lankesteriana 1 - Index of - Universidad de Costa Rica

ISSN 1409-3871 

LANKESTERIANA 

VOL. 4, NO. 1 ABRIL 2004 

Sinopsis del género Gibsoniothamnus (Schlegeliaceae) en Costa Rica, 

con una nueva especie 

J. FRANCISCO MORALES 1 

Estudio morfológico de Smilax L. (Smilacaceae) en Costa Rica, 

con implicaciones sistemáticas 

LILIAN FERRUFINO ACOSTA & JORGE GÓMEZ LAURITO 7 

Tipos de orquidáceas brenesianas, descritas por R. Schlechter, 

en el Herbario Nacional de Costa Rica 

SILVIA LOBO C. 37 

Notes on the Caribbean orchid flora. V. New species, combinations 

and records 

JAMES J. ACKERMAN 47 

Symplocos retusa (Symplocaceae), una nueva especie de Costa Rica 

RICARDO KRIEBEL, JOSÉ GONZÁLEZ & EVELIO ALFARO 57 

Nuevos registros de la familia Orchidaceae en Cuba 

JUAN A. LLAMACHO OLMO 60 

Notas sobre ecología y distribución del género Lepanthes (Orchidaceae) 

en Cuba, con una lista actualizada y revisada 


continúa 

LA REVISTA CIENTÍFICA DEL JARDÍN BOTÁNICO LANKESTER 

UNIVERSIDAD DE COSTA RICA

LANKESTERIANA 

Stanhopeinae Mesoamericanae II (Orchidaceae). Dos especies nuevas: 

Polycycnis blancoi y Coryanthes maduroana 

GÜNTER GERLACH 67 

Validation of the species of Septobasidium (Basidiomycetes) described 

by John N. Couch 

LUIS D. GÓMEZ & DANIEL A. HENK 75 

Validation of four Malaxis species (Orchidaceae) 

ROBERT L. DRESSLER 97 

Reseñas de libros 99

En honor a su fundador Charles H. Lankester, el 

Jardín Botánico Lankester de la Universidad de Costa 

Rica empezó en 2001 la publicación de la revista científica 

LANKESTERIANA. Para mayor beneficio de los 

autores y los lectores, a partir de este fascículo 

LANKESTERIANA se publica periódicamente con un volumen 

anual y tres números - abril, agosto y diciembre. 

Según las fechas de publicación, los números anteriores 

de LANKESTERIANA pueden considerarse 

como: 

No. 1 (mayo 2001) = Vol. 1(1) 

No. 2 (octubre 2001) = Vol. 1(2) 

No. 3 (enero 2002) = Vol. 2(1) 

No. 4 (mayo 2002) = Vol. 2(2) 

No. 5 (septiembre 2002) = Vol. 2(3) 

No. 6 (febrero 2003) = Vol. 3(1) 

No. 7 (mayo 2003) = Vol. 3(2) 

No. 8 (octubre 2003) = Vol. 3(3) 

Fascículo actual (abril 2004) = Vol. 4(1) 

LANKESTERIANA interesa a botánicos y otros investigadores 

de las plantas tropicales, especialmente de 

epífitas, con un fuerte énfasis en orquídeas. Incluye 

todos los aspectos de la botánica: sistemática, fisiología, 

ecología, morfología, polinización, química, 

evolución y etnobotánica. 

Cada artículo será revisado por dos especialistas. Los 

autores que tengan interés en publicar en 

LANKESTERIANA están invitados a enviar sus manuscritos 

a: 

Editores, LANKESTERIANA 

Jardín Botánico Lankester 

Universidad de Costa Rica 

Apdo. 1031-7050 Cartago, Costa Rica 

jbl@cariari.ucr.ac.cr 

Para su consideración, los manuscritos deberán 

recibirse antes de las siguientes fechas: 

No. 1: 31 de enero 

No. 2: 31 de mayo 

No. 3: 30 de septiembre 

Los Editores 

In honor of its founder Charles H. Lankester, the 

Jardín Botánico Lankester of the University of Costa 

Rica began publishing the scientific journal 

LANKESTERIANA in 2001. For the sake of authors and 

readers, beginning with this issue LANKESTERIANA is 

published periodically in volumes, three times a year 

- in April, August and December. 

According to the previous publication dates, past 

issues of LANKESTERIANA should be considered as follows: 

No. 1 (May 2001) = Vol. 1(1) 

No. 2 (October 2001) = Vol. 1(2) 

No. 3 (January 2002) = Vol. 2(1) 

No. 4 (May 2002) = Vol. 2(2) 

No. 5 (September 2002) = Vol. 2(3) 

No. 6 (February 2003) = Vol. 3(1) 

No. 7 (May 2003) = Vol. 3(2) 

No. 8 (October 2003) = Vol. 3(3) 

Present issue (April 2004) = Vol. 4(1) 

LANKESTERIANA serves botanists, researchers and all 

persons interested in tropical plants, especially epiphytes, 

with a strong emphasis on orchids. It 

addresses all aspects of plant research: systematics, 

physiology, ecology, morphology, pollination, phytochemistry, 

evolution, and ethnobotany. 

LANKESTERIANA is a peer-reviewed journal. Each submission 

is reviewed by two specialists in related fields. 

All persons interested in publishing in LANKESTERIANA 

are welcome to submit their manuscripts to: 

The editors, LANKESTERIANA 

Jardín Botánico Lankester 

Universidad de Costa Rica 

P.O. Box 1031-7050 Cartago, Costa Rica, C.A. 

jbl@cariari.ucr.ac.cr 

To be considered for publication, manuscripts must 

be received before the following dates: 

No. 1: January 31 

No. 2: May 31 

No. 3: September 30 

The Editors

LANKESTERIANA 


UNIVERSIDAD DE COSTA RICA 

Copyright © 2004 Jardín Botánico Lankester, Universidad de Costa Rica 

Fecha efectiva de publicación / Effective publication date: 30 de abril del 2004 

Diagramación: Jardín Botánico Lankester 

Imprenta: Litografía Ediciones Sanabria S.A. 

Tiraje: 500 ejemplares 

Impreso en Costa Rica / Printed in Costa Rica 

R 

Lankesteriana / La revista científica del Jardín Botánico 

Lankester, Universidad de Costa Rica. No. 1 

(2001)-- . -- San José, Costa Rica: Editorial 

Universidad de Costa Rica, 2001-v. 

ISSN-1409-3871 

1. Botánica - Publicaciones periódicas, 2. Publicaciones 

periódicas costarricenses

LANKESTERIANA 4(1): 1-4. 2004. 

SINOPSIS DEL GÉNERO GIBSONIOTHAMNUS (SCHLEGELIACEAE) 

EN COSTA RICA, CON UNA NUEVA ESPECIE 

Gibsoniothamnus (Schlegeliaceae) es un género de 

12 especies distribuidas desde México hasta el norte 

de Colombia, con un marcado centro de diversidad 

en Costa Rica y Panamá (Burger & Barringer 2000). 

El más reciente tratamiento del género en Costa Rica 

fue escrito por Burger & Barringer (2000), quienes 

registran cuatro especies en el país y mencionan una 

quinta especie en forma hipotética. Durante la elaboración 

del tratamiento de Schlegeliaceae para el 

Manual de Plantas de Costa Rica se encontró una 

nueva especie de Gibsoniothamnus conocida hasta 

ahora sólo de la Fila Matama, en la vertiente atlántica 

de la Cordillera de Talamanca. Esta especie fue 

J. FRANCISCO MORALES 

Instituto Nacional de Biodiversidad (INBio) 

Apdo. 22-3100, Santo Domingo de Heredia, Costa Rica 

ABSTRACT. Gibsoniothamnus ficticius (Schlegeliaceae), a new species from Costa Rica, is described and 

illustrated, including notes on the relationships with related taxa. A brief synopsis for the genus in Costa 

Rica is provided, with a key for all the species. 

RESUMEN. Gibsoniothamnus ficticius (Schlegeliaceae), una nueva especie de Costa Rica, es descrita e 

ilustrada y se comentan sus relaciones con especies afines. Se incluye una clave y una breve sinopsis de las 

especies del género en Costa Rica. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Schlegeliaceae, Gibsoniothamnus, Gibsoniothamnus ficticius, Costa Rica 

previamente identificada como G. mirificus A. H. 

Gentry, de la cual difiere notablemente en la longitud 

de los sépalos y el número de flores por fascículo. 

Por otro lado, se confirmó por primera vez la presencia 

de G. allenii A.H. Gentry y G. grandiflorus A.H. 

Gentry & Barringer en Costa Rica, especies no incluidas 

en el tratamiento de Burger & Barringer 

(2000). Aquí se brinda une breve sinopsis del género 

en Costa Rica, incluyendo una clave y datos de distribución 

de todas las especies, así como la descripción 

e ilustración de un nuevo taxon. En el caso de 

las especies no conocidas anteriormente en el país, se 

cita un espécimen representativo examinado. 

CLAVE DE LAS ESPECIES DEL GÉNERO GIBSONIOTHAMNUS EN COSTA RICA 

1 Tallos hirsutos, la pubescencia amarilla y conspicua, pelos ca. 2 mm de largo.................................... G. ficticius 

1 Tallos glabros a glabrados, o puberulentos (entonces la pubescencia apenas visible y no amarilla), pelos usualmente 

menos de 1 mm de largo............................................................................................................................. 2 

2 Tubo de la corola 3-4 cm de largo............................................................................................. G. grandiflorus 

2 Tubo de la corola 1.5-2.5 cm de largo............................................................................................................... 3 

3 Hojas usualmente lustrosas y brillantes adaxialmente, firmemente membranosas, más o menos rígidas al 

secar; floración en tallos desarrollados ...................................................................................................... 4 

4 Inflorescencias con 5-7 flores; lámina de las hojas usualmente 2.3-3.1 cm ancho................... G. allenii 

4 Inflorescencias con 1-3(4) flores; láminas de las hojas usualmente 0.5-2 cm ancho..........G. parvifolius 

3 Hojas opacas adaxialmente, delgadas y muy delicadas, muy frágiles y quebradizas al secar; floración en 

tallos nuevos (con hojas rojizas o moradas) o en tallos desarrollados......................................................... 5 

5 Cáliz 4-5 mm de largo; inflorescencias con una a 3 flores, usualmente sólo una o 2 por fascículo; 

corola lila............................................................................................................................ G. pterocalyx 

5 Cáliz 8-10 mm de largo; inflorescencias con 4 a muchas flores, raramente algún fascículo con 3 

flores; corola roja, rojo-lila a lila....................................................................................... G. epiphyticus

2 LANKESTERIANA 

Vol. 4, Nº 1 

1. Gibsoniothamnus allenii A. H. Gentry, Ann. 

Missouri Bot. Gard. 61(2): 534. 1974. 

DISTRIBUCIÓN, HÁBITAT Y ECOLOGÍA: Costa Rica y 

Panamá, en bosques muy húmedos, en la vertiente 

atlántica de la Cordillera de Talamanca, en las áreas 

cercanas a Tayutic, Turrialba, entre 600 y 1000 m. 

Especímenes con flores y frutos han sido recolectados 

en junio. 

Anteriormente sólo conocida de Panamá, G. allenii 

se registra por primera vez en Costa Rica. Esta 

especie se puede confundir con G. parvifolius 

Barringer, pero este taxon tiene hojas más pequeñas e 

inflorescencias reducidas a flores solitarias o en 

algunos casos en fascículos de hasta 4 flores. 

ESPÉCIMEN REPRESENTATIVO EXAMINADO: Costa 

Rica. Cartago: Turrialba, Tayutic, Jicotea, Finca la 

Pradera, 17 jun 1995 (fl, fr), Herrera 7962 (CR). 

2. Gibsoniothamnus epiphyticus (Standl.) L. O. 

Williams, Fieldiana, Bot. 34(8): 120. 1972. 

Clerodendrum epiphyticum Standl., Publ. Field Mus. 

Nat. Hist., Bot. Ser. 22(3): 168. 1940. 


Panamá, en bosques muy húmedos, bosques estacionalmente 

secos, acantilados de piedra caliza, en la 

Cordillera de Tilarán, Cordilleras Central y de 

Talamanca y en la Zona Protectora Cerros de 

Caraigres, entre 1000 y 1500 m. La floración se produce 

entre marzo y mayo. 

Gibsoniothamnus epiphyticus puede confundirse 

con G. stellatus A.H. Gentry & Barringer, conocida 

del noroeste de Panamá (provincia de Chiriquí), pero 

esta última especie tiene flores usualmente solitarias 

y hojas más coriáceas. En el país, se puede también 

confundir con G. pterocalyx A.H. Gentry, pero se 

separa por sus inflorescencias con más flores y hojas 

con láminas mucho más pequeñas. Durante la 

estación seca esta especie pierde las hojas y los brotes 

tiernos tienen un atractivo color rojizo o moradorojizo, 

lo cual coincide con la época de floración. 

3. Gibsoniothamnus ficticius J. F. Morales, sp. 

nov. TIPO. COSTA RICA. Limón: cerro entre Cerro 

Chimú y Cerro Matama, 30 abr 1985 (fl, fr), Gómez 

et al. 23580 (holotipo: CR-112598; isotipos: CR- 

112597, MO). FIG. 1. 

A G. mirifico A.H. Gentry, cui affinis, inflorescentiis 

multifloribus, pedicellis 16-26 mm longis et calycis 

lobulis 3-4 mm longis differt. 

Arbustos epífitos, ramitas jóvenes anguladas y 

conspicuamente hirsutas, cilíndricas a subcilíndricas 

y glabradas con la edad. Hojas pecioladas, el pecíolo 

2.5-7(-8) mm de largo, usualmente hirsuto o hirsútulo, 

la lámina (1.5-)3.5-8 x (1.3-)2.3-4.8 cm, elíptica a 

obovado-elíptica, aguda o cortamente acuminada apicalmente, 

cuneada a obtusa basalmente, membranácea, 

esparcidamente hirsútula adaxialmente, 

conspicuamente hirsuta en el envés, la venación 

secundaria conspicuamente impresa en el haz, las 

venas terciarias usualmente poco evidentes. 

Inflorescencias fasciculadas, terminales a subterminales, 

con grupos de 2 a 6 flores, raquis, pedicelos y 

cáliz variadamente hirsútulos, pedicelos 16-26 mm de 

largo, base del cáliz 4-6 x 3-3.5 mm, cortamente campanulada, 

rosada, lóbulos 3-4 mm de largo, angostamente 

linear-ovados, agudos o acuminados apicalmente; 

corola rosado lila, hipocrateriforme, glabra 

exteriormente, el tubo 12-20 mm de largo, 3-4 mm de 

diámetro, lóbulos de la corola 2-3 mm de largo, ovados, 

obtusos a redondeados apicalmente. Frutos ca. 1 

cm de diámetro, subglobosos, blancos al madurar. 

ETIMOLOGÍA: El epíteto hace referencia a que este 

taxon fue identificado en forma inapropriada con 

nombres de otras dos especies que no habitan en 

Costa Rica, de manera que fueron ficticiamente 

registradas en el país. 

DISTRIBUCIÓN, HÁBITAT Y ECOLOGÍA: Endémica 

hasta ahora en Costa Rica, donde crece en bosques 

muy húmedos de la vertiente atlántica de la Cordillera 

de Talamanca, entre Cerro Chimú y Cerro Matama, a 

1200 m de elevación. Flores y frutos han sido 

recolectados en abril. 

Gibsoniothamnus ficticius es una especie muy distintiva 

que se reconoce con facilidad por la pubescencia 

hirsuta y amarilla de tallos, hojas e inflorescencias. 

Esta especie se puede confundir con G. mirificus A.H. 

Gentry, endémica en Panamá, pero esta última se 

diferencia por sus inflorescencias reducidas a flores 

solitarias (vs. inflorescencias con 2 a 6 flores), pedicelos 

más cortos (11-14 mm vs. 16-26 mm) y lóbulos del 

cáliz mucho más largos (20-26 mm vs. 3-4 mm).

Abril 2004 

MORALES - Gibsoniothamus en Costa Rica 3 

Figura 1. Gibsoniothamnus ficticius J.F. Morales. A -Ramita florífera. B - Detalle del cáliz, el pedicelo y el fruto. 

Dibujado del holotipo. 

4. Gibsoniothamnus grandiflorus A.H. Gentry & 

Barringer, Novon 5: 120, f. 1. 1995. 


Panamá, en bosques muy húmedos, márgenes de ríos 

y quebradas, en la vertiente atlántica de la Cordillera 

de Talamanca (Parque Nacional Barbilla), en elevaciones 

de 300 a 400 m. Especímenes con flores han 

sido recolectados entre febrero y marzo. 

Anteriormente, esta especie era conocida únicamente 

en Panamá, pero recientes recolectas han confirmado 

su presencia en Costa Rica. En el tratamiento 

de Burger & Barringer (2000), un espécimen de esta 

especie (Herrera 3473) fue incluido dentro de la va- 

riabilidad de G. parvifolius Barringer; sin embargo, el 

análisis detallado de éste y de otros especímenes 

recientemente recolectados indica que, en realidad, 

corresponde a G. grandiflorus. En el país se puede 

reconocer con facilidad por el gran tamaño de las 

hojas y las flores. 

ESPÉCIMEN REPRESENTATIVO EXAMINADO: Costa 

Rica. Limón: Brisas de Pacuarito, río Dantas, 3 mar 2000 

(fl), Mora 848 (INB, MO). 

5. Gibsoniothamnus parvifolius Barringer, Novon 9: 

476. 1999. 


Panamá, creciendo en bosques muy húmedos y áreas


Vol. 4, Nº 1 

de acantilados rocosos boscosos, en la vertiente atlántica 

de las Cordilleras de Guanacaste, Tilarán, Central 

y de Talamanca, entre 500 y 1250 m. Especímenes 

con flores han sido recolectados entre marzo y 

noviembre; frutos se han visto en junio y entre agosto 

y noviembre. 

Esta especie se puede confundir con G. allenii 

A.H. Gentry; se distingue por las hojas más pequeñas 

y las inflorescencias reducidas a flores solitarias o en 

fascículos de hasta 3(4) flores. El nombre 

Gibsoniothamnus alatus A.H. Gentry ha sido mal 

aplicado a esta especie. 

6. Gibsoniothamnus pterocalyx A. H. Gentry, Ann. 

Missouri Bot. Gard. 61(2): 535. 1974. 


Panamá, en bosques muy húmedos, bosques ventosos 

y zonas de vegetación alterada en la Cordillera de 

Tilarán, entre 1200 y 1300 m. Flores y frutos han sido 

recolectados en junio. 

Se puede confundir con G. epiphyticus (Standl.) 

L.O. Williams, pero esta última especie tiene más flores 

y hojas usualmente mucho más pequeñas. 

Adicionalmente, G. pterocalyx tiene flores con el cáliz 

más reducido. Esta especie ha sido pobremente 

recolectada en Costa Rica y muchos de los 

especímenes anteriormente atribuidos a la misma 

corresponden a otros táxones. El nombre 

Gibsoniothamnus cornutus (Donn. Sm.) A. H. Gentry 

ha sido mal aplicado a esta especie. 

AGRADECIMIENTOS. Deseo agradecer a los curadores de 

los herbarios CR y MO por el préstamo de material. 

Asimismo, agradezco a Claudia Aragón por la ilustración. 

LITERATURA CITADA 

Burger, W. & K. Barringer. 2000. Familia 193a. 

Schlegeliaceae. In: W. Burger (ed.), Flora Costaricensis. 

Fieldiana, Bot. 41: 69-77.


ESTUDIO MORFOLÓGICO DE SMILAX L. (SMILACACEAE) 

EN COSTA RICA, CON IMPLICACIONES SISTEMÁTICAS 

LILIAN FERRUFINO ACOSTA & JORGE GÓMEZ LAURITO 

El género Smilax consta aproximadamente de 300 

especies que habitan en zonas templadas y tropicales 

en ambos hemisferios (Judd et al. 2002). En 

Mesoamérica se han registrado al menos 25 especies. 

Standley (1937) comunica 14 especies en Costa Rica 

y Huft (1994) registra las siguientes 13 especies: 

Smilax angustiflora, S. candelariae, S. chiriquensis, 

S. domingensis, S. engleriana, S. hirsutior, S. kunthii, 

S. mollis, S. panamensis, S. spinosa, S. spissa, S. subpubescens 

y S. vanilliodora. 

Durante mucho tiempo el género Smilax formó 

parte de la familia Liliaceae; pero en años recientes se 

ha incluido en su propia familia, Smilacaceae 

(Cronquist 1968, Dahlgren et al. 1985, Judd et al. 

2002). Algunos estudios recientes argumentan la separación 

de Smilax de la familia Liliaceae, tales 

como: estudios de cromosomas (Vijayavalli & 

Mathew 1990), composición de ácidos grasos en 

Escuela de Biología, Universidad de Costa Rica 

2060 San José, Costa Rica 

ABSTRACT. A morphologic revision of Costa Rican species of Smilax is presented. Traditionally, up to 14 

species were accepted. In the present paper 7 species are recognized: Smilax domingensis, S. mollis, S. panamensis, 

S. spinosa, S. spissa, S. subpubescens, and S. vanilliodora. The following names are treated as 

synonyms: Smilax engleriana and S. kunthii of S. domingensis; S. hirsutior, S. angustiflora and S. candelariae 

of S. mollis, and S. chiriquensis and S. regelii var. albida of S. vanilliodora. Smilax regelii is excluded as a 

valid taxon and a lectotype of S. gymnopoda is designated. Dichotomous keys with vegetatives and reproductive 

characters (flowers and fruits) are presented, on the basis of field and herbaria observations. For all the 

species many important characters useful for identification were included, such as rhizome, stem, size of tepals 

and variation in berry colour during development stages. 

RESUMEN. Se realizó una revisión morfológica de las especies de Smilax de Costa Rica. Tradicionalmente se 

han aceptado hasta 14 especies. En este trabajo se reconocen 7: Smilax domingensis, S. mollis, S. panamensis, 

S. spinosa, S. spissa, S. subpubescens y S. vanilliodora. Los siguientes nombres se tratan como sinónimos: 

Smilax engleriana y S. kunthii de S. domingensis; S. hirsutior, S. angustiflora y S. candelariae de S. mollis, y 

S. chiriquensis y S. regelii var. albida de S. vanilliodora. Smilax regelii se excluye como taxon válido y se 

designa un lectotipo de S. gymnopoda. Se elaboraron claves dicotómicas con características vegetativas y 

reproductivas (flores y frutos), con base en observaciones de campo y especímenes de herbario. En todas las 

especies se incluyeron diversos caracteres importantes para la identificación, como el rizoma, el tallo, el 

tamaño de los tépalos y la variación del color de las bayas a lo largo del desarrollo. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Smilacaceae, Smilax, morfología, taxonomía, Costa Rica. 

semillas (Morice 1970) y un estudio monográfico de 

las especies brasileñas (Andreata 1980). Tanto estudios 

morfológicos como análisis genéticos (ribulosa 

1,5 bifosfato carboxilasa / oxigenasa, rbcL, y las 

regiones no codificadoras de ADN del cloroplasto, 

trn-L, trn-F) indican que la familia Smilacaceae es 

monofilética y pertenece al orden Liliales (Judd et al. 

