Sherman, A. (2017). Genetic map of mango: a tool for mango breeding. Frontiers in plant science, 8, 577. • Li GuiZhen, Qin-DaKui and Li-Guila (2006). The Integrated methods for control of mango anthracnose disease. South- China-Fruit, 4: 12-13. • Lim, T; Kuppelweiser, W. 1992. Mango sapbum amelioration in the Northem Territory. In Abstracts IV International Mango Symposium. IFAS, ISHS, Miami, Fl. • Lim, T. (1998). Part III. Mango. In R. C. Ploetz, G. A. Zentmyer, W. T. Nishijima, K. G. Rohrbach, & H. D. Ohr (Eds.), Compendium of tropical fruit diseases (p. 36). St. Paul: American Phytopathological Society. • Lim, T., & Khoo, K. (1985). Diseases and disorders of mango in Malaysia. Kuala Lumpur: Tropical Press. • Litz, R. (1998). Part III. Mango. In R. C. Ploetz, G. A. Zentyer, W. T. Nishijima, K. G. Rohrbach, & H. D. Ohr (Eds.), Compendium of tropical fruit diseases (pp. 33–34). St. Paul: American Pathological Society. • Lorito M. La biología molecular de las interacciones entre Trichoderma, hongos fitopatógenos y plantas: oportunidades para desarrollar nuevos métodos de control de enfermedades. Fitosanidad. 2006;10(2):139–40. • Madar Z, Solel Z, Kimchi M (1991) Pestalotiopsis canker of Cypress in Israel. Phytoparasitica 19(1):79–81 • Maharachchikumbura, S. S., Hyde, K. D., Groenewald, J. Z., Xu, J., & Crous, P. W. (2014). Pestalotiopsis revisited. Studies in Mycology, 79, 121-186. • Mamani, M. Estrategias bioquímicas para la producción de compuestos con actividad biológica inhibitoria del crecimiento de fitopatógenos que afectan a cultivos del mango en la región de La Plazuela, Irupana La Paz. Tesis de Maestría. La Paz: Universidad Mayor de San Andrés. 2018. p. 94. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Martínez. M, 1999. Manual de laboratorio introducción a la biotecnología industrial. CEJA. Bogotá.́ • Mata-Beltrán, I., y Mosqueda-Vázquez, R. (1995). La producción del mango en México (No. 634.44 M3). • Mayorga, M., Barrero F y Rodríguez, G. 1969. Las costras de la guayaba: Identificación, comportamiento y control del microorganismo que las causa. Tunja, Colombia. Trabajo de grado (Ingeniero Agrónomo). Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Ingeniería Agronómica. 74 p. • McQuilken MP, Hopkins KE (2004) Biology and integrated control of Pestalotiopsis on container-grown ericaceous crops. Pest Manag Sci 60:135–142. • Michereff, S.J.; Noronha, M.A.; Rocha Júnior, O.M.; Silva, J.A.; Mizubuti, E.S.G. Variabilidade de isolados de alternaria brassicicola no Estado de Pernambuco. Fitopatologia Brasileira, v.28, p.656-663, 2003. • Mordue, J. (1980). Pestalotiopsis mangiferae. Common wealth Mycological Institute. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria, 676, 1–2. • Mota, J. 2003. Cadena Productiva del Cultivo de Mango en el estado de Chiapas, México. • OIRSA. (2003). Enfermedades y Artrópodos asociados al cultivo de Loroco. San Salvador. Obtenido de Parada M, Sermeño J, Rivas A. • Organización de Las Naciones Unidas para La Alimentación y la Agricultura (FAO). 2017. • Pacheco, C., & Suleima González, M., & Manzanilla, E. (2016). Diversidad de hongos en cinco cultivares de mango (Mangifera indica L.) Del Banco de Germoplasma del Inia-Ceniap, Maracay. Bioagro, 28 (3), 201-208. • Pádua, J. G., Duarte Filho, J., de Araújo, T. H., Pereira, S. G., do Carmo, E. L., de Carvalho Costa, F. E., & Dias, M. S. C. (2014). Desempenho agronômico e comportamento de cultivares de morangueiro quanto à mancha de Pestalotiopsis e às podridões dos frutos. Revista Agrogeoambiental, 7(1). Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Pat-Fernández, V. G., Caamal-Cauich, I., & Caamal-Pat, Z. H. (2017). Comportamiento y competitividad del mango de México en el mercado mundial. • PATIL, V. A. (2012). Investigation on Grey Leaf Blight Disease [Pestalotia anacardii] of Mango (Mangifera indica L.) Under South Gujarat Condition (Doctoral dissertation, Navsari Agricultural University, Navsari). • Rahman, S., Adhikary, S.K., Sultana, S., Yesmin, S., Jahan, N. 2013. In vitro evalua on of some selected fungicides against Pestalo a palmorum (Cooke.) causal agent of grey leaf spot of coconut. Journal of Plant Pathology and Microbiology 4:197 doi:10.4172/2157–7471.1000197 • Rahman, S., Adhikary, S.K., Sultana, S., Yesmin, S., Jahan, N., 2013. In vitro evalua on of some selected fungicides against Pestalo a palmorum (Cooke.) causal agent of grey leaf spot of coconut. Journal of Plant Pathology and Microbiology 4:197 doi:10.4172/2157–7471.1000197 • Reho A.I. 2015. Producción de mango en el sur de Sinaloa • SAGARPA. 2001. Plan Sectorial de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. México. • SAGARPA. 2003. Situación de la Producción de Mango. México. • Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). (2015): Agricultura: Producción anual. SAGARPA. México. • SIACON. (2009). Sistema de Información Agroalimentaria de Consulta. • SIAP, 2018. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. • Sociedad Colombiana de Técnicos de la Caña de Azúcar. 1989. Manual de laboratorio para la industria azucarera, Cali. 89 p. • Solano, LA. 1999. Efecto del embolsado del fruto sobre la incidencia de Pestalotia versicolor Speg. Producción y calidad en dos variedades de guayaba Psidium guajava L. Tunja, Colombia. Trabajo de grado (Ingeniero Agrónomo). Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia –UPTC. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Ingeniería Agronómica. 91 p. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019 Identificación e Incidencia de Especies de Pestalotia Presentes en Mango (Mangifera indica) y su Biocontrol con Trichoderma spp OMAR JORGE SÁNCHEZ ARCE BIOTECNOLOGÍA • Sosa N., R. Alvarez y M. Cabrera. 2003. Ocurrencia de Pestalotia sp causando lesiones necróticas en plantas de jazmín del cabo (Gardenia augusta), en Corrientes, Argentina. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional del Nordeste. Comunicaciones Científicas y Tecnológicas. 3 p. • Steell, R. y Torrie, J. 1980. Bioestadística: principios y procedimientos. McGraw-HillInteramericana, 385 p. • Sutton, B. Pestalotia de Not. En: Los hongos imperfectos coleomycetes con picnidios y acérvulos. Estado Libre Asociado de Micología del Instituto (CAB) (Set 10). Kew, Surrey, England. p. 263. 1980 • Tamura, K.; Dudley, J.; Nei, M.; Kumar, S. Mega4: molecular evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0. Molecular Biology and Evolution, v.24, p.1596-1599, 2007. DOI: 10.1093/molbev/msm092. • Wei JG, Xu T (2004) Pestalotiopsis kunmingensis, sp. nov., an endophyte from Podocarpus macrophyllus. Fungal Divers 15:247–254 • Wei JG, Xu T, Guo LD, Liu AR, Zhang Y, Pan XH (2007) Endophytic Pestalotiopsis species associated with plants of Podocarpaceae, Theaceae and Taxaceae in southern China. Fungal Divers 24:55– 74 • Wei JG, Xu T, Guo LD, Pan XH (2005) Endophytic Pestalotiopsis species from southern China. Mycosystema 24:481–493 • Whalley, H. 1971. Métodos ICUMSA de análisis de azúcar. Editorial Continental, México. 182 p. • Zúñiga, D., E. Vargas y G. Umaña. 1987. Di- agnóstico y aspectos preliminares de la epmemiología de las pudriciones del fruto de la macadamia (Macadamia integrifolia) en Turrialba. Agronomía Costarricense. San José de Costa Rica. 12(1): 45-51. Universidad Abierta y a Distancia de México | División de Ciencias de la Salud, Biológicas y Ambientales México 2019