1999, 2002, Rudall et al. 2000). 

En el neotrópico se han realizado estudios taxonómicos 

para tratar de distinguir las especies de 

este género. Gaskin & Berry (1998) proponen una 

sinonimia en Smilax de la Guayana Venezolana y el 

uso de una combinación novedosa de caracteres, tales 

como: morfología de los tallos, bases de brotes 

laterales, presencia y ausencia de vainas aladas, articulación 

y longitud del pecíolo, morfología de las 

hojas, tipo de inflorescencia, longitud del pedicelo y 

del receptáculo, número de flores por receptáculo y

LANKESTERIANA 

6 Vol. 4, Nº 1 

características florales. Estos autores aceptan tres 

especies y reducen nueve nombres a sinonimia. 

Guaglianone & Gattuso (1991) realizan una 

revisión morfológica y un estudio anatómico de las 

estructuras vegetativas y reproductivas, así como de 

la distribución geográfica, la ecología y la fenología 

de Smilax en Argentina, donde describen e ilustran 

cinco especies. Andreata (1980, 1997) también realizó 

un estudio exomorfológico y anatómico y una 

revisión de Smilax en Brasil, abarcando 12 especies, 

junto con una historia taxonómica del género. 

Aunque se han considerado características diversas 

para distinguir las especies, los resultados no han sido 

los esperados. 

Desde la época precolombina la raíz de cuculmeca 

y zarzaparrilla, nombres populares de ciertas especies 

de Smilax en Centro América, ha sido considerada en 

la medicina popular contra problemas diuréticos, 

infecciones dermatológicas, desórdenes gastrointestinales, 

reumatismo, vaginitis, como anticonceptivo, 

para regulación menstrual, anemia, mordeduras de 

serpientes y artritis (Ocampo 1994, Gupta 1995). A 

pesar de que en la región mesoamericana se han realizado 

investigaciones fitoquímicas y etnobotánicas, 

no se sabe con certeza cuáles son las especies utilizadas, 

lo que pone en evidencia una gran incertidumbre 

en la información disponible. 

El objetivo principal de este trabajo fue mejorar las 

descripciones existentes y resolver problemas 

taxonómicos y de sinonimia en las especies de Costa 

Rica, lo que facilitará la identificación de las especies 

registradas en la región y zonas aledañas. Además, 

este estudio comprende un análisis morfológico de las 

estructuras vegetativas y reproductivas, teniendo en 

cuenta la variabilidad morfológica de las hojas y el 

color de los frutos, que son caracteres que han sido 

observados en la naturaleza y en especímenes de 

herbario. 

Historia taxonómica de Smilacaceae y Smilax 

Familia Smilacaceae Ventenat 

La familia Smilacaceae está compuesta por los 

géneros Smilax L. (300 spp.) y Heterosmilax Kunth 

(11 spp.), que se distribuyen en regiones templadas, 

tropicales y subtropicales (Heywood 1978, Dahlgren 

et al. 1985). 

Este taxon fue descrito por Ventenat (1799) con 

base en el género Smilax L. Este concepto fue seguido 

por diversos autores (Endlicher 1836, Lindley 

1836, Grisebach 1842, Kunth 1850, De Candolle 

1878). Otros autores (Bentham & Hooker 1880, 

Engler 1888, Melchior 1964) tratan Smilax en la 

familia Liliaceae. Engler (1888) y Melchior (1964) 

dividen Liliaceae en 13 subfamilias; entre éstas 

Smilacoideae, que se compone de cuatro géneros: 

Rhipogonum Forst. & Forst. (variante ortográfica en 

la literatura: Ripogonum), Smilax, Pseudosmilax 

Hayata y Heterosmilax. Dahlgren et al. (1985) 

incluyen estos cuatro géneros en la familia 

Smilacaceae, que dividen en dos subfamilias: 

Smilacoideae, con tres géneros, y Rhipogonoideae 

con el género Rhipogonum. 

Además de Liliaceae o Smilacaceae, la familia se 

ha incluido en Liliiflorae (Melchior 1964), Liliales 

(Hutchinson 1934, Cronquist 1968, Heywood 1978, 

Goldberg 1989, Judd et al. 1999, 2002), Asparagales 

(Dahlgren & Clifford 1982), Dioscoreales (Dahlgren 

et al. 1985) y Smilacales (Takhtajan 1969). Dahlgren 

et al. (1985) comentan que la familia puede ser considerada 

junto a Petermanniaceae dentro de 

Dioscoreales. Judd et al. (1999, 2002) incluyen en la 

familia Smilax y Rhipogonum, mientras que Thorne 

(1992) considera que Smilacaceae es una familia 

monogenérica. 

Otra clasificación de Smilacaceae es la que incluye 

tres géneros: Rhipogonum, Smilax y Heterosmilax, 

apoyada en gran parte por Melchior (1964), 

Heywood (1978), Koyama (1983), Dahlgren et al. 

(1985) y Andreata (1997). Pseudosmilax se reduce a 

sinónimo de Heterosmilax (Koyama 1984). 

Heterosmilax se distribuye en el sudeste de Asia. 

Este es un género muy próximo a Smilax, que se diferencia 

de éste por el perigonio soldado (urceolado) y 

tres estambres (raramente 9-12) generalmente unidos. 

Smilax es el género con mayor importancia 

económica, distribuido en regiones templadas, tropicales 

y subtropicales en ambos hemisferios. Se caracteriza 

por un perigonio libre, seis estambres libres y 

anteras confluentes (Koyama 1983, Dahlgren et al. 

1985, Huft 1994). 

Otro factor que ha causado polémica es la posición

Abril 2004 

filogenética de Smilacaceae en relación con otras 

monocotiledóneas. Cronquist (1981) considera que 

Smilacaceae y Dioscoreaceae son las familias más 

especializadas de Liliales, mientras que Dahlgren et 

al. (1985) consideran que Smilacaceae es una de las 

seis familias no basales de las monocotiledóneas. 

Ellos sostienen que Dioscoreaceae está muy relacionada 

con Smilacaceae y ésta última con 

Petermanniaceae y Liliaceae. Tanto estudios morfológicos 

(Conran 1989) como de secuencias de ADN 

(Chase et al. 1995a, 1995b, 2000, Judd et al. 1999, 

2002, Rudall et al. 2000, Patterson & Givnish 2002) 

favorecen la ubicación de Smilacaceae en el orden 

Liliales. 

El género Smilax L. 

Tournefort (1694, citado por Arveiller 1985) fue el 

primer taxónomo que estudió el género Smilax; él 

consideró importante el color de los frutos. 

Linneo (1753) describe una planta de tallos angulosos 

con aguijones y hojas dentado-crenadas con el 

nombre Smilax aspera. Según Vandercolme (1947) el 

nombre Smilax se deriva del griego smile que significa 

“raspa”, por la presencia de acúleos que aparecen 

en la mayoría de las especies. Pero otros autores 

opinan que Smilax significa hierba para atar y que el 

nombre fue usado por primera vez por Plinio para 

referirse a una hierba de atar, que es Smilax aspera. 

Este término también se usó para referirse a las 

especies de avena y a los árboles de tejo (Quattrocchi 

2000). 

Linneo (1753) coloca a Smilax en la clase XXII 

Dioecia y el orden VI Hexandria, entre los géneros 

Tamus L. y Cissampelos L. Ventenat (1799) lo 

incluye en el orden III y lo considera dentro de 

Smilacaceae, haciendo referencia a los aspectos vegetativos 

y florales. Poiret (1804) es seguidor del 

sistema de Linneo; presenta una descripción morfológica 

de Smilax y lo ubica entre los géneros 

Salpiglossis Ruiz & Pav. y Tragopogon L., ambos 

en la subclase Dicotyledoneae. El mismo Poiret 

(1823) después incluye a Smilax entre Tamus y 

Dioscorea L. 

Humboldt & Bonpland (1815) realizan un viaje a 

América del Sur y encuentran 12 especies nuevas de 

Smilax. Colocan a Smilax entre Tamus y Dioscorea, y 

a Asparagea Juss. entre Dianella Lam. y Dioscorea. 

FERRUFINO & GÓMEZ-LAURITO - Smilax en Costa Rica 7 

Endlicher (1836) sitúa Smilax en su propio orden LVI 

Smilacaceae. 

Lindley (1836) incluye Smilax en el grupo IV 

Retosae y en el orden CCLVI Smilacaceae. Este autor 

sitúa Smilax en la clase V Distyogenes y el orden 

LXIX Smilaceae, al lado del género Rhipogonum. 

Grisebach (1842) realiza el tratamiento de 33 

especies de Smilax; divide el género en 

Pharmacosmilax y Pachysmilax por la base y la 

forma de la antera, y la consistencia y el patrón de la 

nervadura de la hoja. Ubica Smilax en Smilacaceae, 

cerca de Herreria Ruiz & Pav. 

Kunth (1850) enumera 188 especies de Smilax y 

estudia 124. Ubica a Smilax en Smilaceae. 

Vandercolme (1871-73) estudia las especies medicinales 

de Smilax e incluye S. officinalis Humb. & 

Kunth, S. sarsaparrilla L. y S. china L. como plantas 

de uso medicinal. 

De Candolle (1878) presenta una monografía de 

Smilacaceae con información valiosa sobre las partes 

vegetativas y florales, distribución geográfica, clave 

analítica, descripciones completas y un análisis de 

polen de las especies. Divide el género en cuatro grupos: 

Nermexia, Coilanthus, Eusmilax y Pleiosmilax. 

Incluye las especies de Costa Rica en Eusmilax y 

describe tres especies nuevas del país: Smilax angustiflora, 

S. candelariae y S. subpubescens. Ubica a 

Smilax entre Heterosmilax y Rhipogonum. Esta última 

idea fue apoyada por Bentham & Hooker (1880) 

y Engler (1888). 

Morong (1894) en su trabajo de las Smilaceae de 

Norte y Centro América, describe Smilax 

panamensis, una nueva especie de Panamá. Baillon 

(1894) coloca Smilax, Heterosmilax y Rhipogonum 

en la familia Smilaceae, próxima a Stemoneae y 

Herrerieae. 

Killip & Morton (1936) realizan una revisión de las 

especies de Smilax de Centro América y México y 

reconocen nueve especies nuevas. Takhtajan (1969) 

considera Smilax y Heterosmilax dentro de la subfamilia 

Smilacoideae y Rhipogonum en Rhipogonoideae, 

ambas pertenecientes a Smilacaceae y al 

orden Smilacales. 

En los últimos 40 años, el género ha sido estudiado 

por Koyama en Asia (1960, 1974, 1975, 1977), 

quien ha agregado nuevos taxa de la región, ha 

hecho claves para la identificación de grupos y


Vol. 4, Nº 1 

especies, y ha ilustrado y colaborado en floras 

locales. 

Dahlgren & Clifford (1982) incluyen Smilax, 

Heterosmilax, Pseudosmilax y Rhipogonum en 

Smilacaceae. Dahlgren et al. (1985) y Dahlgren 

(1989) elevan el género Rhipogonum a la categoría de 

familia: Rhipogonaceae. 

En Brasil, Andreata (1979, 1980, 1982, 1984a) 

estudia 12 especies de Smilax y elabora la primera 

clave para el reconocimiento de los táxones. Ella 

(1997) realiza una revisión taxonómica de las 

especies de Brasil y hace una descripción completa, 

ilustra, resuelve problemas taxonómicos y de tipificación 

y amplía los datos de distribución geográfica. 

Además, sus contribuciones comprenden los trabajos 

de las floras regionales de Brasil (Andreata & 

Wanderley 1984b, Andreata & Cowley 1987, 

Andreata 1995, 1996). 

Guaglianone & Gattuso (1991) revisan cinco 

especies del género en Argentina: Smilax assumptionis 

A. DC., S. campestris Griseb, S. cognata Kunth, 

S. fluminensis Steud. y S. pilcomayensis Guaglian. & 

Gattuso (especie nueva). También elaboran una clave 

basada en características exomorfológicas e histológicas, 

haciendo énfasis en anatomía, nectarios florales y 

compuestos químicos. 

Huft (1994) realiza el tratamiento sistemático del 

género para la flora mesoamericana. Hace una 

descripción botánica y agrega una clave dicotómica. 

Huft (2001) también hace el tratamiento del género 

en la Flora de Nicaragua, que abarca 12 especies. 

Judd et al. (1999, 2002) consideran Smilacaceae en 

Liliales, con Smilax y Rhipogonum. La mayoría de 

los autores concuerdan en que Smilax pertenece a 

Smilacaceae y está relacionado con los miembros de 

Liliales. 

Material y métodos 

Para caracterizar el rizoma se observó el color y se 

determinó si el rizoma presentaba: a) engrosamiento 

tuberoso, y b) entrenudos engrosados. 

También se determinó la forma y el color de los 

aguijones en tallos y hojas. La longitud y el ancho de 

las hojas se midieron en varias hojas de cada especie. 

Se midió el largo del pecíolo en las hojas. 

Además, se midió y observó el color de la vaina en 

plantas observadas en el campo. Se determinó la dis- 

posición de las inflorescencias en ramas y la disposición 

y el número de flores en la inflorescencia. Se 

recolectaron por lo menos dos muestras de las plantas 

en floración. Se midió bajo un estereoscopio el 

tamaño de tépalos, estambres (filamento y antera) y 

pistilo (estilo y estigma). El diámetro de los frutos fue 

medido; además se observó el color y la forma de los 

frutos durante la maduración. Se contó el número de 

los frutos por lo menos en tres infrutescencias de cada 

planta. Se contó el número de semillas en cuatro a 

seis frutos. 

Se extrajeron muestras de polen de ejemplares 

depositados en herbarios. Cada muestra se colocó 

sobre una cinta de carbón adhesiva (por ambas caras). 

Después se montó sobre una base de aluminio, en 

seguida se cubrió con 30 nm de oro utilizando un 

cobertor iónico (Eiko IB-3, Japón). Posteriormente 

cada muestra fue observada con un microscopio electrónico 

de barrido S-570, utilizando un voltaje de 

aceleración de 25 KV. En la toma de micrografías se 

utilizó la película Verichrome Pan 120 (Kodak). 

Se examinó material de los siguientes herbarios: 

Herbario Nacional de Costa Rica (CR), Herbario de 

la Universidad de Costa Rica (USJ), Instituto 

Nacional de Biodiversidad (INB), Herbario Juvenal 

Valerio de la Universidad Nacional (JVR), 

Missouri Botanical Garden (MO), Universidad de 

Panamá (PMA) e Instituto de Investigación 

Tropical Smithsonian (STRI). También se consultaron 

bases de datos en Internet: W3 TROPICOS 

del Jardín Botánico de Missouri, el Índice 

Internacional de Nombres de Plantas (IPNI); 

además, un índice de publicaciones botánicas, otro 

índice de botánicos, el índice de especímenes 

botánicos del Herbario Gray de la Universidad de 

Harvard (GH) y fotografías de tipos del Herbario 

del Field Museum de Chicago (F). 

Resultados y discusión 

I. MORFOLOGÍA 

1. HÁBITO Y SISTEMA REPRODUCTIVO 

Las especies del género Smilax en Costa Rica son 

bejucos leñosos o herbáceos, dioicos, de pequeña y 

mediana longitud. Algunas plantas podrían alcanzar 

20 o 30 m de largo, según el soporte.

Abril 2004 

2. RIZOMA 

En Costa Rica no existen trabajos sobre la 

organografía del rizoma de Smilax. Según la morfología 

externa, el sistema subterráneo se divide en 

dos tipos: a) con engrosamiento tuberoso (Fig. 2 ), b) 

con nudos y entrenudos engrosados (Fig. 4). Smilax 

domingensis, S. panamensis y S. spissa presentan el 

primer tipo, que es un rizoma formado por una parte 

caulinar, de consistencia leñosa. El sistema caulinar 

subterráneo está cubierto por catafilos dispuestos dísticamente 

y raíces adventicias, que facilitan el 

enraizamiento. El color del rizoma varía según las 

condiciones ambientales. 

Smilax spinosa, S. vanilliodora y S. mollis presentan 

el segundo tipo, que es un rizoma con pequeños 

engrosamientos en los nudos y entrenudos y las raíces 

adventicias pueden ser cilíndricas o cuadrangulares 

como es el caso de S. vanilliodora. 

3. TALLOS 

Los tallos son cilíndricos en la mayoría de las 

especies (Fig 2); en S. vanilliodora son cuadrangulares, 

con o sin alas (Fig 11). La superficie puede ser 

estriada, como en S. spinosa, o lisa, como en la 

mayoría de las especies. 

Se halla pubescencia en S. mollis y S. subpubescens, 

especialmente en estructuras jóvenes de la 

planta. Los aguijones pueden ser grandes o pequeños. 

En S. panamensis son grandes y robustos en la parte 

inferior del tallo; en S. domingensis el tamaño 

depende de la edad del bejuco y en S. vanilliodora 

son aplanados. Dos especies no presentan aguijones: 

S. mollis y S. subpubescens. 

El color del tallo varía según el ambiente donde 

crezca la planta. En S. domingensis puede ser rojo a 

morado en la parte inferior; en la mayoría de las 

especies es verde. 

4. HOJAS 

La forma y el tamaño de las hojas varían entre los 

bejucos de una misma especie, aunque muchos 

autores utilizan estos caracteres para distinguir las 

especies de Smilax. Esta variación ha sido interpretada 

como respuesta a los factores ambientales; se trata 

de una plasticidad fenotípica (Andreata 1992) de origen 

genético o de polimorfismo foliar como es el 

caso de Smilax aspera (Vernet 1962). 


Todas las especies presentan hojas simples, alternas, 

glabras o pubescentes, con un pecíolo bien diferenciado. 

El pecíolo puede ser recurvado o acanalado, 

con o sin acúleos y con dos zarcillos. 

Los zarcillos son cilíndricos, robustos o herbáceos. 

Andreata (1997) menciona que las especies arbustivas 

o subarbustivas carecen de zarcillos. Diversas interpretaciones 

del origen de los zarcillos han sido 

resumidas por Domin (1911), y discutidas por Arber 

(1920), Clos (1857) y Glück (1901). Estos autores 

consideran que los zarcillos se originan de divisiones 

longitudinales congénitas del pecíolo (corisis). 

La vaina puede ser persistente en algunas especies 

o caduca en otras. En S. panamensis es persistente y 

prominente. Smilax subpubescens presenta un tomento 

amarillento persistente en la base del pecíolo. 

La lámina puede ser pubescente, como en S. mollis 

y en las hojas jóvenes o base del pecíolo de S. subpubescens. 

Las demás especies costarricenses presentan 

hojas glabras. La lámina es coriácea o membranácea 

en la mayoría de los casos; es coriácea en algunos 

bejucos de S. domingensis. 

La nervadura de la lámina es acródroma y varía de 

5 a 7 ó 7 a 9 nervios principales según la especie, con 

nervaduras reticuladas entre las principales, en la 

mayoría de las especies, a excepción de S. spissa que 

presenta nervaduras paralelas (Fig. 8). 

5. INFLORESCENCIAS 

5.1 Inflorescencias estaminadas 

La mayoría de autores considera que las inflorescencias 

de Smilax son umbelas, a excepción de De 

Candolle (1878) y Andreata (1980), que las interpretan 

como cimas umbeliformes. 

Este trabajo muestra que cada inflorescencia parcial 

es un racimo o una umbela solitaria (Fig. 2 y 5). 

El androceo está formado por seis estambres libres, 

alternando con los tépalos. Las anteras son oblongas, 

bitecas, basifijas, introrsas, con dehiscencia longitudinal. 

El tamaño de la antera varía en cada flor y 

umbela. Los filamentos son más largos que las 

anteras en la mayoría de las especies. 

La morfología del androceo en Smilax ha sido 

interpretada de diversas maneras. De Candolle (1878) 

y otros autores hacen una descripción de anteras confluentes, 

bitecas o monotecas. Cronquist (1981) 

describe las anteras tetrasporangiadas, bitecas y


Vol. 4, Nº 1 

Figura 1. Granos de polen de Smilax. A, B, C, D, E. Vista general; F. Detalle de la exina con gránulos y espínulas. 

A. S. domingensis; B. S. mollis; C. S. spinosa; D y F. S. subpubescens; E. S. vanilliodora.

Abril 2004 

uniloculares. Andreata (1997) las describe con tecas 

biesporangiadas, con o sin apículo, muchas veces 

dehiscentes, de forma oblonga, elíptica o linear. 

5.1.1 Polen 

Los primeros trabajos sobre la morfología del 

polen de Smilax iniciaron con De Candolle (1878) y 

Erdtman (1966). Andreata (1980) analiza seis especies 

de Brasil, utilizando microscopía electrónica. y lo considera 

pequeño (18.5-21.1 mm), apolar, inaperturado, 

esferoidal y espiculado. Roubik & Moreno (1991) 

estudiaron cinco especies de la Isla de Barro Colorado 

en Panamá y elaboraron una clave usando el tamaño 

de los granos, desplegamiento de exina y conspicuidad 

verrucosa. Furness & Rudall (1999) estudian el polen 

de S. hispida Muhl. ex Torr. y S. sieboldii Miq. y lo 

describen como inaperturado, esferoidal, con gránulos 

sobre la superficie y espínulas que varían en forma. 

En el presente estudio se analizaron cinco especies 

de Smilax registradas en Costa Rica, las que presentan 

granos de polen que varían entre 15 y 21 micras, 

son subglobosos, granulosos y espinosos. El tamaño 

varía entre plantas de la misma especie (Fig 1). 

5. 2 Inflorescencias pistiladas 

Las especies de Smilax de Costa Rica presentan 

seis tépalos, la mayoría de 4 mm, excepto en S. spinosa 

(2 mm), son blancos o crema con tres estaminodios 

oblongos a filiformes. Los estaminodios están 

constituidos por tejido de origen epidérmico, considerados 

estructuras vestigiales (Andreata 1997). 

El gineceo es sincárpico, tricarpelar, trilocular, con 

un óvulo en cada lóculo; es bitégmico, con placentación 

axilar, ovario ortótropo, súpero, glabro, 

subgloboso, con 3 estigmas, libres o parcialmente 

unidos, apicales, secos y papilosos. 

6. FRUTOS 

Los frutos son bayas globosas, que varían de tamaño 

entre los bejucos de la misma especie. El exocarpo es 

de color morado o rojo en Smilax domingensis, S. spissa 

y S. spinosa. En S. vanilliodora es rojo y en S. panamensis, 

S. mollis y S. subpubescens es anaranjado. Las 

especies de Smilax presentan tres fases de coloración: 

una inicial que es verde, una intermedia, que puede ser 

roja como en S. domingensis y crema en S. 

panamensis, y la fase final con el color de la maduración: 

rojo, morado, negro y anaranjado. 


El número de frutos varía según la infrutescencia. 

Las semillas son esféricas y varían de 1 a 3 por baya. 

Tratamiento sistemático 

Smilax L., Sp. Pl. ed. 2: 1028. 1753; Gen. Pl. ed. 455. 

1754; 

Parillax Raf., Medical Fl. U.S. 2264. 1828. 

OTRAS REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS: Duham, Traité 

Arbr. Arbust. 1: 233. 1801; Poir., Encycl. Met. Bot. 6: 

464. 1804; Endl., Gen. Pl. 1184. 1836; Griseb. in Mart., 

Fl. Bras. 3(1): 3. 1842; Torrey, Fl. New York 2: 302. 

1843; Kunth, Enum. Pl. 5: 160. 1850; A. DC. in A. & 

C. DC., Monogr. Phan. 1: 45. 1878; Benth., Fl. Austral. 

7: 6. 1878; Benth. & Hook., Gen. Pl. 3(1): 763. 1880; 

Engler, Nat. Pflanzen. 2(5): 88. 1888; Hook., Fl. Brit. 

Ind. 6: 302. 1892; Morong, Bull. Torrey Bot. Club 

21(10): 420. 1894; Vander., Adansonia 10: 74. 1871- 

73; Koyama, Fl. Taiwan 5: 110. 1979; Andreata, Arq. 

Jard. Bot. Rio de Janeiro 24: 179. 1980; Koyama, Fl. 

Cambodge, Laos et Viêt-Nam 20: 69. 1983; Andreata, 

Hoehnea 11: 114. 1984; Guaglianone & Gattuso, Bol. 

Soc. Argent. Bot. 27(1-2): 105. 1991; Andreata, 

Pesquisas, Bot. 47: 1-243. 1997. 

TIPO DEL GÉNERO: Smilax aspera L. (cf. Britton & 

Brown 1913) (IDC microficha 695.1182.6.II.7) 

Bejucos subleñosos, rara vez herbáceos, dioicos, que 

se originan de un rizoma delgado o grueso. Tallos 

redondos o cuadrados, pubescentes o glabros, que 

usualmente trepan mediante pares de zarcillos que se 

originan en los pecíolos y a menudo poseen aguijones 

en tallos. Hojas alternas, con 5 a 9 nervios paralelos, o 

triplinervias, con el par interior saliendo un poco arriba 

de la base y conectadas por nervaduras reticuladas 

(paralelas en S. spissa), láminas coriáceas, cartáceas o 

membranáceas. Inflorescencia dispuesta en umbelas 

axilares, a veces racemosas, pedúnculo cilíndrico o subcilíndrico. 

Flores estaminadas, pequeñas, blancas, con 

6 tépalos libres, iguales, estambres 6, libres, anteras 

bitecas, basifijas, más largas o más cortas que los filamentos, 

polen granuloso-espinoso. Flores pistiladas 

pequeñas, blancas, con ovario súpero, tricarpelar, 1 ó 2 

óvulos en cada lóculo, estaminodios presentes. Fruto 

una baya globosa, negra, púrpura, roja o anaranjada, 

con 1 a 3 semillas rojizas o negras (Cronquist 1981, 

Watson & Dallwitz 1992, Huft 1994, Andreata 1997).


Vol. 4, Nº 1 

CLAVE DICOTÓMICA CON CARACTERES VEGETATIVOS DE SMILAX DE COSTA RICA 

1. Plantas pubescentes o casi glabras en la madurez, sin aguijones en el tallo.................................................................... 2 

2. Ramas obtusamente cuadrangulares, glabras en la madurez o a veces con poco tomento rojo en la base de los 

pecíolos .............................................................................................................................................. S. subpubescens 

2. Ramas cilíndricas, variadamente pilosas, pubescencia tomentosa ................................................................ S. mollis 

1. Plantas glabras, frecuentemente armadas con aguijones en el tallo..................................................................................3 

3. Tallos cuadrangulares, casi siempre con alas ...................................................................................... S. vanilliodora 

3. Tallos cilíndricos, nunca con alas................................................................................................................................ 4 

4. Hojas con nervaduras terciarias paralelas ............................................................................................... S. spissa 

4. Hojas con nervaduras terciarias reticuladas........................................................................................................... 5 

5. Tallos superiores en zigzag, hojas con 5 nervios desde la base; rizoma con entrenudos engrosados ................ 

............................................................................................................................................................ S. spinosa 

5. Tallos superiores casi rectos, hojas con 5 a 9 nervios desde la base; rizoma tuberoso...................................... 6 

6. Hojas con 5-7 nervios desde la base, rizoma rojo; tallos inferiores de color rojo o morado...... S. domingensis 

6. Hojas con 7-9 nervios desde la base; rizoma blanco; tallos inferiores de color verde............ S. panamensis 

CLAVE DICOTÓMICA PARA ESPECÍMENES CON FLORES ESTAMINADAS Y PISTILADAS DE SMILAX DE COSTA RICA 

1. Tépalos ca. 2 mm de largo ................................................................................................................................ S. spinosa 

1. Tépalos ca. 3.5-6 mm de largo........................................................................................................................................ 2 

2. Plantas pubescentes, glabras en la madurez, a veces con poca pubescencia en la base de los pecíolos, sin aguijones 

en el tallo.................................................................................................................................................................... 3 

3. Ramas obtusamente cuadrangulares, glabras en la madurez o a veces con poco tomentoso rojo en la base de los 

pecíolos ........................................................................................................................................ S. subpubescens 

3. Ramas cilíndricas, variadamente pubescentes ......................................................................................... S. mollis 

2. Plantas glabras, armadas con aguijones en el tallo..................................................................................................... 4 

4. Tallos cuadrangulares, casi siempre con alas ................................................................................ S. vanilliodora 

4. Tallos cilíndricos, nunca con alas.......................................................................................................................... 5 

5. Pedúnculos más cortos que el pecíolo subyacente .................................................................... S. domingensis 

5. Pedúnculos más largos que el pecíolo subyacente, umbelas en racimos o solitarias......................................... 6 

6. Hojas con 7 nervios desde la base, conectados por nervaduras reticuladas, anteras más largas que los 

filamentos ............................................................................................................................... S. panamensis 

6. Hojas con 5 nervios desde la base, conectados por nervaduras paralelas, anteras más cortas que los 

filamentos ........................................................................................................................................ S. spissa 

CLAVE DICOTÓMICA PARA ESPECÍMENES CON FRUTOS DE SMILAX DE COSTA RICA 

1. Plantas pubescentes o casi glabras en la madurez, sin aguijones..................................................................................... 2 

2. Ramas obtusamente cuadrangulares, glabras en la madurez o a veces con poco tomento rojo en la base de los 

pecíolos; frutos anaranjado brillante; pedúnculo aplanado............................................................... S. subpubescens 

2. Ramas cilíndricas, variadamente pubescentes, tomentosas; frutos anaranjados; pedúnculo cilíndrico......... S. mollis 

1. Plantas glabras, frecuentemente armadas con aguijones ................................................................................................. 3 

3. Tallos cuadrangulares, casi siempre con alas; frutos rojos o negros ................................................... S. vanilliodora 

3. Tallos cilíndricos, nunca con alas, frutos rojos o anaranjados.................................................................................... 4 

4. Pedúnculo más corto que el pecíolo subyacente................................................................................................... 5 

5. Tallos superiores en zigzag; hojas con 5 nervios desde la base ......................................................... S. spinosa 

5. Tallos superiores casi rectos; hojas con 5-7 nervios desde la base............................................. S. domingensis 

4. Pedúnculo más largo que el pecíolo subyacente................................................................................................... 6 

6. Frutos anaranjados; hojas con 7 nervios desde la base, conectados por nervaduras reticuladas; brácteas 

florales persistentes ..................................................................................................................... S. panamensis 

6. Frutos rojos; hojas con 5 nervios desde la base, conectados por nervaduras paralelas; brácteas florales no 

persistentes .......................................................................................................................................... S. spissa

Abril 2004 

1. Smilax domingensis Willd., Sp. Pl. 4: 783. 1806. 

TIPO: Santo Domingo. Porto Rico. Richard s.n. 

(holotipo B, IDC microficha 7440.1338. II.2; IDC 

microficha 7440.1338.II.3). FIG. 2 

Smilax schlechtendalii Kunth, Enum. Pl. 5: 224. 

1850. TIPO: México. In sylvis Misantlae et 

prope Chiconquiaco, Schiede & Deppe s.n. 

(holotipo, B; isotipo, K, MO!, W). 

Smilax engleriana Apt, Repert. Spec. Nov. Regni 

Veg. 18: 407. 1922. TIPO: Costa Rica. Santa 

Rosa del Copey, alt. 1100 m, Tonduz 11732 (lectotipo 

designado por Killip y Morton, Publ. 

Carnegie Inst. Wash. 461: 266. 1936, B; isolectotipos, 

BM, CR!, US!, W); syn. nov. 

Smilax microscola (B. L. Rob.) Killip & C. 

Morton, Publ. Carnegie Inst. Wash. 461: 267. 

1936. Smilax domingensis var. microscola B. L. 

Rob., Proc. Amer. Acad. Arts 35(16): 323. 1900. 

TIPO: México. Chiapas: between Tumbla and El 

Salto, 29 Oct 1895, E.W. Nelson 3392 (holotipo, 

GH!; isotipo, US!). 

Smilax kunthii Killip & Morton, Publ. Carnegie 

Inst. Wash. 461: 269. 1936. Smilax floribunda 

Kunth, Enum. Pl. 5:229. 1850. TIPO: Ecuador. 

Ruiz & Pavón s.n. & Hartweg s.n. (Sintipo B, 

foto 10062 F!). 

Smilax caudata Lundell, Wrightia 3(8): 162. 1966. 

TIPO: Guatemala. Alta Verapaz: on Sebol- 

Coban Rd., between km 285-286, between 

Chiraete and Chapultepec Farm, in high forest, 

24 May 1964, E. Contreras 4783 (holotipo, LL; 

isotipo, MO!). 

Rizoma con engrosamiento tuberoso, rojo o morado; 

escamas coriáceas, persistentes; raíces cilíndricas 

con escamas coriáceas, caducas. Tallos cilíndricos, 

glabros, armados con aguijones recurvados en la parte 

inferior, inerme en la parte superior, rojos en la base. 

Hojas ovadas a lanceoladas, membranáceas a 

coriáceas o cartáceas, 5.5-13 x 2-8.7 cm; 5-7 nervios 

desde la base conectados por nervaduras reticuladas, 

conspicuas; ápice acuminado o brevicuspidado, base 

aguda, a veces redondeada, margen entero, ocasionalmente 

hojas nuevas rojas; pecíolos 0.7-2 cm de largo. 

Umbelas solitarias, las estaminadas con pedúnculo 

cilíndrico o subcilíndrico, 0.1-1 cm, más corto que el 

pecíolo subyacente; tépalos 3.5-7 mm, filamentos 2- 

3 mm, anteras 1-2 mm, más cortas que los filamentos; 


las pistiladas con pedúnculo cilíndrico o subcilíndrico, 

0-1.2 cm; tépalos 4-5 mm. Bayas 6-10 mm de 

diámetro, rojas, moradas o negras. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Smilax domingensis es una 

especie abundante que se encuentra distribuida en 

bosques húmedos, montanos y premontanos a una 

elevación de 0-1800 m (Fig. 3). Se distribuye desde 

Veracruz y Oaxaca hasta Panamá y las Antillas. 

NOMBRES COMUNES Y USOS. Cuculmeca roja, cuculmeca 

morada, bejuco de membrillo, corona de Cristo, 

raíz de zarzaparrilla, espino de corona (Nelson 1985). 

El rizoma se usa como depurativo, diurético, 

antianémico, vigorizador, sudorífico, antirreumático 

(Núñez 1982, Ocampo 1997), antiblenorrágico, antiherpético 

y para otras enfermedades de la piel (Núñez 

1982). En Honduras es usado para hacer canastas 

(Nelson 1985). 

Smilax domingensis se caracteriza por el rizoma 

tuberoso rojo o morado, tallos cilíndricos con aguijones, 

las hojas jóvenes rojas, pedúnculos más cortos 

que el pecíolo subyacente, tépalos ca. 4 mm, bayas 

rojas o moradas. 

Es una especie muy variable y de distribución 

amplia. Los nombres que se consideran sinónimos se 

Figura 3. Distribución geográfica de Smilax domingensis 

(=) y S. mollis (5) en Costa Rica.


Vol. 4, Nº 1 

Figura 2. Smilax domingensis Willd.: A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Frutos, E. Semillas, F. Rama 

fértil con agallas y flores, G. Tallo y rizoma.

Abril 2004 

le han dado a especímenes que presentan variaciones 

morfológicas en la textura de las hojas y el color de 

los tallos. Apt (1922) describe S. engleriana y la 

diferencia de S. domingensis por sus hojas coriáceas, 

las nervaduras principales conspicuas e impresas en 

el haz, conectadas por nervaduras inconspicuas. Sin 

embargo, en la descripción no hace mención de los 

frutos. 

La plasticidad fenotípica de Smilax, en particular 

de la parte vegetativa, ha sido ya discutida por 

muchos investigadores. Andreata (1980) y Andreata 

& Pereira (1990) realizan una revisión de las especies 

brasileñas de Smilax y encuentran una gran variación 

entre las hojas juveniles y las hojas adultas, tanto en 

la forma como en su consistencia. La lámina foliar se 

torna más gruesa, gradualmente a lo largo del desarrollo 

de las hojas, es generalmente membranácea en 

las hojas juveniles, pasando de papirácea a coriácea. 

Además, estos autores mencionan que algunos caracteres 

como el tamaño de los entrenudos, la longitud 

del pecíolo, la forma del limbo, el tipo de base, el 

ápice y las nervaduras del limbo, son relevantes desde 

el punto de vista taxonómico si se usan en conjunto, 

para la fase de plántula o plantas jóvenes. 

Esta variabilidad morfológica es discutida por 

Ellen-MacDonald & Chinnappa (1988), quienes sugieren 

que ésta se debe a una variación de cariotipos. 

Algunas de estas expresiones en la variación probablemente 

representan frecuencias de genes fijados en 

algunas poblaciones. Sin embargo, aún no se conocen 

estudios de Smilax que apoyen estas hipótesis. 

Otro factor que juega un papel importante son las 

condiciones ambientales que varían entre los diferentes 

microhábitats. Ferrufino (datos inéditos) realiza 

un estudio de fenología de cinco especies de 

Smilax en tres sitios de Costa Rica y concluye que la 

luz y la precipitación son factores que influyen en la 

producción de hojas, flores y frutos. Además, observa 

que los bejucos que crecen en lugares abiertos tienen 

hojas más largas y anchas en comparación con las 

plantas que crecen en zonas sombreadas. 

Huft (1994) describe S. kunthii con base en material 

de Centroamérica. He identificado el material 

examinado por este autor, y las colecciones de 

Williams & Molina 11775, Rohweder 989, Stevens 

15107 y Hammel 6054 (todos en MO) son 

especímenes en floración de S. domingensis. El 


tamaño y el color de los frutos están basados en 

Antonio 715 (MO), identificado como S. subpubescens. 

En el Field Museum de Chicago se encuentra una 

foto (# 10062) que al parecer es el tipo de Smilax 

floribunda Kunth, recolectado en Perú por Ruiz, que 

posee características morfológicas de S. domingensis. 

En la descripción, Kunth (1850) hace énfasis en dos 

especímenes recolectados por Hartweg y Ruiz & 

Pavón en Perú. Sin embargo, Killip & Morton (1936) 

hacen mención del espécimen recolectado por 

Hartweg; y rectifican que el tipo de esta especie fue 

recolectado en Ecuador (“Perú es un error”). Además, 

esta sinonimia es apoyada por la descripción de S. 

floribunda que coincide con la caracterísiticas morfológicas 

de S. domingensis. 

ESPECÍMENES EXAMINADOS. BELICE. Corozal: 1 mi 

west of northern highway on secondary road, 1 mi north of 

Buena Vista, 100 ft., 23 Jun 1973 (fr), Croat 24962 (MO). 

COLOMBIA. Valle: El Cairo, Cerro del Inglés (Cordillera 

Occidental, Serranía de los Paraguas, a 1 hora en jeep de El 

Cairo), 2400-2500 m, 30 dic 1986 (fr), Silverstone-Sopkin et 

al. 2789 (MO). ECUADOR. Bolívar: along first 15 km of 

road Chillanes-El Tambo, 01°57'S, 79°06'W, 2400 m, 18 jul 

1991 (fl), van der Werff et al. 12418 (MO). Carchi: Tulcan, 

Parroquia Chical, sector Gualpi medio, Reserva Indígena 

Awá, sendero a San Marcos al N de la casa comunal, 01°02'N, 

78°16'W, 1000 m, 23-27 may 1992 (fr), Tipaz et al. 1099 

(MO); Cerro Golondrinas, on crest of N ridge low elfin forest, 

0°51'30"N, 78°8'20"W, 2880-2950 m, 24 jul 1994 (fl), Boyle 

et al. 3413 (MO). Loja: Cerro Villonaco, new road Loja-La 

Toma, km 24.7, turnoff toward Loja on old road, km 6, 

4°00'03"S, 79°16'30"W, 2430 m, 17 abr 1994 (fr), Jørgensen 

et al. 295 (MO); Amaluza, 5-10 km ENE of the village (Pasaje 

del Romerillo), 4°34'S, 79°23'W, 2400-2700 m, 23 set 1976 

(fl), Øllgaard & Balslev 9742 (MO). COSTA RICA. Alajuela: 

San Ramón, Estación Biológica Alberto Manuel Brenes, 

Cuenca del Aranjuez, Arancibia, Fila Cidral, entrando por 

Corazón de Jesús, 10°14'30"N, 84°42'00"W , 1400 m, 11 oct 

1997 (fr), González 2042 (USJ); San Carlos, Peñas Blancas, 

1100 m, 10 jul 1985 (fr), Haber & Bello 1946 (MO); 15 km 

NNW of San Ramón by road 2.5 km N of Balsa on road to 

San Lorenzo, 10°11'N, 84°30'W, 1050-1100 m, 24 abr 1983 

(fl), Liesner & Judziewicz 14711 (MO); Upala, Bijagua, El 

Pilón, Cerro La Carmela entre Río Celeste y cabeceras del Río 

Chimurria, 10°43'15"N, 84°59'45"W, 1000 m, 11 jul 1988 (fr), 

Herrera 2055 (MO); collected along the Rio Zapote about 1 

km from the small town of Zapote 10°45'N, 85°05'W, 500 m, 

5 ene 1975 (fr), Taylor 18164 (US). Cartago: Turrialba, San 

Juan Norte, Montaña de los Ernest, 800 m, 1 ene 1977 (fr), 

Gómez-Laurito 2229 (USJ); 5.5 km S of Tapantí, 1400 m, 8 

oct 1967 (fl), Lent 1394 (MO). Guanacaste: Liberia, Parque 

Nacional Rincón de la Vieja, Cordillera de Guanacaste,


Vol. 4, Nº 1 

Rincón de la Vieja, 10°45'00"N, 85°18'00"W, 600 m, 10 mar 

1996 (fr), Espinosa 1448 (INB); Liberia, Parque Nacional 

Guanacaste, Estación Pitilla, Sendero El Mismo, Finca La 

Pasmompa, 11°02'00"N, 85°24'30"W, 700 m, 9 dic 1990 (fr), 

Ríos 215 (CR, INB, MO); Liberia, Parque Nacional 

Guanacaste, Estación Pitilla, 10°05'02"N, 84°25'40"W, 700 m, 

1 abr 1991 (fl), Moraga 382 (USJ); La Chirripa ridge, 4 km 

NE El Dos de Tilarán, cloud forest exposed to Atlantic trade 

winds, continental divide, 10°25'N, 84°53'W, 1000 m, 8 may 

1986 (fl), Haber et al. 4853 (MO); upper Río Chiquito valley, 

5 km N of Santa Elena, Atlantic slope rain forest, 10°25'N, 

84°50'W, 1300 m, 13 abr 1986, Haber 4373 (MO). Heredia: 

Parque Nacional Braulio Carrillo, Estación Magsasay, bosque 

primario y orillas de potreros, 10°24'03"N, 84°03'03"W, 200 

m, 9 jul 1990 (fl), Alcázar et al. 140 (INB); Sarapiquí, Puerto 

Viejo, Finca La Selva, the OTS Field Station on the Río 

Puerto Viejo just E of its junction with the Río Sarapiquí, 100 

m, 25 jul 1986 (fl), Wilbur 40453 (CR); Sarapiquí, Chilamate, 

Finca El Bejuco, 10°27'35"N, 84°03'55"W, 75 m, 30 ene 1990 

(fr), Chacón 700 (CR, MO). Limón: Reserva Indígena 

Talamanca Sukut, desembocadura del Río Sukut en el Río 

Urén, camino al sureste hacia Purisqui, 9°23'30"N, 

82°58'00"W, 650 m, 7 jul 1989 (fr), Hammel et al. 17592 

(MO); Parque Tortuguero, Estación Cuatro Esquinas, primer 

islote Laguna Tortuguero, frente a la casa-estación, 10°31'N, 

83°30'W, 4 m, 24 nov 1987 (fr), Robles 1316 (CR, MO); 

Talamanca, Distrito Bratsi, Reserva Indígena Bribri, 1.7 km 

southwest of Kivut, 6.1 km southwest of Alto Lari, 

09°23'35"N, 83°05'50"W, 1400-1500 m, 10 mar 1992 (fr), 

Schmidt & Aguilar 644 (CR, INB, MO). Puntarenas: Coto 

Brus, Parque Internacional La Amistad, Cordillera de 

Talamanca, Estación Altamira, Sendero Los Gigantes, 

09°01'30"N, 82°57'40"W, 1680 m, 14 abr 1995 (fl), Angulo 

177 (INB); Coto Brus, Parque Internacional La Amistad, 

Cordillera de Talamanca, Las Cruces, 08°47'20"N, 

82°58'30"W, 1200 -1300 m, 30 jun 1995 (fr), Angulo 393 

(INB); Golfito, Península de Osa, Parque Nacional 

Corcovado, Sendero Sirena, 8°28'48"N, 83°35'28"W, 1 - 100 

m, 25 mar 1997 (fr), Aguilar 5012 (INB); Fila El Tigre, SE of 

Las Alturas, ca. 8°56'N, 82°51'W, 1350-1450 m, 29 ago 1983 

(fr), Davidse 24212 (CR, MO); Puntarenas, Reserva Biológica 

Monteverde, Cordillera de Tilarán, Estación Aleman’s, 

10°17'40"N, 84°45'00"W, 1000 m, 10 set (fr), Bello et al. 

4045 (INB); Punta Banco, 0-200 m, 22 ago 1988 (fr), 

Chavarría et al. 282 (CR, MO); Monteverde Cloud Forest 

Reserve, Pacific slope, lower montane wet forest, 10°20'N, 

84°50'W, 1500 m, 12 ene 1986 (fl), Haber 4250 (MO). San 

José: Aserrí, Zona Protectora Cerros de Escazú, Cerros 

Escazú, La Carpintera, Cerro Daser, Alto Hierbabuena, 

9°50'30"N, 84°07'20"W, 2200 m, 1 abr 1995 (fl), Morales & 

Bohs 3852 (CR, INB, MO); El Pizote, San Ramón de Tres 

Ríos, 1500 m, 26 jun 1984 (fr), Herrera & Gómez 22861 (CR, 

MO, USJ); Vasquez de Coronado Cantón, Braulio Carrillo 

National Park, along San José to Siquerres Hwy., along trail to 

Río Sucio, site of the Old Carrillo Station, 10°09'50"N, 

83°57'10"W, 600-700 m, 30 ago 1996 (fr), Croat 78782 (MO); 

Cerros de La Palma, 1300 m, dic 1913 (fl), Jiménez 938 (US). 

EL SALVADOR. Santa Ana: Hacienda Montecristo n. 

Metapán, 2200 m, 27 ago 1951, Rohweder 989 (MO). 

GUATEMALA. Baja Verapaz: Purulhá, along highway CA 

14 between El Progreso and Cobán, 3 mi S Purulhá, 17 mi N 

of junction with Hwy, 17 to Salamá and San Jerónimo vic. km 

marker 160, W of hwy, 15°13'N, 90°12'W, 1620-1720 m, 26 

ene 1987 (fr), Croat et al. 63767 (MO). Izabal: Puerto Barrios, 

en el Río Las Escobas, camino entre Puerto Barrios y Punta de 

Palma, 120 m, 10 set 1988 (fl), Martínez et al. 23657 (MO). 

Petén: Camino para Puerto Méndez, km 129, lado sureste del 

camino, 8 ene 1972 (fr), Ortíz 2182 (MO); Dolores, about 3 

km se.e. in pineland, 19 ago 1961 (fl), Contreras 2722 (MO). 

HONDURAS. Comayagua: In thicket near El Rincón, 10 

miles W of Siguatepeque, 1400-1500 m, 24 jul 1936 (fr), 

Yuncker et al. 6051 (MO). Francisco Morazán: Cloud forest 

area in mountains above San Juancito, 2000 m, 25 mar 1948 

(fl), 11775 (MO). Olancho: Montaña de Chifiringo, bosque de 

hoja ancha, 20 km S de Campamento, 1079 m, 6 oct 1979 (fr), 

Soto 127 (MO). MÉXICO. Chiapas: Acagoyagua, Escuintla, 

12 ago 1947 (bo, fl), Matuda 16826 (USJ); Trinitaria, slopes 

with montane rain forest Liquidambar, Magnolia, Vochysia, 

east of Laguna Tzikaw, Monte Bello National Park, 1300 m, 

23 ene 1973 (fr), Breedlove 32258 (MO). Veracruz: San 

Andrés Tuxtla, 2 km al N de la Estación de Biología Tropical 

Los Tuxtlas, 18°34'N y18°36'N , 95°04'W y 95°09'W, 25 set 

1986 (fl), Cedillo 3682 (MO); forest near Jalapa, 4000 ft, 21 

may 1899 (fl), Pringle 7780 (MO). NICARAGUA. Boaco: 

Hacienda Rancho Grande, ca. 16 km al N de Comoapa, 

12°33'N, 85°30'W, 27 dic 1984 (fr), Estrada et al. 99 (MO). 

Jinotega: N slope of Volcán Yalí, ca. 13°15'N, 86°10'W, 

1200-1400 m, 25 oct 1979 (fr), Stevens et al. 15107 (MO). 

Matagalpa: Camino al cerro Carlota a 2 km de la carretera al 

Tuma, 12°58'N, 85°52'W, 1040-1100 m, 5 mar 1982 (fr), 

Moreno 15632 (MO). PANAMÁ. Bocas del Toro: N coast of 

Escudo de Veraguas Island, 9°05'N, 81°35'2W, 5 m, 8 ago 

1987 (fl), McPherson 11434 (MO). Chiriquí: Vicinity of 

Fortuna Dam, along trail across valley S of lake, forest, 

8°45'04"N, 82°15'04"W, 1300-1400 m, 7 feb 1987 (fr), 

McPherson 10392 (MO). 

2. Smilax mollis Humb. & Bonpl. ex Willd., Sp. Pl. 

4: 785. 1806. TIPO: MÉXICO. Veracruz: Jalapa, 

Humboldt & Bonpland s. n. (holotipo, P, [IDC microficha 

1440.1338.II.9). FIG. 4 

Smilax angustiflora A. DC., Monogr. Phan.1: 67. 

1878. TIPO: COSTA RICA. Alto de la Cruz, en 

Azarí, Hoffmann 575 (holotipo, B; isotipos [fragmentos 

G, US!], [foto 10052 F!]); syn. nov. 

Smilax candelariae A. DC., Monogr. Phan. 1: 70. 

1878. TIPO: Costa Rica. Candelaria, planta 

femenina, Hoffmann s. n. (holotipo, B [foto 

10054 F!]); syn. nov. 

Smilax mollis var. acuminata A. DC., Monogr. 

Phan. 1: 68. 1878. TIPO: México. Veracruz, 

Orizaba, Bourgeau 3038 (K, P [fragmento US,

Abril 2004 

imagen digital US!]). 

Smilax ovata Sessé & Moc., Fl. Mexic. (ed. 2) 232. 

1894. TIPO: México, Sessé & Mociño s. n. (G). 

Smilax gymnopoda Apt, Repert. Spec. Nov. Regni 

Veg. 18: 401. 1922. TIPO: México. Veracruz, in 

Dickichten nahe Jalapa in einer Höhe von 1200 

m, Pringle 8130 (lectotipo designado aquí, GH!; 

isolectotipos, MO!, BM, BR, F, G, GH!, K, NY, 

P - imagen digital US!, W). 

Smilax gentlei Lundell, Wrightia 3(8): 163. 1966. 

TIPO: Belize. Toledo Distr., between Orange 

Point and Rio Moho in broken cohune ridge, 12 

Abr 1952, P.H. Gentle 7648 [holotipo LL, isotipos 

LL - foto MO!, S (2 hojas)]. 

Smilax mollis var. hirsutior Killip & C. Morton, 

Publ. Carnegie Inst. Wash. 461: 288. 1936. 

Smilax hirsutior (Killip & C. Morton) C. Morton. 

TIPO: Costa Rica. Cartago, Río Turrialba, Mar 

1894, J.D. Smith 4971 (holotipo US!); syn. nov. 

Rizoma con engrosamientos en los nudos, sin escamas, 

raíces cilíndricas, cubriendo casi todo el rizoma. 

Tallos cilíndricos, finamente pubescentes, a veces 

glabrescentes, inermes, ocasionalmente morados 

cuando están jóvenes. Hojas ovadas a lanceoladas, 7- 

19 x 3.4-11 cm, 7 nervios, raramente trinervada, los 

nervios primarios prominentes en el envés, conectados 

por nervaduras reticuladas, conspicuas, ápice 

agudo, base cordada, margen entero, muy pubescentes 

las jóvenes, finamente tomentosas las adultas, 

cartáceas a subcoriáceas, algo rugosas; pecíolo 0.8-3 

cm de largo, pubescente. Umbelas solitarias, rara vez 

saliendo tres de la base de la rama floral; las estaminadas 

con pedúnculo cilíndrico, 0.5-2.5 cm, más 

largo o más corto que el pecíolo subyacente; tépalos 

4-7 mm, filamentos 2-4 mm, anteras 1-1.5 mm, más 

cortas que los filamentos; las pistiladas con pedúnculo 

aplanado, 0.3-3 cm, más largo o corto que el pecíolo 

subyacente; tépalos 3-3.5 mm. Bayas 0.5-1 cm de 

diámetro, anaranjadas. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Se encuentra en bosques 

húmedos, montanos, premontanos, entre 0 y 2000 m 

(Fig. 3). Se distribuye desde México hasta Panamá 

(Huft 1994). 

Smilax mollis se caracteriza por tallos cilíndricos, 

ausencia de aguijones y hojas jóvenes muy pubes- 


centes. En lugares abiertos sus hojas suelen ser 

grandes, rugosas y casi glabras o finamente pubescentes, 

con agallas cilíndricas pubescentes, pedúnculos 

iguales o más largos que el pecíolo subyacente, 

tépalos 3-7 mm y frutos anaranjados. 

Esta especie presente una alta variabilidad morfológica, 

tanto vegetativa como reproductiva. A continuación 

se presentan varias observaciones: 

1. Los nombres que se consideran sinónimos presentan 

ejemplares tipo que se diferencian por la cantidad 

de pubescencia y el tamaño de las hojas. De 

Candolle (1878) señala que Smilax angustiflora se 

encontraba mezclada en el herbario con S. tomentosa; 

que se diferencia de ésta por las hojas pálidas 

ovadas, con base laminar cordada, nervios medios 

profundamente connados, consistencia menos 

firme, pedúnculos más largos, botones reducidos y 

anteras mutiladas. Smilax candelariae también 

había sido confundida en herbario con S. tomentosa 

Kunth y S. angustiflora. 

De Candolle (1878) enfatiza que S. candelariae es 

diferente de S. tomentosa y S. angustiflora por las 

semillas, aunque sólo hace mención de los frutos 

negruzcos cuando están secos y los pedúnculos 

más cortos que los pecíolos subyacentes. Además, 

sugiere que tal vez el espécimen con frutos de 

Jurgensen 563 (FI-W), recolectado en México, 

podría ser también esta especie. Huft (1994) indica 

que es endémica en Costa Rica y completa la 

descripción con las bayas de color rojo. 

2. Al examinar ejemplares de S. mollis se observa que 

en la parte superior del tallo de especímenes de 

herbario se encuentran pedúnculos muy cortos en 

comparación con los pecíolos, pero en las ramas viejas 

los pedúnculos son más largos que los pecíolos; 

por tanto, esto forma parte de una variación morfológica. 

La falta de observaciones en el campo y la 

poca disponibilidad de especímenes recolectados en 

años anteriores ha hecho que algunas especies no 

hayan sido apropiadamente descritas. Ejemplo de 

ello son S. mollis var. acuminata y S. hirsutior. 

3. La dioecia de Smilax ha representado un problema 

en las descripciones. Smilax hirsutior y S. angustiflora 

están descritas sólo con base en flores masculinas 

y S. candelariae con base en flores femeninas. 

El tipo de la última está representado sólo por


Vol. 4, Nº 1 

Figura 4. Smilax mollis Humb. & Bonpl.: A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Frutos, E. Semillas, 

F. Rama joven, G. Rama fértil con agallas y botones, H. Tallo y rizoma

Abril 2004 

fragmentos de la planta. Ambas situaciones han 

representado un problema en la descripción de 

especies nuevas, porque sus caracteres se han basado 

en un solo sexo de la planta. 

4. El color de los frutos se ha usado para distinguir las 

especies pubescentes de Smilax. Esta coloración 

del fruto quizás depende de la observación del 

recolector, del ambiente donde se desarrolla el 

bejuco y de la variación del color de las bayas a lo 

largo del desarrollo. 

ESPECÍMENES EXAMINADOS. BELICE. Cayo: Chaa Creek, 

17°06'N, 89°04'W, 8 dic 1992 (fr), Arvigo & Cocon 694 

(MO). COSTA RICA. San Ramón, Reserva Biológica Alberto 

Manuel Brenes, Cordillera de Tilarán, camino de entrada a la 

estación, 10°13'00"N, 84°37'00"W, 850 m, 6 jun 1998 (fr), 

Gómez-Laurito et al. 13120 (USJ); 3 1/2 km west of Fortuna, 

2 km nortwest of New Volcán Arenal along its sloping base, 

10°28'N, 84°41'W, 1500 m, 5 ago 1972 (fr), Taylor & Taylor 

11678 (MO); along road from San Ramón northward through 

Balsa, ca. 5.7 km N of bridge over Quebrada Volio, SW of 

road, 10°08'N, 84°29'W, 1100-1150 m, 10 set 1979 (fr), 

Stevens 14176 (MO). Cartago: Cartago, Pacayas, 1170 m, 29 

jun 1952 (fr), Córdoba 168 (USJ); Turrialba, Instituto 

Interamericano de Ciencias Agrícolas, 600 m, 28 set 1950, 

León 2778 (USJ); Forest on Casa de Tejas Ridge, above Río 

Gato, 9°47'N, 83°41'W, 800 m, 15 set 1973 (fr), Lent 3606 

(CR). Heredia: Sarapíquí, Puerto Viejo, Finca La Selva, the 

OTS Field Station on the Río Puerto Viejo just E of its junction 

with the Río Sarapiquí, 100 m, 4 jun 1985 (fr), Jacobs et 

al. 3241 (USJ); Parque Nacional Braulio Carrillo, Estación El 

Ceibo, sendero 100 m después del puesto, en potrero de caballos, 

10°19'40"N, 84°04'50"W, 500 m, 7 nov 1992 (fl), 

Fernández 461 (INB, MO). Guanacaste: Liberia, Parque 

Nacional de Guanacaste, Estación Cacao, bosque primario, 

potreros y orilla de bosque, 10°55'45"N, 85°28'15"W, 1100 m, 

3 nov 1990 (fr), Alcázar 31 (CR); Parque Nacional 

Guanacaste, La Cruz, Estación Pitilla 10°59'26"N, 

85°25'40"W, 700 m, 7 nov 1990 (fr), Moraga 152 (INB); 

Tilarán, Cuenca del San Carlos, sector Lago Cote, en bosque 

primario y secundario, 10°34'15"N, 84°54'50"W, 680 m, 12 

mar 2000 (fr), Chávez 305 (INB); P. N. Rincón de La Vieja, 

Sector el Canal, a 1 km aguas arriba de la administración, 

10°46'09"N, 85°17'25"W, 900 m, 2 abr 1991 (fr), Rivera 1214 

(INB, MO). Limón: Borde de Lago Dabagri, 1100 m, 4 nov 

1984 (bo, fl), Gómez et al. 23139 (CR); Limón, Cuenca del 

Estrella, Penhurst, Finca Júpiter, 9°43'52"N, 82°55'56"W, 200 

m, 18 ene 1997 (fr), Rodríguez 1912 (CR, INB, MO); 

Talamanca, Reserva Indígena Kekoldi, en el camino hacia la 

casa de doña Ana, 9°37'N, 82°43'W, 150 m, 10 jun 1996 (fl), 

Dalle & Barrantes 102 (USJ); Cerro Coronel, E of Río 

Zapote, E of new road, higher parts of hill ca 1.5 km from Río 

Colorado, 10°40'N, 83°40'W, 40-100 m, 13 mar 1987 (fr), 

Stevens et al. 24757 (MO). Puntarenas: Coto Brus, San Vito 

de Java, Estación Biológica Las Cruces, 20 m uphill from 

Trail Marker ft 12, 8°47'8.9"N, 82°57'29.3"W, 1030 m, 8 mar 


1996 (fr), Krings 254 (USJ); Garabito, Reserva Biológica 

Carara, Valle del Tárcoles, Bijagual, alrededores de Quebrada 

Máquina, bosque secundario, 9°45'00"N, 84°33'50"W, 500 m, 

2 jul 1990 (fr), Rojas 98 (INB); Monteverde, along road from 

the Tropical Science Center to Monteverde tropical cloud forest, 

10°18'10"N, 84°47'30"W, 1400 m, 14 jul 2000 (fr), Boyle 

5732 (USJ); Osa, Reserva Forestal Golfo Dulce, Cuenca 

Térraba-Sierpe, Bahía Chal, entrada a Chocuaco, 8°43'50"N, 

83°27'17"W, 150-175 m, 25 jun 1998 (fr), Aguilar 5453 

(INB); Puntarenas, Monteverde, community near Quaker 

school, 10°18'N, 84°48'W, 1400-1500 m, 3 jul 1991 (fl), 

Haber & Zuchowski 10713 (CR, INB, MO); road 2-4 km N of 

Santa Elena, forested roadsides and remnant forest stands, 

1500-1600 m, 4 may 1984 (fr), Murphy & Whetstone 833 

(MO); Parque Nacional Corcovado, Sirena, look out trail, 

8°28'N, 83°55'W, 1-20 m, 21 oct 1989 (fr), Kernan et al. 1300 

(CR, MO); Buenos Aires, Cuenca Térraba-Sierpe, Puesto Tres 

Colinas, 9°07'44"N, 83°03'58"W, 1940 m, 18 set 1996 (fr), 

Gamboa & Picado 671 (INB, MO). San José: Aserrí, 3 km al 

S de Aserrí, 1700 m, 8 feb 1977 (fr), Gómez-Laurito & 

Valerio 2372 (USJ); Nordabfall der Cerros de Escazú, Alto 

Tapezco, südlich oberhalb Bebedero (oberhalb Escazú), 1600- 

1740 m, 21 nov 1992 (fl), Döbbeler 5463 (CR); Pérez 

Zeledón, Río Nuevo, Reserva Forestal Los Santos, camino 

entre California y Zaragoza, 9°28'10"N, 83°49'20"W, 1000 m, 

6 mar 2001 (fr), Quesada et al. 477 (CR); San Marcos de 

Tarrazú, Estribación fila San Isidro, bosques residuales en 

zona muy alterada, 9°33'50"N, 84°04'40"W, 1000-1100 m, 29 

nov 1995 (fr), Cascante et al. 889 (CR); Zona Protectora La 

Cangreja, Mastatal de Puriscal, bosque primario en las márgenes 

del Río Negro, 9°40'55"N, 84°23'38"W, 290 m, 8 nov 

1992 (fr), Morales 983 (INB, MO); Reserva Biológica Carara, 

sector Bijagual, sitio Quebrada Máquina, 9°45'00"N, 

84°33'50"W, 450 m, 2 nov 1990 (fr), Zúniga & Varela 334 

(CR, MO); Reserva Biológica Carara, Estación Bijagual, 

9°46'N, 84°36'W, 500 m, 23 jul 1990 (fr), Bello 2339 (INB, 

MO). GUATEMALA. Izabal: El Estro La Mina de Exmibal, 

al E del Estor, 15°31'N, 89°23'W, 50 m, 17 jul 1988 (fr), 

Tenorio et al. 14576 (MO); Puerto Barrios, a 3 km al S de 

Punta de Palma, 5 m, 9 set 1988 (fr), Martínez et al. 23627 

(MO). HONDURAS. Atlántida: La Ceiba, on the mountain 

slopes and coastal plains, jun a ago 1938 (bo), Yuncker et al. 

8271 (MO). Colón: 1.8 mi strip on the bank of Río 

Guaimoreto between old brigde and Laguna Guaimoreto 4.5 

mi, NE of Trujillo on old road to Castilla, 15°57'30"N, 

85°54'30"W, 20 nov 1980 (fr), Saunders 715 (MO). MEXICO. 

Chiapas: Ocosingo, 6-8 km N of Ocosingo along road to 

bachajón, 900 m, 24 set 1972 (fr), Breedlove 27955 (MO); 

along highway 195 between Chiapa de Corzo and Pichucalco, 

7.9 mi N of Bochil, 17°03'N, 92°51'W, 1990 m, 17 feb 1987 

(fr), Croat & Hannon 65086 (MO). Veracruz: San Andrés 

Tuxtla, Estación de Biología Tropical Los Tuxtla, 18°34' y 

18°36'N, 95°04' y 95°09'W, 160 m, 15 feb 1985 (fr), Ibarra 

Manríquez & Sinaca Colín 2281 (MO). Oaxaca: María 

Chimalapa, Arroyo Palomares, ca. 2 km al N de Santa María, 

16°55'N, 94°41'W, 250 m, 8 dic 1984 (fl), Hernández 630 

(CHAPA, MO). NICARAGUA. Río San Juan: Between Río 

Santa Cruz and Caño Santa Crucita, La Palma, 11°2-4'N,


Vol. 4, Nº 1 

84°24-26'W, 40-60 m, 30 nov-2 dic 1984 (fr), Stevens 23447 

(MO). Zelaya: Sector Mina Nueva América, 13°45'N, 

84°30'W, 500 m, 22 set 1984 (fr), Ortíz 2135 (MO); Cerro 

Saslaya, 20 km W of Siuna, 1100-1400 m, 5 may 1977 (fl), 

Neill 1834 (MO). PANAMA. Chiriquí: Vicinity of Fortuna 

Dam, along trail from higway across Rio Hornito, S of reservoir, 

8°45'N, 82°15'W, 1100-1350 m, 7 set 1987 (fl), 

McPherson 11670 (MO). Colón: rain forest along Santa Rita 

Ridge, road to Estacion Calibrar Lluvia el Agua Clara 9°22'N, 

79°42-45'W, 1300 m, 26 jun 1971 (fl, fr), Webster & Dressler 

16737 (MO) Panamá: Road from Panamerican Highway to 

Cerro Jefe, summit, 23.4 km from Panamerican Highway, 22 

jun 1977 (fr), Folsom 3829 (MO); Barro Colorado Island, Gatun 

Lake, 8-10 ago 1940 (fl, fr), Barlett & Lasser 16721 (MO). 

3. Smilax panamensis Morong, Bull. Torrey Bot. 

Club 21: 441. 1894. TIPO: PANAMÁ. Gatún Station, 

Hayes 63 (Lectotipo, designado por Killip & C. 

Morton, Publ. Carnegie Inst. Wash. 461: 275 (1936), 

imagen digital NY!). FIG. 5 

Smilax ramonensis Apt, Repert. Spec. Nov. Regni 

Veg. 18: 405. 1922. TIPO: Costa Rica: San 

Pedro, near San Ramón, 1400-1600 m, Tonduz 

17723 (holotipo B; isotipos, BM, BR, CR!, fragmentos 

y foto digital, US). 

Rizoma con engrosamiento tuberoso, blanco, escamas 

café oscuro, raíces cilíndricas, a veces con escamas. 

Tallos cilíndricos, glabros, armados en la parte 

inferior con aguijones rectos o recurvados, robustos, 

inermes en la parte superior. Hojas ovadas a lanceoladas, 

8-18 x 2-9 cm, 5 nervios desde la base, 2 

nervios submarginales conectados por nervaduras 

reticuladas, conspicuas, ápice acuminado a brevicuspidado, 

base aguda, margen entero; pecíolos 1-2.5 

cm. Umbelas racemosas o solitarias con brácteas 

prominentes, persistentes en la madurez; las estaminadas 

con pedúnculo aplanado, 1-3 cm, más largo que 

el pecíolo subyacente; tépalos de las flores masculinas 

3-4 mm, filamentos ca. 1 mm, anteras ca. 2 mm, 

más largas que los filamentos; las pistiladas con 

pedúnculo aplanado, 1-2 cm, más largo que el pecíolo 

subyacente; tépalos 4-5 mm. Bayas 0.7-0.9 mm de 

diámetro, anaranjadas. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Es un bejuco abundante en 

bosques húmedos, premontanos, de 0 a 1700 m. Se 

encuentra en el noroeste, centro y sur del país (Fig. 

7). Se distribuye desde Honduras hasta Panamá. 

NOMBRES COMUNES. Cuculmeca, cuculmeca blanca. 

Smilax panamensis se caracteriza por el rizoma 

tuberoso, blanco, tallos redondos con aguijones 

grandes y rectos, hojas coriáceas, las hojas viejas se 

tornan amarillas con manchas café, en las muestras de 

herbario las hojas a veces suelen tornarse negras; 

agallas como ampollas, de color café pálido prominentes 

en el haz de la hoja; el pedúnculo es más largo 

que el pecíolo subyacente; umbelas en racimo con 

brácteas persistentes en la inflorescencia, tépalos ca. 

4 mm y bayas anaranjadas. 

Morong (1894) describe esta especie con tallos 

inermes, ligeramente pubescentes, pedúnculos y 

zarcillos casi glabros y frutos negros con rojo matizado. 

Killip & Morton (1936) sugieren que existe una 

confusión en los datos originales de la publicación de 

esta especie, porque el ejemplar recolectado por 

Hayes 209, con flores pistiladas y frutos, es un 

espécimen de S. mollis y es diferente de los dos 

especímenes citados (Hayes 63, 68). Estos tres 

especímenes fueron reexaminados por J.B. Norton en 

el Jardín Botánico de New York. 

Killip & Morton (1936) aclaran que algunos 

especímenes de S. spissa se encontraban identificados 

como S. panamensis; aunque estas especies crecen 

asociadas, ambas difieren en algunas características 

importantes. 

ESPECÍMENES EXAMINADOS. COSTA RICA. Alajuela: 

San Ramón, Reserva Biológica Alberto Manuel Brenes, 

Cordillera de Tilarán, camino de entrada a la estación, 

10°13'00"N, 84°37'00"W, 800-850 m, 27 ago 1995 (fr), 

Gómez-Laurito & Mora 12811 (USJ); San Ramón, 22 may 

1913, Tonduz 35417 (MO); San Ramón, Piedades Norte, 1100 

m, 1 feb 1984, Khan et al. 722 (CR, MO, USJ). Cartago: 

Monumento Nacional Guayabo, Cañón del Río Guayabo, 550 

m, 1 feb 1990 (fr), Sánchez 62 (USJ). Guanacaste: 2 km al NE 

de Tilarán, 880 m, 4 dic 1963 (fr), Jiménez 1343 (CR); 15 km 

NNW of San Ramón by road, 2.5 km N of Balsa on road to 

San Lorenzo, 10°22'N 84°30'W, 1050-1100 m, 25 abr 1983 

(fr), Liesner & Judziewicz 14889 (MO); San Ramón, Cerro de 

Santiago, 1100 m, 29 abr 1982 (fr), Carvajal 217 (CR, MO, 

USJ); Parque Nacional Guanacaste, Estación Pitilla, Sendero 

Laguna, 10°59'26"N, 85°25'40"W, 700-1000 m, 2 ene 1991 

(fr), Moraga 268 (INB, MO). Heredia: Sarapiquí, Puerto 

Viejo, Estación Biológica La Selva, 25 jun 1983 (fr), Chacón 

992 (CR). Limón: Cordillera de Talamanca, along ridge 

between Quebrada Camagre and Río Barbilla, 10°00'N, 

83°24.5'W, 180-480 m, 9 set 1998 (fr), Grayum et al. 8902 

(INB); Parque Nacional Tortuguero, Estación Agua Fría, 

Sendero Agua Fría, hasta entrada Sendero Aguacate, 

10°26'40"N, 83°34'40"W, 20 m, 1 dic 1990 (fr), Solano 245

Abril 2004 


Figura 5. Smilax panamensis Morong: A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Semillas, E. Rama fértil con 

agallas y frutos, F. Tallo y rizoma.


Vol. 4, Nº 1 

(INB). Puntarenas: Buenos Aires, Parque Internacional La 

Amistad, Cordillera de Talamanca, Estación Altamira, 

Sendero Los Gigantes, bosque secundario, 9°01'35"N, 

83°00'45"W, 1250-1300 m, 8 abr 1996, Villalobos 287 (CR, 

INB, MO); Coto Brus, Parque Internacional La Amistad, 

Cordillera de Talamanca, Estación Pittier, Aguas Calientes, 

Rivera Río Cotón y alrededores Aguas Termales, 9°01'30"N, 

82°57'40"W, 1680 m, 1 feb 1995, Madrigal et al. 23 (INB); 

Coto Brus, Las Alturas Biological Station, 50 m along path A, 

hanging directly above path, premontane wet forest, Canopy 

entirely open directly above plant, 8°57'12"N, 82°50'10"W, 

1550 m, 10 jul 1998 (fr), Boyle et al. 5627 (USJ); Golfito, 

Parque Nacional Corcovado, Península de Osa, Estación 

Sirena, Sendero Naranjos, 8°28'50"N, 83°35'30"W, 10 m, 5 

feb 1994 (bo, fl), Aguilar 3075 (CR, INB, MO); Golfito, Mata 

Palo, Finca Jilva. Jiménez, 8°23'35"N, 83°18'10"W, 200-220 

m, 11 set 1991 (fr), Aguilar 403 (CR, INB, MO); Forest to the 

E of hairpin ca. 1 km SE of Las Alturas de Coto Brus, on road 

from San Vito, 8°56'N, 82°50'W, 1390-1440 m, 13 jul 1985 

(fr), Grayum & Hammel 5669 (MO). San José: Vicinity of El 

General, 825 m, feb 1936 (fl); Skutch 2583 (MO); Santa Rosa 

de Puriscal, Río Negro, faldas Cerro La Cangreja, 400-700 m, 

20 jun 1986, Chacón & Chacón 1949 (CR, MO, USJ). 

HONDURAs. Atlántida: Thicket near Lancetilla, 90 pies, 27 jul 

1934 (fr), Yuncker 4776 (MO). NICARAGUA. Zelaya: Río Punta 

Gorda, Atlanta, “La Richard” 200 m, al SE, 11°32'N, 

84°05'W, 20 m, 13 nov 1981 (fr), Moreno & Sandino 13022 

(MO); E del poblado de Nueva Atlanta, 11°34'N, 84°26'W, 20 

feb 1994 (bo, fl), Rueda et al. 3272 (MO); camino a la largo 

del Río Punta Gorda entre la Corriente la Guitarrona y San 

José, 11°32'N, 84°45'W, 26 feb 1994 (fl), Rueda 3600 (MO). 

PANAMÁ. Coclé: 7 km N of Llano Grande on road to Coclesito, 

in forest, 1700 ft., 8 mar 1978 (fl), Hammel 1933 (MO). 

Darién: Vicinity of El Real, Río Tuira, S of El Real, Don 

Pablo Othon's pasture, footthills of Cerro Pirre, 30 jun 1959 

(fr), Stern et al. 746 (MO); La Boca de Pirre, 13 oct 1967 (fr), 

Bristan 1263 (MO). Panamá Barro Colorado Island, Canal 

Zone, 13 ene 1939 (fl), Zetek 4319 (MO); Barro Colorado 

Island, Canal Zone, Barbour Trail 350, 26 set 1968 (fr), Croat 

6475 (MO). 

4. Smilax spinosa Mill., Gard. Dict. ed. 8, no. 8. 

1768. TIPO: MÉXICO. Houston s. n. (holotipo, BM). 

FIG. 6 

Smilax mexicana Griseb. ex Kunth, Enum. Pl. 5: 

167. 1850. TIPO: MÉXICO. Veracruz; prope 

Misantla, Schiede & Deppe 986 (holotipo, B; 

isotipo: K, MO!). 

Smilax costaricae Vatke, Linnaea 40: 223. 1876. 

Smilax mexicana var. costaricae (Vatke) A. DC. 

Monogr. Phan. 1: 117. 1878. TIPO: COSTA RICA: 

San José, mayo 1857, Hoffmann 503 & 504 (sintipo, 

B, fragmentos e imagen digital US!). 

Smilax wagneriana A. DC., Monogr. Phan. 1: 143. 

1878. TIPO: PANAMÁ. Chiriquí, abril 1854, M. 

Wagner 630 (M). 

Smilax mazatlanensis Sessé & Moc., Pl. Nov. Hisp. 

(ed. 2) 1893. TIPO: MÉXICO: Guerrero: 

Mazatlán. Sin recolector. 

Smilax gaumeri Millsp. ex Gaumer, Field Mus. 

Nat. Hist., Bot. Ser. 1(4): 357. 1898. TIPO: 

MÉXICO. Yucatán, Izamal, jun, G.F. Gaumer 687 

(holotipo, F; isotipos, G, MO!, imagen digital 

US! y NY!). 

Smilax lundellii Killip & C. V. Morton, Publ. 

Carnegie Inst. Wash. 461: 265 1936. TIPO: 

GUATEMALA: Petén: recolectado en la Sabana 

Zis, 3 mayo 1933, C.L. Lundell 3190 (holotipo, 

US!; isotipo, MICH). 

Smilax munda Killip & C. Morton, Publ. Carnegie 

Inst. Wash. 461: 265, 1936. TIPO: BRITISH 

HONDURAS: on the bank of Río Grande, 23 jul 

1933, W.A. Schipp 1181 (holotipo F [foto 52901 

F!]; isotipos, K, MICH, MO! [fragmentos US!]); 

syn. nov. 

Smilax luculenta Killip & C. Morton, Publ. 

Carnegie Inst. Wash. 461: 289 (1936). TIPO: 

HONDURAS. Atlántida: collected near Tela, in 

thicket near beach, 14 Dec 1927-15 Mar 1928, 

P.C. Standley 54275 (holotipo US!; isotipo F); 

syn. nov. 

Rizoma con engrosamiento en los nudos. Tallos 

cilíndricos, glabros, obtusamente angulados en la parte 

superior e inferior, generalmente en zigzag, armados 

con fuertes aguijones, aplanados en la parte superior, 

inermes en la parte inferior. Hojas ovadas a lanceoladas, 

cartáceas, ocasionalmente algo coriáceas, 4- 

12.5 x 5.5-12 cm, 5 nervios desde la base, los nervios 

primarios prominentes en ambos lados conectados por 

nervaduras reticuladas, conspicuas, rara vez acúleos 

en el envés, hojas jóvenes ocasionalmente con manchas 

blancas o verde pálidas, ápice agudo, base redonda 

o aguda, margen entero; pecíolos 0.4-2.7 cm de 

largo. Umbelas solitarias, ocasionalmente racemosas; 

las estaminadas con pedúnculo aplanado, 1.5-6 mm, 

más corto que el pecíolo subyacente; tépalos 2 mm, 

anteras 0.5 mm, filamentos 0.7-1 mm, más largos que 

las anteras; las pistiladas con pedúnculo aplanado, 2- 

26 mm; tépalos ca. 2 mm. Bayas 4-7 mm de diámetro, 

rojas, moradas o negras. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Es un bejuco que posee

Abril 2004 


Figura 6. Smilax spinosa Mill. A. Frutos, B. Semillas, C. Flor masculina, D. Estambre, E. Flor femenina, F. Rama fértil 

con flores, G. Tallo, H. Tallo y rizoma.


Vol. 4, Nº 1 

Figura 7. Distribución geográfica de Smilax panamensis 

(=) y S. spinosa (5) en Costa Rica. 

una distribución amplia. Se encuentra en bosques 

secos, húmedos y premontanos, entre 0 y 2000 m 

(Fig. 7). Se distribuye desde el norte de México hasta 

Panamá (Huft 1994). 

NOMBRES COMUNES Y USOS. Zarzaparrilla, cuculmeca, 

bejuco de corona. El rizoma es usado para los 

riñones, enfermedades venéreas, como regulador 

menstrual, para la limpieza después del parto, flujo 

blanco y fertilidad de la mujer (House et al. 1994). En 

El Salvador se usa para hacer las coronas de Jesús 

Nazareno, bajo el sinónimo de S. mexicana (Choussy 

1926). 

Smilax spinosa se caracteriza por los tallos obtusamente 

angulados, en zigzag, con manchas rojas 

oscuras, aguijones presentes, hojas con acúleos en el 

envés, hojas jóvenes manchadas de color verde pálido 

o blancas, pedúnculos iguales o más cortos que el 

pecíolo subyacente, tépalos ca. 2 mm y bayas negras 

o moradas. 

Smilax luculenta fue descrita con base en material 

vegetativo. Se distingue de otras especies de Centro 

América por sus hojas coriáceas con base cordada, 

sin aguijones, nervios prominentes, nervaduras secundarias 

oscuras y pedúnculos más cortos que los pecío- 

los. Sin embargo, su amplia variabilidad morfológica 

y su distribución coinciden con las de S. spinosa, por 

lo que aquí se considera sinónimo. 

La morfología de las hojas ha sido un carácter discutido 

por muchos autores. Un bejuco puede mostrar 

una amplia variabilidad en la forma de las hojas, que 

depende de la posición de las yemas foliares, de la 

edad o del grado de madurez de la hoja, hojas fértiles 

versus estériles y de los factores ambientales como el 

suelo o la sombra (Gaskin & Berry 1998). Una 

variación fenotípica considerable en las estructuras 

vegetativas tambien se observa en S. domingensis. 

ESPECÍMENES EXAMINADOS. BELICE. Cayo: Between the 

Western Highway and the Sibun River, ca. 7 km west of intersection 

of Western Highway and coastal road “Manatee 

Highway”, 17°16'N, 88°34'W, 10-50 m, 13 jul 1995 (fl), Atha 

et al. 1114 (MO). Toledo: Río Mojo, mouth to 8 miles 

upstream, 8 ago 1975 (fl), Dwyer & Coomes 12947 (MO). 

COSTA RICA. Alajuela: Los Chiles, orilla del Río Frío, ca. 2 

km aguas arriba de Los Chiles, 10°01'35"N, 84°43'15"W, 40- 

50 m, 18 ago 2001 (fr), Ferrufino et al. 150 (USJ); San 

Ramón, 10 km NNW of San Ramón by road on way to San 

Lorenzo, 2.5 km S of Balsa, remnant of primary forest, 

10°09'N, 84°29'W, 1200 m, 25 abr 1983 (fl), Liesner & 

Judziewicz 15005 (CR, MO); Upala, Bijagua, El Pilón, Río 

Celeste, margen izquierda, aguas arriba a partir del puente 

camino a La Laguna del Roble, 24 abr 1988 (fl), Herrera 

1884 (CR); Llanura Bonita de Zarcero, 1600 m, 6 abr 1938 

(fl, fr), Smith 602 (MO); Near San Ramón on the calle Los 

Angeles, 10°86'N, 84°27'W, 1100 m, 27 mar 1982 (fl), 

Barringer et al. 2154 (MO); Monteverde Reserve, Atlantic 

slope, Río Peñas Blancas valley, 960 m, 19 nov 1984 (fr), 

Haber 1025 (MO). Cartago: Turrialba, Platanillo, 22 abr 1951 

(fr), León 3355 (USJ); Turrialba, terrenos del Instituto 

Interamericano de Ciencias Agrícolas, 600 m, 14 oct 1949 

(fl), León 1838 (USJ). Heredia: Barva, 1170 m, 20 dic 1940 

(fl), León 448 (CR); Parque Nacional Braulio Carrillo, 

Cantón de Sarapiquí, Puesto El Ceibo, W of Río Guácimo, off 

trail that runs due E from Transect Trail at 730 m, 

10°17'27"N, 84°03'38"W, 760 m, 22 abr 1994, Boyle 3145 

(INB, MO). Guanacaste: Abangares, Cebadilla, 1400 m, 21 

jul 1985 (fr), Haber & Bello 2250 (CR, MO); Cañas, Paso 

Hondo, en la berna de un canal de riego, 23 abr 1992 (fl), 

Rojas s.n. (USJ); La Cruz, Parque Nacional Santa Rosa, 

Península de Santa Elena, Murciélago, alrededor del aeropuerto, 

10°54'10"N, 85°43'50"W, 50 m, 10 set 1994 (fr), Cano 136 

(CR, INB, MO); La Cruz, Santa Rosa National Park, evergreen 

forest (bosque húmedo), 2 km east of park headquarter, 

10°51'N, 85°37'W, 200-300 m, 23 jun 1977 (fl), Liesner & 

Lockwood 2410 (CR, MO); Liberia, Parque Nacional 

Guanacaste, Estación Cacao, 10°55'45"N, 85°28'15"W, 1100 

m, 31 oct 1990 (fr), Chávez et al. 329 (INB); Parque Nacional 

Guanacaste, Estación Pitilla, Sendero El Mismo, Finca La 

Pasmompa, 11°02'00"N, 85°24'30"W, 700 m, 9 dic 1990 (fl),

Abril 2004 

Ríos 254 (CR, INB, MO). Limón: Parque Nacional 

Tortuguero, 2 km al sur de Tortuguero, bosque inundable a la 

orilla de la laguna, 10°31'N, 83°30'W, 3 m, 4 nov 1988 (fr), 

Robles 2169 (CR, MO); Puerto Vargas, Parque Nacional 

Cahuita, 3 set 1978 (fr), Gómez-Laurito 3953 (USJ); 

Talamanca, Puerto Vargas, 1 km por el camino de entrada, 

9°42'03"N, 82°49'06"W, 2-3 m, 24 may 1995, Gómez-Laurito 

et al. 12789 (USJ). Puntarenas: Buenos Aires, Reserva 

Indígena Boruca, Fila Moras, camino a Boruca, 8°59'30"N, 

83°20'40"W, 800 m, 7 mar 1993 (fl), Rojas & Zúñiga 172 

(CR, INB, MO); Las Alturas Biological Station, about 100 m 

into forest from pasture side trail, premontane wet forest, 

8°57'05"N, 82°50'15"W, 1450 m, 9 jul 1998 (fr), Boyle & 

Alford 5208 (CR, USJ); Península de Nicoya, Curú, Pozo 

Colorado Trail, on ridge toward Punta Quesera, mangroves at 

Río Curú mouth, 9°46-48'N, 84°54-58'W, 0-200 m, 30 ago 

1995 (fr), Sanders et al. 17722 (CR, USJ); Puntarenas, 

Cordillera de Tilarán, San Luis, por el playón del Río San 

Luis, Monteverde, 10°16'33"N, 84°47'45"W, 1100 m, 18 abr 

1994 (fl), Fuentes 729 (INB); Monteverde, altos de Lindora, 

Vertiente Pacífica, 10°18'N, 84°50'W, 1300 m, 7 dic 1988 

(fr), Bello 579 (CR, MO); Buenos Aires, R. I. Ujarrás, 

Cordillera de Talamanca, Ujarrás, margen izquierda de 

Quebrada Dodora, camino a Río Lori, 09°17'50"N, 

83°15'30"W, 1500 m, 12 mar 1993 (fl), Fernández 621 (INB, 

MO). San José: Ciudad Colón, Mora, bosque regenerado, ca. 

35 años, 800 m, 18 feb 2000, Morales 1406 (USJ); Curridabat, 

San Francisco, ene 1980 (fr), Stiles s.n. (USJ); Dota, 

Cordillera de Talamanca, Madreselva, orilla de bosque, 

9°40'05"N, 83°57'22"W, 2500-2600 m, 24 ago 1996 (fr), 

Gómez-Laurito 12877 (USJ); Mora, Tabarcia, Alto de Vargas, 

borde de bosque, 920 m, 22 abr 1963 (fl), Jiménez 662 (CR); 

Zona Protectora Cerros de Turrubares, Las Delicias, Sitio 

Quebrada Pozo Azul, 9°44'00"N, 84°30'40"W, 300 m, 29 oct 

1991 (fr), Zúñiga 525 (USJ). EL SALVADOR. Ahuachapán: San 

Francisco Menéndez, El Corozo, Mariposario, zona baja “ Los 

Peralta”, 13°49'N, 89°59'W, 380 m, 14 abr 2000 (fl), Rosales 

589 (MO). San Miguel: Volcán Conchagua, 13°16'35"N, 

87°48'50"W, 400 m, 31 ene 1998 (fr), Monro et al. 2142 

(MO). GUATEMALA. Izabal: Río Dulce, 1 m, 27 jul 1988 (bo, 

fl), Martínez et al. 23108 (MO). Petén: Forest edge at oficina 

de “Cerro Cauhui”, 26 abr 1986 (fl), Walker 1284 (MO). 

HONDURAS. Atlántida: La Ceiba, on the mountain slopes and 

coastal plains, 4 ago, 1938 (fl, fr), Yuncker et al. 8812 (MO) 

Francisco Morazán: Quebrada La Orejona, lado E de la 

UNAH, 1000 m, 23 abr 1982 (fl), Belibasis 197 (MO). 

MÉXICO. Campeche: Champotón, carretera Champotón- 

Ulumal, Río Champotón donde lo cruza el puente entre El 

Zapotal y Ulumal, 0.5-1 km al S de El Zapotal, 19°16'55"N, 

90°36'50"W, 0-50 m, 6 jun 1997 (fl), Carnevali et al. 4489 

(MO). Oaxaca: Chiltepec, 13 m, 24 abr 1967 (fl), Martínez 

1376 (MO). NICARAGUA. Chontales: 5.6 km S of La 

Libertad W slope of Cerro El Gallo, ca. 12°10'N, 85°10'W, 

440-480 m, 7 jun 1980 (fl, fr), Stevens et al. 17504 (MO). 

Granada: Laguna de Apoyo “ Babilonia”, 11°55'N, 86°04'W, 

40-80 m, 30 may 1981 (fl), Moreno & Henrich 890 (MO). 

Matagalpa: Behind La Selva Negra Hotel, slopes of Cerro 

Picacho, near the border with depto Jinotega, 13°00'N, 


85°55'W, 1200-1540 m, 23-25 may 1985 (fl), Davidse et al. 

30425 (MO). PANAMÁ. Chiriquí: km 4.6 on Volcancito road 

W of Boquete, 4600 ft., 14 may 1971 (fl), Proctor 31874 

(MO). Los Santos: Guayabo, a place several miles W of 

Tonosí, 1 mar 1963 (bo, fl), Stern et al. 1899 (MO). Panamá: 

Barra Colorado Island, Canal Zone, end of Peña Blanca 

Península, central cove, 10 may 1968 (fl), Croat 5449 (MO); 

Barra del Colorado, N side, between town and ocean beach, 

10°47'N, 83°35'W, 0-2 m, 26 ene 1986 (fr), Stevens 24097 

(MO); margin of Laguna de atras, between Barra del Colorado 

and the mounth of the Río San Juan, 10°48' y 10°52'N, 83°37' 

y 83°38'W, 5 m, 21 set 1986 (fl), Davidse & Herrera 31519 

(MO). Veraguas: Pasture, fencerow and roadside just S of 

Santa Fe, ca. 450 m, 17 nov 1973 (fr), Nee 8013 (MO). 

5. Smilax spissa Killip & C. Morton, Publ. Carnegie 

Inst. Wash. 461: 273. 1936. TIPO: COSTA RICA. Entre 

La Muerte y División, 19 ene 1891. H. Pittier 3470 

(holotipo, US!). FIG. 8 

Rizoma tuberoso, rojo. Tallos cilíndricos, glabros, 

armados en la parte inferior con aguijones robustos, 

inerme en la parte superior. Hojas oblongas a lanceoladas, 

cartáceas 7-22 x 3-9 cm, 5 nervios desde la 

base, a veces trinervada, los nervios primarios externos 

submarginales, algo prominentes en el envés, 

conectados por nervaduras paralelas, ápice acuminado 

a cuspidado, base aguda, margen entero; pecíolos 

1-2 cm de largo. Umbelas solitarias; las estaminadas 

con pedúnculo subcilíndrico, 2-4.5 cm, igual o más 

largo que el pecíolo subyacente; tépalos 5-6 mm, filamentos 

1-1.5 mm, anteras 1.5-2 mm, más largos que 

los filamentos; las pistiladas con pedúnculo subcilíndrico, 

1.5-2.5 cm, más largo que el pecíolo subyacente; 

tépalos ca. 4 mm. Bayas 7-12 mm de diámetro, 

rojas. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Se encuentra en bosques 

húmedos del Pacífico Central y Pacífico Sur del país, 

entre 0 y 900 m (Fig. 9). Se distribuye en Costa Rica 

y Panamá. 

NOMBRES COMUNES. Cuculmeca, cuculmeca roja. 

Smilax spissa se caracteriza por el rizoma tuberoso, 

tallos cilíndricos con aguijones pequeños, hojas con 5 

nervios desde la base conectados por nervaduras paralelas, 

pedúnculo más largo que el pecíolo subyacente, 

tépalos ca. 4 mm y bayas rojas. 

Killip & Morton (1936) anotan que esta especie ha 

sido confundida con S. panamensis, pero ambas 

tienen características importantes que las distinguen.


Vol. 4, Nº 1 

Figura 8. Smilax spissa Killip & C. Morton. A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Semillas, E. Rama fértil 

con frutos, F. Tallo y rizoma.

Abril 2004 

Figura 9. Distribución geográfica de Smilax spissa (=) y 

S. subpubescens (5) en Costa Rica. 

Smilax spissa también ha sido confundida con S. subpubescens 

por los pedúnculos en relación a los pecíolos, 

y con S. domingensis por las bayas rojas. En los 

herbarios de Costa Rica, Panamá y MO se encuentran 

en su mayoría especímenes con botones florales, frutos 

maduros, o rara vez flores abiertas. Todavía es 

necesario recolectar ejemplares con flores de ambos 

sexos, para observar un mayor número de muestras. 

ESPECÍMENES EXAMINADOS. COSTA RICA. Puntarenas: 

Cordillera de Talamanca, trail between headwater on the Río 

Bella Vista and Sitio Cotón (Cotonsito) on the Río Cotón, 

9°49'N-9°57'N, 82°46'W-82°49'W, 1800-2200 m, 11 mar 

1984 (fr), Davidse 25524 (CR, MO); Foothills of the 

Cordillera de Talamanca, Sitio Coto Brus, ca. 8°59'N, 

82°46'W, 1800-1900 m, 3 set 1983 (fr), Davidse 24516 (CR, 

MO); Punta Catedral, ca. 7 km SE of Quepos, 9°22.5'N, 

84°09'W, 20-70 m, 20 ago 1985 (fr), Grayum & Sleeper 5900 

(CR, MO); Golfito, Parque Nacional Corcovado, Península de 

Osa, Bonanza, 8°31'30"N, 83°25'40"W, 200-300 m, 5 mar 

1997 (bo), Azofeifa 256 (INB); Puntarenas, Punta Banco, 0- 

200 m, 22 ago 1988 (fr), Chavarría et al. 259 (USJ); Reserva 

Biológica Carara, Lomas Pizote, sendero a Bijagual, 

9°47'10"N, 84°35'10"W, 300 m, 8 dic 1989 (fr), Jiménez & 

Zúñiga 761 (INB, USJ); Reserva Forestal Golfo Dulce, 

Aguabuena, Sector Cuenca oeste, 8°42'20"N, 83°31'30"W, 

50-150 m, 22 oct 1991 (fr), Aguilar 600 (CR, MO); Osa, Faja 

Costeña de la Bahía de Coronado, Uvita, camino a San 

Josecito, paralelo a Río Morete (Río Higuerón en el mapa), 


9°11'30"N, 83°45'25"W, 100 m, Aguilar et al. 1533 (INB, 

MO). San José: Puriscal, Zona Protectora La Cangreja, 

Cuenca del Tulín, Falda Sur, Fila Cangreja, 9°42'10"N, 

84°22'25"W, 650 m, 7 feb 1997 (bo), Jiménez 2229 (INB); 

Tarrazú, San Lorenzo, camino entre Cerro Pito y Cerro Toro, 

rumbo a Quepos, 9°17'54"N, 83°46'20"W, 600-700 m, 26 

may 1998 (fr), Valverde 972 (CR, USJ); Western part of 

Montañas Jamaica, ca. 3 km NE of Bijagual de Turrubares, 

Carara Reserve, 9°45.5'N, 84°33'W, 500-600 m, 7 ago 1985 

(fr), Grayum et al. 5843 (CR, MO). PANAMÁ. Coclé: Between 

Continental Divide above El Cope and El Petroso sawmill and 

the Río Blanco to the N a 5 hr hike, 8°38'N, 80°36'W, 1400 

ft., 13 dic 1980 (fr), Sytsma et al. 2398 (MO); Los Pedregales, 

ridge between Río Blanco del Norte and Río Caño Sucio, 

ridge eventually leads to Cerro Tife and Continental Divide, 

8°44'N, 81°40'W, 500 m, 22 feb 1982 (bo), Knapp & Dressler 

3811 (MO). Panamá: Barro Colorado Island, Shannon Trail 

700, 5 jul 1971 (fr), Croat 15260 (MO). San Blas: 

Nusagandi, trail from camp NW to a Quebrada, 9°19'N, 

78°15'W, 300 m, 31 jul 1984 (fr), Nevers & León 3592 (MO). 

6. Smilax subpubescens A. DC. in A. DC. & C. DC., 

Monogr. Phan. 1: 69. 1878. TIPO: MÉXICO. Bourgeau 

2578 (holotipo, P, foto 40299 F!). FIG. 10 

Smilax calocardia Standl., Publ. Field Mus. Nat. 

Hist., Bot. Ser. 22(1): 7. 1940. TIPO: PANAMÁ. 

Chiriquí: Volcán de Chiriquí, alt. 2250 m, ago 

1938, M.E. Davidson 953 (holotipo, F; isotipo, 

MO!). 

Smilax rufa Lundell, Contr. Univ. Michigan Herb. 

7: 4. 1942. TIPO: MÉXICO. Chiapas, cerca del 

Porvenir, 3200 m, 6 jul 1941, Matuda 4591 

(holotipo, MICH; isotipo, LL). 

Smilax venosa Lundell, Wrightia 3(8): 165, f. 56. 

1966. TIPO: MÉXICO. Chiapas: Pinabeto, cerca 

de Montozintla, alt. 2585 m, 7 may 1945, Matuda 

5426 (holotipo: LL, foto 61375 F!). 

Rizoma con engrosamiento en los nudos. Tallos 

obtusamente cuadrangulares, inermes, rojo-tomentosos, 

glabros con la edad o a veces persistentemente 

tomentosos. Hojas ovadas, láminas glabras en el haz, 

rojo-tomentosas en el envés y las vainas; glabras con 

la edad o raramente con pubescencia persistente, 

cartáceas a subcoriáceas, 10-16 x 5.5-10.5 cm, 5-7 

nervios desde la base, los nervios primarios prominentes 

en el envés, el par exterior submarginal, 

conectados por nervaduras reticuladas, conspicuas; 

ápice acuminado, base cordada, redonda o truncada, 

margen entero; pecíolos 1.5-5 cm de largo. Umbelas 

solitarias; las estaminadas con pedúnculo aplanado,


Vol. 4, Nº 1 

Figura 10. Smilax subpubescens A. DC. A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Frutos, E. Semillas, F. 

Rama fértil con flores, G. Tricomas de la base del pecíolo, H. Tallo y rizoma.

Abril 2004 

1.3-4 cm, generalmente más corto que el pecíolo subyacente, 

ocasionalmente pubescente cerca de la base; 

tépalos 4-6 mm, filamentos 2.5-3 mm, anteras ca. 2 

mm, más cortas que los filamentos; las pistiladas con 

pedúnculo aplanado, 1.5-5 cm, más corto o más largo 

que el pecíolo subyacente; tépalos 3-4 mm. Bayas 5-7 

mm, anaranjadas. 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Se halla en bosques húmedos 

montanos y bosques nublados, entre 1300 y 3000 

m (Fig. 9). Se distribuye desde México hasta Panamá. 

NOMBRES COMUNES Y USOS. Bejuco canasta. El tallo 

se usa para hacer canastos y amarres. 

Smilax subpubescens se caracteriza por los tallos 

cilíndricos sin aguijones, con pubescencia tomentosa 

roja en las partes jóvenes, entrenudos y base del 

pecíolo, glabros en la madurez, hojas ovadas a lanceoladas, 

glabras, con base cordada, tépalos ca. 4 

mm, pedúnculos iguales o más largos que el pecíolo 

subyacente y bayas anaranjado brillante. Es un bejuco 

que crece en bosques nublados a elevaciones 

altas. 

Los especímenes glabros de esta especie han sido 

confundidos con S. domingensis, S. panamensis y S. 

spissa. Killip & Morton (1936) mencionan que S. 

tomentosa Kunth es una especie de Sudamérica, relacionada 

con esta especie, que se diferencia por la 

presencia de 3 estaminodios en las flores pistiladas y 

las hojas densamente pubescentes. Sin embargo, es 

una especie muy cercana a S. mollis y es probable que 

no sea distinta a ésta. 

También De Candolle (1878) describe S. subpubescens 

con pequeños aguijones en el tallo. En su 

revisión taxonómica, Killip & Morton (1936) afirman 

que el tipo y otros especímenes examinados no presentan 

aguijones, por lo que se espera no encontrar 

aguijones en S. subpubescens. 


Grecia, Bosque del Niño, Reserva Forestal de Grecia, 1600- 

1800 m, 18 mar 1987 (fl), Umaña & Gómez 163 (CR); 

Reserva Forestal El Chayote, orilla de camino, 2000 m, 29 set 

1992 (fr), Sánchez et al. 250 (USJ); San Carlos, Fila Volcán 

Viejo, 1800-2000 m, 10°15'N, 84°18'W, 13 nov 1986 (fr), 

Gómez-Laurito 11248 (USJ); entre el cráter y la Laguna Fría 

del Volcán Poás, en bosquecillo intrincado, 2600 m, 13 ago 

1964 (fl), Jiménez 2267 (CR, MO). Cartago: Paraíso, P. N. 

Tapantí, Valle del Reventazón, 09°43'35"N, 83°46'28"W, 

1450 m, 31 mar 1995 (fr), Morales & Bohs 3828 (INB, MO). 


Guanacaste: Abangares, 5 km N Monteverde at Río Negro on 

road to Finca San Bosco, Atlantic slope, 10°22'N, 84°49'W, 

1300 m, 2 feb 1989 (fr), Haber & Zuchowski 9067 (CR, MO); 

Liberia, Parque Nacional Rincón de la Vieja, Cordillera de 

Guanacaste, Río Blanco, Estación Las Pailas, 10°46'40"N, 

85°21'05"W, 800 m, 27 nov 1992 (fr), Cano et al. 29 (INB). 

Heredia: Parque Nacional Braulio Carrillo, Estación Barva, 

bosque primario y potreros, 10°07'22"N, 84°07'15"W, 2500 

m, 20 jun 1990 (fl), Varela 63 (CR, INB, MO); Sarapiquí 

road, Catarata Los Angeles, 1400 m, 8 oct 1969 (fr), Schnell 

1082 (MO); Barva, Parque Nacional Braulio Carrillo,Volcán 

Barva, 10°07'20"N, 84°06'00"W, 2600 m, 7 ago 1989 (fl), 

Rivera 29 (INB, MO); Cerros de Zurquí, northeast of San 

Isidro, 2000-2400 m, 3 mar 1926 (fl), Standley & Valerio 

50770 (US). Limón: Cordillera de Talamanca, atlantic slope, 

Kamuk massif, ridge between the Río Tararia and the NE most 

Kamuk paramo, 9°15'-9°16'N, 82°59'W, 2400-2900 m, 17 set 

1984 (fl), Davidse & Herrera 29262 (MO). Puntarenas: Coto 

Brus, Zona Protectora Las Tablas, Cuenca Térraba-Sierpe, 

Sitio Tablas, bosque primario, 8°57'03"N, 82°44'38"W, 1850 

m, 25 jul 1997 (fl), Navarro 766 (INB); Reserva Biológica 

Monteverde, Pacific slope, road from field station to continental 

divide and La Ventana, 10°18'N, 84°47'W, 1500-1600 m, 

11 jun 1992 (fl), Haber & Stevenson 11202 (INB). San José: 

Dota, Cordillera de Talamanca, La Cima de Copey de Santa 

María de Dota, 9°40'35"N, 83°55'00"W, 1000 m, 7 jun 1989 

(fl), Chavarría 402 (CR, INB, MO); La Palma, dic 1919, 

Jiménez 1189 (CR); Pérez Zeledón, Parque Internacional La 

Amistad, Cordillera de Talamanca, entre las nacientes de las 

Quebradas Barranca y Río Blanco, Finca San Carlos, 

9°31'47"N, 83°35'30"W, 2350 m, 5 abr 1995 (fl), Aguilar & 

Garrote 3852 (CR, INB, MO); Southwest slope of Cerro 

Francisco, along the road from Santa María de Dota to El 

Empalme, 1 km southeast of Jardín, 2150 m, 21 may 1991 (fr), 

Grant & Ramírez 9101518 (CR, US); Vásquez Coronado, 

Parque Nacional Braulio Carrillo, trail from highway at La 

Ventana to Bajo La Hondura, 10°04'N, 83°59'W, 1100-1300 

m, 4 set 1990 (fr), Solomon 19164 (CR, MO); Morales 1328 

(INB, MO); Moravia, San Jerónimo, Bajo La Hondura, 1100- 

1300 m, 24 may 1976 (fl), Utley & Utley 5001 (MO); 

Alajuelita, Z. P. Cerros de Escazú, Cerros Escazú-La 

Carpintera, 09°51'55"N, 84°08'05"W, 1850-2000 m, 17 ago 

1995 (fl), Morales & Ramírez 4752 (INB, MO); La Palma, 

1600 m, 3 feb 1924 (fr), Standley 33154 (US). GUATEMALA. 

Quiché: Nebaj, on Chunama, low forest about 13 km N on 

Cotzal Road, 6000 ft., 1 jul 1964 (fl), Contreras 5143 (MO); 

Mountain slopes SE of Nebaj along road to El Boquerón, 

7000-8000 ft., 10 ago 1964 (fl, fr), Proctor 25467 (MO). 

HONDURAS. Francisco Morazán: Cerro La Tigra, near 

Tegucigalpa, 12 may 1973 (fl), Clewell 3996 (MO); Cerro de 

Uyuca, near Zamorano, pine brake, 5000-5400 ft., 1 jul 1962 

(fl), Webster et al. 11876 (MO); forest near Rancho Quemado, 

San Juancito mountains, 2200 m, 10 abr 1954 (bo), Williams 

& Williams 18902 (US). Olancho: Along Río Olancho, on 

road between San Francisco de la Paz and Gualaco, 13.6 mi 

SW of Gualaco, 15°00'N, 86°07'W, 1300 m, 6 feb 1987 (fr), 

Croat & Hannon 64219 (MO). Ocotepeque: Belén Gualcho, 

Cordillera de Celaque, Cruz Alata 3 mi N of Belén Gualcho


Vol. 4, Nº 1 

Figura 10. Smilax subpubescens A. DC. A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Frutos, E. Semillas, F. 

Rama fértil con flores, G. Tricomas de la base del pecíolo, H. Tallo y rizoma.

Abril 2004 


Figura 11. Smilax vanilliodora Apt. A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Semillas, E. Rama vegetativa 



Vol. 4, Nº 1 

1. La presencia y la ausencia de alas en los tallos y 

los distintos tamaños de las anteras, en comparación 

con los filamentos, son caracteres que muchos 

autores han usado para distinguir S. vanilliodora y 

S. chiriquensis. Los especímenes Gentle 6702 y 

Sandino 4751 (ambos en MO), que Huft (1994) 

trata en S. regelii, son plantas masculinas con 

anteras no bien desarrolladas. En el material 

revisado en Costa Rica se encuentran anteras más 

cortas o largas que los filamentos en una sola 

muestra. 

2. El color de los frutos varía a lo largo del desarrollo 

de la maduración. En Costa Rica la mayoría de los 

especímenes de S. vanilliodora recolectados presentan 

frutos rojos y ocasionalmente son rojos a 

púrpura. En cambio, en los especímenes de S. 

chiriquensis de Panamá son de color rojo o negro. 

3. En la literatura ambos sinónimos han sido descritos 

con caracteres geográficamente restringidos. Así, 

S. chiriquensis ha sido tradicionalmente considerada 

como una especie endémica de Panamá y S. 

vanilliodora endémica de Costa Rica. 

4. Killip & Morton (1936) describen la variedad S. 

regelii var. albida y la distinguen de S. regelii var. 

regelii (excluida aquí, ver adelante) por las bayas 

Figura 12. Distribución geográfica de Smilax vanilliodora 

(=) en Costa Rica. 

blancas y mencionan que solamente se conoce por 

el espécimen tipo (Standley 53257, US), que muestra 

tallos cuadrados con alas poco prominentes, 

hojas con base cordada y pedúnculos más largos 

que el pecíolo subyacente, caracteres que coinciden 

con la descripción de S. vanilliodora. 


Eastern slopes of Volcán Miravalles, west of Bijagua, near the 

Río Zapote, 10°44'N, 85°5'W, ca. 600 m, 11-12 feb 1982 (fl), 

Burger et al. 11728 (CR); San Carlos, Cuenca del San Carlos, 

ca. 7 km NE Boca Tapada, Lagarto Lodge, 10°41'10"N, 

84°10'50"W, 90 m, 27 jul 1996, Hammel 20351 (INB); San 

Ramón, Reserva Biológica Alberto Manuel Brenes, Cordillera 

de Tilarán, sendero de entrada a la estación, 10°13'00"N, 

84°57'00"W, 850 m, 16 mar 1996 (fr), Gómez-Laurito et al. 

12847 (USJ); Reserva Biológica Monteverde, Río Peñas 

Blancas Valley, area near Refugio Alemán, 10°18'N, 84°45'W, 

900-1100 m, 28 feb 1992 (bo, fl), Haber et al. 11297 (INB). 

Cartago: Tapantí, Forest on ridge between Quebrada Casa 

Blanca and road to Tránsito, 9°47'N, 83°47'W, ca. 1400 m, 10 

ago 1984 (fr), Grayum & Jacobs 3728 (CR, MO); Turrialba, 

Monumento Nacional Guayabo, Santa Teresita, sobre los Ríos 

Guayabo, Lajas y Torito, 9°57'50"N, 83°41'30"W, 700-1800 

m, 8 may 1992 (fr), Rivera 1684 (CR); Turrialba, 

Interamerican Institute of Agricultural Sciences, feb 1950 (bo, 

fl), León 2277 (USJ); Turrialba, Monumento Nacional 

Guayabo, 600 m, 1 feb 1900 (fr), Sánchez 53 (USJ). 

Guanacaste: Liberia, Parque Nacional Guanacaste, Cordillera 

de Guanacaste, Estación Cacao, Sendero casa de Fran, 

10°55'45"N, 85°28'15"W, 1100 m, 8 feb 1995 (bo, fl), Picado 

43 (CR, INB, MO); Liberia, Parque Nacional Guanacaste, 

Cordillera de Guanacaste, Estación Cacao, Sendero Arenales, 

bosque primario, 10°55'43"N, 85°28'10"W, 1100 m, 9 feb 1995 

(fr), Ávila 38 (INB); Rio Chiquito de Tilarán, Rio Negro valley, 

Atlantic slope, lower montane wet forest, 10°22'N 84°52'W, 

1400 m, 30 jul 1986 (fr), Haber ex Bello 5858 (MO). Heredia: 

S base of Cerros Sardinal, Chilamate de Sarapiquí (N side of 

Río Sarapiquí), 10°27.5'N, 84°04'W, 80-110 m, 4 jul 1985 (fr), 

Grayum & Hammel 5545 (MO); Parque Nacional Braulio 

Carrillo, Los Llanos de Quesada, aluvión del Río Sucio, bosque 

muy húmedo tropical, 450 m, 11 feb 1984 (fl), Gómez et al. 

21018 (CR); Sarapiquí, Puerto Viejo, Finca La Selva, the OTS 

Field Station on the Río Puerto Viejo just E of its junction with 

the Río Sarapiquí, Sendero Ribereño, bluffs above the Río 

Sarapiquí, 100 m, 5 jun 1985 (fr), Jacobs 3251 (USJ). Limón: 

Limón, El Progreso, entre Cerro Muchilla y Cerro Avioneta, 

Fila Matama, siguiendo la fila y los flancos, Valle de la 

Estrella, 9°47'40"N, 83°06'30"W, 850 m, 8 abr 1989 (bo, fl), 

Herrera & Madrigal 2554 (CR, INB, MO); Pococí, R. N. F. S. 

Barra del Colorado, Llanura de Tortuguero, Sector Corosí, 

10°35'40"N, 83°45'00"W, 100 m, 8 dic 1990 (fr), Rojas 185 

(CR); Talamanca, Bratsi, Amubri, Alto Lari, Kivut, 9°24'15"N, 

83°05'15"W, 1300 m, 7 mar 1992 (bo, fl), Herrera 5211 (INB). 

Puntarenas: About 2 km southeast of Monteverde, on the 

Pacific watershed, pasture, forest edges, and montane evergreen 

cloud forest (lower montane wet forest and lower mon-

Abril 2004 

tane rain forest zones), 10°18'N, 84°48'W, 1400 m, 18-21 mar 

1973 (fl), Burger & Gentry 8799 (CR, F); Cerro Pando, ridges 

above the Río Cotón and Río Negro, Southern Puntarenas 

Prov, 8˚55'N, 82˚45'W, 1000-1800 m, 19-21 feb 1982 (fl), 

Barringer & Gómez 1618 (CR); Coto Brus, Fila Cruces, Las 

Cruces Biological Station, “Melissa Meadow” reforestation 

area, 1000 m, forest edge, 8 mar 2001 (fr), Werner 226 (USJ); 

Puntarenas, Cordillera de Tilarán, Monteverde, San Gerardo 

Biological Station, aging second growth forest premontane wet 

forest, 10°17'0"N, 84°48'00"W, 900 m, 8 mar 1995 (fl), 

Penneys 214 (CR, INB, MO); Parque Nacional Corcovado, 

ridge above Río Claro, 8°28'N, 83°35'W, 0-100 m, 24 nov 

1981 (fr), Knapp & Mallet 2198 (MO); Cantón de Puntarenas, 

Monteverde, Pacific slope, lower montane wet forest, upper 

community, Campbell farm, 10°18'N, 84°48'W, 1500 m, 30 jul 

1991 (fr), Haber & Zuchowski 10788 (CR, MO). 

Puntarenas/Alajuela: Evergreen cloud forest and wet wind-gap 

formations (lower montane and premontane rain forest life 

zone) on and near the Continental Divide about 2 to 5 km east 

and southeast of Monteverde, 10°18'N, 84°46'W, 1580-1700 

m, 17 oct 1978 (fl), Antonio 743 (CR). San José: Acosta, Zona 

Protectora Cerros de Escazú, Cerros Escazú, La Carpintera, 

Palmichal, Río Tabarcia, Salvaje, sendero a Cerro Cedral, 

9°51'02"N, 84°09'52"W, 1500-1800 m, 25 feb 1995 (fr), 

Morales 3524 (INB); Mora, Zona Protectora El Rodeo, bosque 

húmedo premontano, bosques de la Universidad para La Paz, 

9°54'00"N, 84°16'00"W, 950-1000 m, 16 set 1996 (fr), 

Cascante 1167 (CR); Moravia, Bajo de la Hondura, 1200 m, 8 

jun 1977 (fr), Gómez-Laurito & Bermúdez 2848 (USJ). 

GUATEMALA. Petén: La Cumbre, in low forest, east of km 138, 

bordering village, 29 set 1966 (fr), Contreras 6283 (MO); 

Cansis, in low forest in corozal, west of Cadenas Road, 13 oct 

1966 (fr), Contreras 6418 (MO). HONDURAS. Atlántida: 

Lancetilla Valley, near Tela, 20-600 m, 6 dec 1927-20 mar 

1928 (fr), Standley 52745 (US). Colón: Trujillo, howler site, 

along Río Selen 7 miles E Trujillo, 19 may 1980, Saunders 285 

(MO). MÉXICO. Chiapas: 5 km al E de Raudales, 130 m, 6 abr 

1966 (fl), Quintero 3474 (MO); San Cristóbal de Las Casas, 

Santa Cruz en San Filipe, 15 nov 1986 (fr), Méndez & de López 

9488 (MO). Veracruz: San Andrés Tuxtla, 2 km al N de la 

Estación de Biología Tropical Los Tuxtlas, 18°34' y 18°36'N, 

95°04' y 95°09'W, 25 set 1986 (fr), Cedillo 3683 (MO). 

NICARAGUA. Río San Juan: Entre el pueblo de San Juan del 

Norte Nuevo y la casa de Ramón Castillo viajando por el Caño 

San Juanillo, 10°55'N, 83°49'W, 0-100 m, 7 jul 1994, Rueda et 

al. 1833 (MO). Zelaya: El Zapote, 40 km al NE de Nueva 

Guinea, camino al NE de San Martín, 11°49'N, 84°23'W, 130- 

150 m, 26 feb 1984 (bo, fl), Sandino 4751 (MO); Caño 

Montecristo, al E del campamento Germán Pomares, 11°36'N, 

83°52'W, 60-90 m, 8 feb 1982 (fr), Moreno 15156 (MO). 

PANAMÁ. Chiriquí: Vicinity of Fortuna Dam, along trail across 

valley south of lake forest, 8°45'4"N, 82°15'4"W, 1300-1400 

m, 7 feb 1987 (fr), McPherson 10400 (MO); Bugaba, Santa 

Clara, Hartmann's Finca, montane forest with distinct dry season, 

08°50'N 82°44'W, 1300 m, 26 feb 1985 (fl), van der Werff 

& Herrera 7112, 7114 (MO). Panamá: 14 km N of 

Panamerican Highway on El Llano to Carti Road under 

canopy, 29 ene 1977 (bo, fl), Folsom & Collins 1518 (MO). 


TAXON EXCLUIDO 

Smilax regelii Killip & C. Morton var. regelii, Publ. 

Carnegie Inst. Wash. 461(12): 272. 1936. TIPO: 

isolectotipo probablemente de “Smilax grandifolia” 

Regel, ex Horto Bot. Petropolitano” (GH!). 

Smilax grandifolia fue descrita por Regel (1856) 

con base en una planta del Jardín Botánico de San 

Petersburgo, cuya semilla era originaria de Brasil y 

fue enviada por Riedel. El tipo no fue encontrado en 

el Herbario LE de San Petersburgo (Leningrado), 

Rusia (Andreata 1997). De Candolle (1878) comenta 

que esta planta fue cultivada en 1875 en el Jardín 

Botánico de Múnich con un nombre falso y de origen 

desconocido. Andreata (1997) examinó las colecciones 

del Herbario M (Múnich), donde halló cinco 

especímenes con varios nombres, números y diferentes 

fechas. 

Ella considera que el material cultivado en Múnich 

probablemente fue enviado por Riedel, pero se considera 

dudoso. Además, podría ser de la Amazonia, 

donde Riedel estuvo en 1928 (Urban 1906). En el 

Field Museum de Chicago (F) se encuentra una foto 

(# 25119) procedente del Herbario de Ginebra que, al 

parecer, corresponde a S. grandifolia. Andreata 

(1997) sitúa a S. grandifolia como sinónimo de S. 

longifolia y asigna un lectotipo del Herbario de Kew 

(K), que es un isotipo de LE. 

Killip & Morton (1936) tratan a S. grandifolia 

Regel como sinónimo de S. regelii basados en la 

descripción hecha por De Candolle (1878), así como 

en el espécimen del Gray Herbarium (GH), identificado 

como S. grandifolia Regel. Tanto Killip & Morton 

como Huft (1994) sugieren que este espécimen es 

probablemente el material tipo de S. grandifolia. 

Al examinar el material de S. longifolia, de Brasil, 

muestra tallos con dos hileras de aguijones en cada 

ángulo, por lo que parece ser una especie diferente a 

S. vanilliodora. 

AGRADECIMIENTOS. Este estudio es parte de una tesis de 

maestría en la Escuela de Biología de la Universidad de 

Costa Rica, con una beca del Servicio Alemán de 

Intercambio Académico (DAAD) otorgada a la autora. 

Otras instituciones que hicieron posible esta investigación 

son el Centro Agronómico Tropical de Investigación y 

Enseñanza (CATIE) y el Instituto Tecnológico de Costa 

Rica sede en San Carlos; además la Finca Coope San Juan


Vol. 4, Nº 1 

y el Jardín Agroecológico Bougainvillea, con apoyo 

económico y logístico. El Jardín Botánico de Missouri, a 

través de una beca Elizabeth Bascom, permitió la revisión 

de literatura y de especímenes tipo. 


Andreata, R.H.P. 1979. Smilax spicata Vell. (Smilacaceae). 

Considerações taxonômicas. Rodriguesia 31: 

105-115. 

Andreata, R.H.P. 1980. Smilax Linnaeus (Smilacaceae). 

Ensaio para uma revisão taxonômica das espécies 

brasileiras. Arch. Jar. Bot. Rio de Janeiro 24: 179-301. 

Andreata, R.H.P. 1982. Smilax L. (Smilacaceae). Espécies 

brasileiras. II. S. cissoides Mart. ex Griseb. Descricão 

da flor masculina, nova ocorrência e novo sinônimo. 

Cadernos Pesq. 2, Sér. Bot. 49: 49-54. 

Andreata, R.H.P. 1984a. Smilax L. (Smilacaceae). 

Espécies brasileiras. I. S. longifolia Richard; localização 

e classificação dos tipos e seus sinônimos. Rodriguesia 

36: 45-50. 

Andreata, R.H.P. 1991. Smilacaceae. In: F. de Barros, M. 

M.R.F. de Melo, S.A.C. Chiea, M. Kirizawa, M.G.L. 

Wanderley & S.L. Jung-Mendaçolli (eds.). Flora 

fanerogâmica da Ilha do Cardoso. Caracterização geral 

da vegetação e listagem das espécies ocorrentes. São 

Paulo. Instituto de Botânica 1: 170-171. 

Andreata, R.H.P. 1995. Smilacaceae. In: B. Stannard (ed.). 

Flora of Pico das Almas. Royal Botanic Gardens, Kew. 

p. 770-772. 

Andreata, R.H.P. 1996. Smilacaceae. In: M. P. M. Lima & 

R.R. Guedes-Bruni (eds.). Reserva Ecológica de Macaé 

de Cima, Nova Friburgo, RJ: Aspectos florísticos das 

espécies vasculares. Jardim Botânico do Rio de Janeiro, 

Rio de Janeiro, Brasil. p. 433-440. 

Andreata, R.H.P. 1997. Revisão das espécies brasileiras do 

gênero Smilax Linnaeus (Smilacaceae). Pesquisas, Bot. 

47: 1-243. 

Andreata, R.H.P. & J. Cowley. 1987. Smilacaceae. In: 

A.M. Giulietti, N.L. Menezes, J.R. Pirani, M. Meguro 

& M.G.L. Wanderley. Flora da Serra do Cipó, Minas 

Gerais: Caracterização e lista das espécies. Bol. Bot. 

Univ. São Paulo 9: 132. 

Andreata, R.H.P. & T.S. Pereira. 1990. Morfologia das 

plântulas de algumas espécies de Smilax. Pesquisas Bot. 

41: 7-24. 

Andreata, R.H.P. & M.G.L. Wanderley. 1984b. 195- 

Smilacaceae. In: Flora fanerogâmica do Parque 

Estadual das Fontes do Ipiranga (São Paulo, Brasil). 

Hoehnea 11: 114-118. 

Apt, F.W. 1922. Beiträge zur Kenntnis der mittelamerikanischen 

Smilaceen und Sarsaparilldrogen. II. 

Repert. Spec. Nov. Regni Veg. 18: 407, 416. 

Arber, A. 1920. Tendrils of Smilax. Bot. Gaz. 69: 438-422. 

Arveiller, R. 1985. Notes D’Etymologie et De Lexique. 

Revue de Lingistique Romane 49:131-134. 

Baillon, H. 1894. Smilacaceae. In: Histoire des plantes. 

Paris, Librairie Hachette 12: 430-433, 530-531. 

Bentham, G. & J.D. Hooker. 1880. Liliaceae. In: Genera 

Plantarum. London, Lovell Reeve & Co. 3: 751, 763- 

764. 

Brown, R. 1810. Smilacearum. In: Prodromus Florae 

Novae Hollandiae. London. p. 292. 

Burger, W.C. 1991. Estación Biológica de la Reserva 

Forestal de San Ramón. In: R. Ortiz (ed.). Memoria de 

Investigación, Reserva Forestal de San Ramón.San 

Ramón, Sede de Occidente, Universidad de Costa Rica. 

p. 11. 

Chase, M.W., D.E. Soltis, R.G. Olmstead, D. Morgan, 

D.H. Les, B.D. Mishler, M.R. Duvall, R.A. Price, H.G. 

Hills, Y. Qiu, K.A. Kron, J.H. Rettig, E. Conti, J.D. 

Palmer, J.R. Manhart, K.J. Sytsma, H.J. Michaels, W.J. 

Kress, K.G. Karol, W.D. Clark, M. Hedrén, B.S. Gaut, 

R K. Jansen, K. Kim, C.F. Wimpee, J.F. Smith, G.R. 

Furnier, S.H. Strauss, Q. Xiang, G.M. Plunkett, P.S. 

Soltis, S.M. Swensen, S.E. Williams, P.A. Gadek, C.J. 

Quinn, L.E. Eguiarte, E. Golenberg, G.H. Learn jr., 

S.W. Graham, S.C.H. Barrett, S. Dayanandan & V.A. 

Albert. 1993. Phylogenetics of seed plants: an analysis 

of nucleotide sequences from the plastid gene rbcL. 

Ann. Missouri Bot. Gard. 80: 528-580. 

Chase, M.W., M.R. Duvall, H.G. Hills, J.G. Conran, A.V. 

Cox, L.E. Eguiarte, J. Hartwell, M.F. Fay, L.R. 

Caddick, K.M. Cameron & S. Hoot. 1995a. Molecular 

phylogenetics of Lilianae. In: P.J. Rudall, P.J. Cribb, 

D.F. Cutler & C.J. Humphries (eds.). Monocotyledons: 

systematics and evolution. Royal Botanic Garden, Kew. 

p. 109-137. 

Chase, M.W., D.W. Stevenson, P. Wilkin & P.J. Rudall. 

1995b. Monocot systematics: a combined analysis. In: 

P.J. Rudall, P.J. Cribb, D.F. Cutler & C.J. Humphries 

(eds.). Monocotyledons: systematics and evolution. 

Royal Botanic Garden, Kew. p. 685-730 

Choussy, F. 1926. Flora salvadoreña. Publicación del 

Ministerio de Instrucción Pública de la República de El 

Salvador. Tomo I: p 1. 

Clos, D. 1857. Les vrilles des Smilax nifolioles ni stipule. 

Bull. Soc. Bot. Fr. 4: 984-987. 

Cronquist, A. 1968. The evolution and classification of 

flowering plants. Boston, Houghton Mifflin. 

Cronquist, A. 1981. An integrated system of classification 

of flowering plants. Columbia University Press, New 

York. 

Dahlgren, R. & H. Clifford. 1982. The monocotyledons: A 

comparative study. London, Academic Press. 

Dahlgren, R., H. Clifford & P. Yeo. 1985. The families of

Abril 2004 


Figura 11. Smilax vanilliodora Apt. A. Flor femenina, B. Flor masculina, C. Estambre, D. Semillas, E. Rama vegetativa 



Vol. 4, Nº 1 

1. La presencia y la ausencia de alas en los tallos y 

los distintos tamaños de las anteras, en comparación 

con los filamentos, son caracteres que muchos 

autores han usado para distinguir S. vanilliodora y 

S. chiriquensis. Los especímenes Gentle 6702 y 

Sandino 4751 (ambos en MO), que Huft (1994) 

trata en S. regelii, son plantas masculinas con 

anteras no bien desarrolladas. En el material 

revisado en Costa Rica se encuentran anteras más 

cortas o largas que los filamentos en una sola 

muestra. 

2. El color de los frutos varía a lo largo del desarrollo 

de la maduración. En Costa Rica la mayoría de los 

especímenes de S. vanilliodora recolectados presentan 

frutos rojos y ocasionalmente son rojos a 

púrpura. En cambio, en los especímenes de S. 

chiriquensis de Panamá son de color rojo o negro. 

3. En la literatura ambos sinónimos han sido descritos 

con caracteres geográficamente restringidos. Así, 

S. chiriquensis ha sido tradicionalmente considerada 

como una especie endémica de Panamá y S. 

vanilliodora endémica de Costa Rica. 

4. Killip & Morton (1936) describen la variedad S. 

regelii var. albida y la distinguen de S. regelii var. 

regelii (excluida aquí, ver adelante) por las bayas 

Figura 12. Distribución geográfica de Smilax vanilliodora 

(=) en Costa Rica. 

blancas y mencionan que solamente se conoce por 

el espécimen tipo (Standley 53257, US), que muestra 

tallos cuadrados con alas poco prominentes, 

hojas con base cordada y pedúnculos más largos 

que el pecíolo subyacente, caracteres que coinciden 

con la descripción de S. vanilliodora. 


Eastern slopes of Volcán Miravalles, west of Bijagua, near the 

Río Zapote, 10°44'N, 85°5'W, ca. 600 m, 11-12 feb 1982 (fl), 

Burger et al. 11728 (CR); San Carlos, Cuenca del San Carlos, 

ca. 7 km NE Boca Tapada, Lagarto Lodge, 10°41'10"N, 

84°10'50"W, 90 m, 27 jul 1996, Hammel 20351 (INB); San 

Ramón, Reserva Biológica Alberto Manuel Brenes, Cordillera 

de Tilarán, sendero de entrada a la estación, 10°13'00"N, 

84°57'00"W, 850 m, 16 mar 1996 (fr), Gómez-Laurito et al. 

12847 (USJ); Reserva Biológica Monteverde, Río Peñas 

Blancas Valley, area near Refugio Alemán, 10°18'N, 84°45'W, 

900-1100 m, 28 feb 1992 (bo, fl), Haber et al. 11297 (INB). 

Cartago: Tapantí, Forest on ridge between Quebrada Casa 

Blanca and road to Tránsito, 9°47'N, 83°47'W, ca. 1400 m, 10 

ago 1984 (fr), Grayum & Jacobs 3728 (CR, MO); Turrialba, 

Monumento Nacional Guayabo, Santa Teresita, sobre los Ríos 

Guayabo, Lajas y Torito, 9°57'50"N, 83°41'30"W, 700-1800 

m, 8 may 1992 (fr), Rivera 1684 (CR); Turrialba, 

Interamerican Institute of Agricultural Sciences, feb 1950 (bo, 

fl), León 2277 (USJ); Turrialba, Monumento Nacional 

Guayabo, 600 m, 1 feb 1900 (fr), Sánchez 53 (USJ). 

Guanacaste: Liberia, Parque Nacional Guanacaste, Cordillera 

de Guanacaste, Estación Cacao, Sendero casa de Fran, 

10°55'45"N, 85°28'15"W, 1100 m, 8 feb 1995 (bo, fl), Picado 

43 (CR, INB, MO); Liberia, Parque Nacional Guanacaste, 

Cordillera de Guanacaste, Estación Cacao, Sendero Arenales, 

bosque primario, 10°55'43"N, 85°28'10"W, 1100 m, 9 feb 1995 

(fr), Ávila 38 (INB); Rio Chiquito de Tilarán, Rio Negro valley, 

Atlantic slope, lower montane wet forest, 10°22'N 84°52'W, 

1400 m, 30 jul 1986 (fr), Haber ex Bello 5858 (MO). Heredia: 

S base of Cerros Sardinal, Chilamate de Sarapiquí (N side of 

Río Sarapiquí), 10°27.5'N, 84°04'W, 80-110 m, 4 jul 1985 (fr), 

Grayum & Hammel 5545 (MO); Parque Nacional Braulio 

Carrillo, Los Llanos de Quesada, aluvión del Río Sucio, bosque 

muy húmedo tropical, 450 m, 11 feb 1984 (fl), Gómez et al. 

21018 (CR); Sarapiquí, Puerto Viejo, Finca La Selva, the OTS 

Field Station on the Río Puerto Viejo just E of its junction with 

the Río Sarapiquí, Sendero Ribereño, bluffs above the Río 

Sarapiquí, 100 m, 5 jun 1985 (fr), Jacobs 3251 (USJ). Limón: 

Limón, El Progreso, entre Cerro Muchilla y Cerro Avioneta, 

Fila Matama, siguiendo la fila y los flancos, Valle de la 

Estrella, 9°47'40"N, 83°06'30"W, 850 m, 8 abr 1989 (bo, fl), 

Herrera & Madrigal 2554 (CR, INB, MO); Pococí, R. N. F. S. 

Barra del Colorado, Llanura de Tortuguero, Sector Corosí, 

10°35'40"N, 83°45'00"W, 100 m, 8 dic 1990 (fr), Rojas 185 

(CR); Talamanca, Bratsi, Amubri, Alto Lari, Kivut, 9°24'15"N, 

83°05'15"W, 1300 m, 7 mar 1992 (bo, fl), Herrera 5211 (INB). 

Puntarenas: About 2 km southeast of Monteverde, on the 

Pacific watershed, pasture, forest edges, and montane evergreen 

cloud forest (lower montane wet forest and lower mon-


TIPOS DE ORQUIDÁCEAS BRENESIANAS, DESCRITAS POR 

R. SCHLECHTER, EN EL HERBARIO NACIONAL DE COSTA RICA 

La revisión de los tipos de las orquídeas de R. 

Schlechter, realizada por K. Barringer (1986), incluye 

89 de los 92 especímenes tipo recolectados por 

Alberto M. Brenes. Debido a la destrucción de 

muchos de los holotipos en el bombardeo de Berlín 

en 1943 y a lo complicado de la numeración de las 

muestras de A.M. Brenes (L.D. Gómez, citado por 

Barringer 1986), en ese momento no fue posible 

encontrar todos los ejemplares nombrados por 

Schlechter (1923); por esa razón, algunas de las tipificaciones 

fueron basadas en la colección de dibujos 

que se encuentra en el Oakes Ames Orchid 

Herbarium (AMES). 

Durante la revisión y actualización de la colección 

de ejemplares tipo depositados en el Herbario 

Nacional de Costa Rica (CR), se hallaron siete 

ejemplares de orquídeas recolectados por A.M. 

Brenes, que corresponden a duplicados de los tipos 

incluidos en la lista de Barringer (1986), pero que 

no fueron mencionados como tipos por dicho 

autor. Esta nota tiene como fin informar a la 

comunidad científica la existencia en CR de 

dichos tipos, ya que algunos constituyen el único 

duplicado conocido hasta ahora. De cada ejemplar 

se indica el nombre original, la cita de la publicación 

original, la categoría del tipo asignada por 

Barringer (1986), el país, el nombre y el número 

de recolecta, el número de registro en CR y un 

apartado de observaciones sobre la condición general 

del ejemplar. 

SILVIA LOBO C. 

Herbario Nacional de Costa Rica (CR), Museo Nacional de Costa Rica 

Apdo. postal 749-1000 San José, Costa Rica, A.C. - museohn@racsa.co.cr 

ABSTRACT. This note informs about the presence of seven Brenesian orchid types, described by R. 

Schlechter, in the Herbario Nacional de Costa Rica (CR) type collection, whose existence was unknown. 

RESUMEN. Esta nota revela la existencia, en el Herbario Nacional de Costa Rica (CR), de siete tipos de 

orquídeas brenesianas descritas por R. Schlechter, que no habían sido comunicados previamente. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Type specimens, Orchidaceae, orchids, Herbario Nacional de Costa Rica 

(CR), R. Schlechter. A.M. Brenes. 

Epidendrum modestiflorum Schltr., Repert. Spec. 

Nov. Regni Veg. Beih. 19: 213. 1923. ISOLEC- 

TOTIPO: Costa Rica, A.M. Brenes 128 (CR 

25822). FIG. 1. 

OBSERVACIONES: El espécimen es estéril; no 

obstante, la parte vegetativa está en buenas condiciones. 

Epidendrum ramonianum Schltr., Repert. Spec. 



25820). FIG. 2. 

OBSERVACIONES: El ejemplar es fértil y está en 

buenas condiciones. 

Epidendrum serricardium Schltr., Repert. Spec. 



33908). FIG. 3. 

OBSERVACIONES: El espécimen cuenta con pocas 

flores y su estado general es regular. Este nombre 

se considera sinónimo de E. vincentinun Lindl. 

(Pupulin 2002). 

Hexadesmia rigidipes Schltr., Repert. Spec. Nov. 

Regni Veg. Beih. 19: 206. 1923. ISOLECTOTIPO: 

Costa Rica, A.M. Brenes 145 (CR 25876). FIG. 4. 

OBSERVACIONES: El espécimen es fértil; no 

obstante, su condición es regular. Este nombre 

se considera sinónimo de Scaphyglottis lindeniana 

(A. Rich. & Gal.) L. O. Williams (Pupulin 

2002).


Vol. 4, Nº 1 

Figura 1: Isolectotipo de Epidendrum modestiflorum Schltr.

Abril 2004 

Figura 2: Isolectotipo de Epidendrum ramonianum Schltr. 

LOBO - Tipos de orquidáceas brenesianas 39


Vol. 4, Nº 1 

Figura 3: Isolectotipo de Epidendrum serricardium Schltr. 

Maxillaria acutifolia Schltr., Repert. Spec. Nov. 

Regni Veg Beih. 19: 229. 1923. ISONEOTIPO: 

Costa Rica, A.M. Brenes 173(504) (CR 25964). 

FIG. 5. 

OBSERVACIONES: El ejemplar es fértil y se halla en 

buenas condiciones. Este nombre se considera 

sinónimo de M. angustissima Ames, F.T. Hubb. & 

C. Schweinf. (Pupulin 2002). 

Pleurothallis ramonensis Schltr., Repert. Spec. Nov. 

Regni Veg. Beih. 19: 193. 1923. ISOLECTOTIPO: 

Costa Rica, A.M. Brenes 88 (CR 26195). FIG. 6. 

OBSERVACIONES: Este ejemplar no se encuentra en 

buenas condiciones y posee una única flor que está 

separada de la planta. Este nombre se considera 

sinónimo de Stelis alajuelensis Pridgeon & M. W. 

Chase (Pupulin 2002).

Abril 2004 

Figura 4: Isolectotipo de Hexadesmia rigidipes Schltr. 



Vol. 4, Nº 1 

Figura 5: Isoneotipo de Maxillaria acutifolia Schltr.

Abril 2004 

Figura 6: Isolectotipo de Pleurothallis ramonensis Schltr. 



Vol. 4, Nº 1 

Figura 7: Isolectotipo de Sobralia neglecta Schltr.

Abril 2004 

Sobralia neglecta Schltr., Repert. Spec. Nov. Regni 

Veg. Beih. 19: 161. 1923. ISOLECTOTIPO: Costa 

Rica, A.M. Brenes 279 (CR 26282). FIG. 7. 

OBSERVACIONES: El espécimen está en una condición 

regular y posee una única flor separada del 

resto del material. 

AGRADECIMIENTOS. Deseo agradecer al Dr. Carlos O. 

Morales (USJ) por sus valiosas observaciones y contribuciones 

a este manuscrito. 

LOBO - Tipos de orquidáceas brenesianas 45 


Barringer, K. 1986. Typification of Schlechter’s Costa 

Rican Orchidaceae. I. Types collected by A. Brenes. 

Fieldiana, Bot. n.s. 17: 1-24. 

Pupulin, F. 2002. Catálogo revisado y anotado de las 

Orchidaceae de Costa Rica. Lankesteriana 4: 1-88. 

Schlechter, R. 1923. Beiträge zur Orchideenkunde von 

Zentralamerika. II. Additamenta ad Orchideologiam 

Costaricensem. Orchidaceae Brenesianae. Repert. Spec. 

Nov. Regni Veg. Beih. 19: 158-269.


NOTES ON THE CARIBBEAN ORCHID FLORA. V. 

NEW SPECIES, COMBINATIONS AND RECORDS 

The sole species of Telipogon from the Caribbean 

was discovered by Donald Dod in the Dominican 

Republic and identified by Leslie Garay as 

Stellilabium minutiflorum (Kraenzl.) Garay, a species 

whose type hails from Costa Rica. Dressler (1999) 

pointed out that S. minutiflorum has been one of the 

most widely used names in Central America encompassing 

plants that might be different species, though 

JAMES D. ACKERMAN 

Department of Biology, University of Puerto Rico, PO Box 23360 San Juan, PR 00931-3360, USA 

ackerman@upracd.upr.clu.edu 

ABSTRACT. Three species of Orchidaceae are described as new to science: a Telipogon and a Lankesterella 

from the Dominican Republic and an Encyclia from Cuba. Telipogon niri is based on material collected by 

Donald Dod from the Cordillera Central A rare species, T. niri was previously recognized as Stellilabium 

minutiflorum (Kraenzl.) Garay, a distinct species from Central America. The generic name has changed due 

to unequivocal molecular evidence offered by Norris Williams, and the specific epithet honors Dr. Mark 

Nir, an avid student of Caribbean orchids. Lankesterella glandula is also based on material collected by Dod 

from the Cordillera Central. Thus far known only from the type collection, it is the second representative of 

the genus in Hispaniola. Encyclia monteverdensis is described from 19th century Charles Wright collections 

from Monte Verde, Cuba. The combination, Dendrophylax filiformis (Sw.) Carlsward & Whitten, suffers as 

a later homonym and is replaced by the next available name in the new combination Dendrophylax monteverdi 

(Rchb. f.) Ackerman & Nir. Cyclopogon miradorensis Schltr. is reported for the island of Dominica; 

Cranichis ricartii Ackerman is noted for the island of Guadeloupe; Cranichis ovata Wickstr. and Psilochilus 

macrophyllus (Lindl.) Ames are noted for Montserrat; and Trinidad is another locality for C. ovata. In addition, 

Eurystyles domingensis Dod and two Malaxis species are added to the Cuban flora: M. apiculata Dod 

and M. hispaniolae (Schltr.) L.O. Williams. 

RESUMEN. Tres especies de Orchidaceae se describen como nuevas para la ciencia: un Telipogon y una 

Lankesterella de República Dominicana y una Encyclia de Cuba. Telipogon niri se basa en material recolectado 

por Donald Dod en la Cordillera Central. Una especie rara, T. niri había sido determinada como 

Stellilabium minutiflorum (Kraenzl.) Garay, una especie distinta de Centro América. El nombre del género 

ha cambiado debido a la evidencia molecular inequívoca presentada por Norris Williams, y el epíteto específico 

honra al Dr. Mark Nir, un ávido estudioso de las orquídeas del Caribe. Lankesterella glandula se basa 

también en material recolectado por Dod en la Cordillera Central. Hasta ahora se conoce solamente el ejemplar 

tipo, y es el segundo representante del género en la Isla Española. Encyclia monteverdensis se describe 

de ejemplares de Charles Wright recolectados en el siglo XIX en Monte Verde, Cuba. La combinación 

Dendrophylax filiformis (Sw.) Carlsward & Whitten es un homónimo posterior y se reemplaza por el próximo 

nombre disponible en la nueva combinación Dendrophylax monteverdi (Rchb. f.) Ackerman & Nir. 

Cyclopogon miradorensis Schltr. se registra en la isla Dominica; Cranichis ricartii Ackerman en la isla 

Guadalupe; Cranichis ovata Wickstr. y Psilochilus macrophyllus (Lindl.) Ames en Montserrat, y Trinidad 

es otra localidad de C. ovata. Además, Eurystyles domingensis Dod y dos especies de Malaxis se añaden a la 

flora de Cuba: M. apiculata Dod y M. hispaniolae (Schltr.) L.O. Williams. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Orchidaceae, Orchid Flora, Encyclia, Lankesterella, Stellilabium, Telipogon, 

Cuba, Dominican Republic, Greater Antilles, Lesser Antilles 

the lack of good material makes taxonomic determinations 

difficult. Thus, S. minutiflorum has been the 

generally accepted name for the Dominican plants, 

although Nir (2000) noted some differences between 

the type (Costa Rica, Endres s.n., W) and the Dod 

collections. 

After studying specimens myself, and comparing 

them to the illustration of the Endres collection


Vol. 4, Nº 1 

Figure 1. Telipogon niri Ackerman. A. Plant habit. B. Plant habit, lower half. C. Plant habit, upper half. D. Perianth, 

clockwise from top: dorsal sepal, petal, lateral sepal, lateral sepal, petal. E. Labellum and column, front view. 

F. Labellum and column, lateral view. G. Anther and pollinarium. Based on Liogier 13512 (NY) collected in the 

Dominican Republic. Illustrated by Bobbi Angell. 

(AMES!) and a photographic slide of a Costa Rican 

plant shown to me by R. L. Dressler, I have concluded 

that the Dominican specimens are quite different 

from S. minutiflorum. Furthermore, the molecular 

systematics of Telipogon alliance by Williams et al. 

(in prep.) clearly shows that at least this group of 

Stellilabium is embedded in Telipogon, making the 

latter genus the appropriate taxon for this species. 

Telipogon niri Ackerman, sp. nov. 

TYPE: DOMINICAN REPUBLIC. Bonao, Casabito, 

Sept. 1968, A.H. Liogier 13512 (= Dod 168) (holotype 

NY!). FIG. 1 

Rhachidi alata, labello hastato-ovato hispido ad 

basim breviter lobato, columnae trilobulatae lobulis 

lateralibus simplicisetibus, medio hispido. 

Plants epiphytic, less than 10 cm tall. Roots few, 

fasciculate, thick for size of the plant, to 4 cm long, 1- 

2.5 mm diam. Stems rhizomatous, short, 2-4 mm 

long, covered by persistent leaf bases. Leaves 1-2, 

coriaceous, elliptic, cuspidate, acute, 4.5-5 mm long, 

2 mm wide. Inflorescences erect; scape ancipitous, 

triquetrous, internodes 5-10 mm long, bracts abruptly 

divergent, ovate, acute, 1-2 mm long; racemes ancipitous, 

sparsely 2- to 4-flowered; floral bracts similar to 

scape bracts. Flowers minute, erect; pedicel slender, 2 

mm long; ovary ellipsoid, prominently ribbed, 2.5 

mm long; sepals greenish, 1-nerved, glabrous, entire, 

dorsal sepal concave, upper margins inrolled, ovate, 

acute to obtuse, 2 mm long, 1 mm wide, lateral sepals 

with upper margins slightly inrolled, broadly ovate, 

obtuse, slightly cuspidate, 1.75 mm long, 1.25 mm 

wide; petals greenish, 1-nerved, minutely ciliate, 

elliptic-oblanceolate, asymmetrically acute, 2 mm 

long, 0.75 mm wide; lip reddish to cinnamon brown,

Abril 2004 

hispid adaxially, short-hastate, the basal lobes spreading, 

not extending beyond the base of the column, 

ovate, acute, 1.5 mm long, 1.3 mm wide; column 

pubescent, short, 0.9 mm long, lateral lobes ca. 0.5 

mm long, arching above stigmatic cavity with simple 

apical bristles, median lobe hispidulous. Fruits on 

slender pedicels 1.8-2 mm long; capsules prominently 

ribbed, ellipsoid to subglobose, 1.8-5 mm long, to 3 

mm diam. 

The molecular systematics work of Williams et al. 

(in prep.) included T. niri. Their results show that the 

species is allied to T. minutiflorus Kraenzl. and other 

Central American species distinguished by a ribbonlike 

inflorescence rachis, trilobed column, fleshy stigma, 

and an adnate labellum (Dressler’s Stellilabium 

sect. Taeniorhachis). 

Telipogon niri differs from T. minutiflorus by having 

simple bristles on the lateral lobes of the column, 

and stubby lateral basal lobes of the labellum. On the 

other hand, T. minutiflorus has stellate bristles and the 

labellum has long basal lobes that flank the column 

nearly to the height of the anther. Furthermore, the 

general labellum shape of T. niri is more ovate than 

broadly oblong as in T. minutiflorus. 

The type collection carries two collectors, Alain 

Liogier and Donald Dod. Dod’s name and number is 

handwritten by Dod whereas Liogier’s is typed on the 

label. When Liogier was at the Jardín Botánico 

Nacional “Rafael Moscoso” in Santo Domingo, it was 

his practice to put his own numbers on Dod’s collections 

because Dod had not yet done so himself (Dod, 

pers. comm.). 

DISTRIBUTION: Dominican Republic: Prov. Monseñor 

Nouel, Cordillera Central. 

ECOLOGY: Plants are epiphytes on trees overhanging 

rivers in wet montane, broadleaf forests at about 

1200-1250 m. Fruit set is good; the flowers are perhaps 

autogamous. Plants are quite rare. I had visited 

the original collection site of this plant with Donald 

Dod in 1995 but we failed to find any specimens. 

ETYMOLOGY: The specific epithet honors Dr. Mark 

Nir, a successful Dermatologist whose thick skin has 

been bitten by the orchid bug, causing him to suffer a 

severe case of the fever. Delirious, he undertook and 

completed the first comprehensive treatment of the 

ACKERMAN - Notes on the Caribbean orchid flora. V 49 

Caribbean orchid flora since Cogniaux’s Symbolae 

Antillanae and has helped me in numerous ways in 

my efforts to publish the Orchidaceae treatment for 

the Flora of the Greater Antilles. 

Lankesterella glandula Ackerman, sp. nov. 

TYPE: DOMINICAN REPUBLIC. La Harme [sic] above 

San José de Ocoa on branches of old trees in virgin 

forest, alt. 2200 m, 23 Jan 1976, D. Dod s.n. (holotype 

SEL!). FIG. 2 

Inflorescentia floris solae, scapo sepalisque glandulosis, 

vix folia superantibus, labelli epichilo ovato, 

acutato. 

Plants small, caespitose epiphytes. Roots few, fasciculate, 

fleshy, villous, 10 mm long, 1.5 mm diam. 

Stems abbreviated, concealed by roots and leaf bases. 

Leaves 10, in a basal rosette, sessile to broadly petiolate; 

petioles when present to 4 mm long; blades 

membranaceous, ciliolate, lanceolate, elliptical or 

oblanceolate, acute to acuminate, 12-17 mm long, 4-6 

mm wide. Inflorescences slender, single-flowered; 

scape glandular, extending beyond the leaves, to 17 

mm long, 0.2 mm diam. below, inflating to 0.5 mm 

just below the flower; floral bract irregularly crenulate-ciliate, 

ovate, caudate, 7.5 mm long, 4-4.5 mm 

wide, dorsal mid rib sparsely glandular pubescent. 

Flowers large for size of plant; ovary sessile, stout, 2 

mm long; dorsal sepal adaxially glandular, conduplicate, 

1-nerved, narrowly oblong, acute to acuminate, 

6-8.5 mm long, 1.2-1.5 mm wide, lateral sepals 

broadly attached to column foot, basally connate, 

forming a gibbose, mentum 1 mm deep, 1-nerved, 

lanceolate, acuminate, 7-9 mm long to tip of mentum, 

1.2-1.5 mm wide; petals free, glabrous, entire, 3nerved, 

somewhat obliquely oblanceolate, acuminate, 

6 mm long, 1.2 mm wide; lip basally concave and 

adnate to the column foot, glabrous, entire, pandurate, 

7-8.5 mm long, hypochile 5-nerved, 1.5-1.6 mm 

wide, isthmus 3-nerved, 1 mm wide, epichile ovate, 

acute, 4 mm long from the isthmus, 1.7-2.5 mm wide; 

column arcuate, 2-2.5 mm long, filament slender, 

arcuate, 1 mm long, anther lanceolate, acuminate, 2.5 

mm long, stigma apical, pressed against anther. 

Fruits obovoid, ca. 7 mm long, 3 mm diam. 

Lankesterella glandula is easily distinguished from 

L. alainii by the former being glandular rather than


Vol. 4, Nº 1 

Figure 2. Lankesterella glandula Ackerman. A. Plant habit. B. Leaf. C. Inflorescence and flower, lateral view. 

D. Perianth, clockwise from top: dorsal sepal, labellum, lateral sepal, petal. E. Flower, lateral view with petals and one 

lateral sepal removed. Based on D. Dod s.n. (SEL) collected from the Dominican Republic. Illustrated by Bobbi Angell. 

villous. Furthermore, the labellum has an acute apex 

rather than a rounded one. Most, if not all other 

Lankesterella are conspicuously pubescent, usually as 

villous as L. alainii. According to Nir’s (2000) classification, 

L. glandula should be under Lankesterella 

section Lankesterella. 

Dod made his collection in 1976. I had visited the 

region in the mid 80’s and again in the mid 90’s and 

most of the area is quite denuded. 

DISTRIBUTION: Dominican Republic: Prov. Peravia; 

Cordillera Central. 

ECOLOGY: Epiphytic in a broadleaf cloud forest. 

Elevation 2200 m. Rare. Autogamous by virtue of the 

column arching downward bringing the apical stigma 

in direct contact with the anther. Flowering: Jan; 

fruiting: Jan. 

ETYMOLOGY: The specific epithet refers to the glandular 

scape and adaxial surface of the sepals. 

The genus Encyclia in Cuba is quite complex and 

Marta A. Díaz and I make no claim that our studies of 

the genus for the Flora of the Greater Antilles have 

resolved all questions regarding the delimitation of 

species. This following one, though, is quite distinctive. 

Encyclia monteverdensis M. A. Díaz & Ackerman, 

sp. nov. 

TYPE: CUBA. [Prov. Guantánamo] prope villam 

Monte Verde dictam, Cuba orientali, Jan-Jul 1859, C. 

Wright 1489 (holotype: AMES 73736; isotypes: 

AMES 73735, K-L). FIG. 3

Abril 2004 

ACKERMAN - Notes on the Caribbean orchid flora. V 51 

Figure 3. Encyclia monteverdensis M. A. Díaz & Ackerman. A. Inflorescence. B. Plant habit with leaf detached. 

C. Perianth parts, counterclockwise from top: dorsal sepal, petal, lateral sepal, labellum. D. Flower, side view with sepals 

and petals removed. Based on type collection, C. Wright 1489 (AMES). Illustrated by Bobbi Angell.


Vol. 4, Nº 1 

Encyclia monteverdensis M. Díaz & Ackerman ab 

Encyclia oxypetala (Lindl.) Acuña petalis spathulatooblanceolatis, 

acutis, labelli lobo medio longiore 

(7.5-8 mm), undulato crispatoque, pseudobulbis 

majoribus, necnon ab Encyclia ochrantha (A. Rich.) 

Withner labelli lobo medio longiore quam lato, apiculato, 

bene distincta. 

Plants robust caespitose, epiphytes. Roots white, 

numerous, produced from rhizome and base of 

pseudobulbs, 1.5-3 mm diam. Stems with short, stout 

rhizomes; pseudobulbs ovoid, subtended by scarious 

bracts shredded with age, to 7 cm long, 4.5 cm diam. 

Leaves 1-3, from apex of pseudobulbs, erect, coriaceous, 

oblong-lanceolate, acute-acuminate, to 42 cm 

long, 4 cm wide. Inflorescences terminal, erect, stout; 

peduncle to 85 cm long, 7 mm diam. near base, bracts 

progressively more distant, scarious, tightly sheathing 

half their length, upper half acuminate and slightly 

divergent from peduncle, to 26 mm long; panicle 

sparsely and diffusely branched, at least 30 cm long, 

branches 16-26 cm long, many-flowered. Flowers 

resupinate; sepals oblanceolate, dorsal sepal acute, 

16.5-17.5 mm long, 5 mm wide, lateral sepals slightly 

oblique, acuminate-cuspidate, 17-18 mm long, 5- 

5.5 mm wide; petals spatulate to unguiculate, acute, 

sometimes apiculate, 16-17 mm long, 5-6.5 mm wide; 

labellum basally adnate to column for 1-2 mm, 

deeply three-lobed, 14.5-15 mm long, lateral lobes 

erect, flanking the column, oblong-falcate, rounded, 

7-8 mm long from claw to apex, 2-3.5 mm wide, isthmus 

2 mm long, 0.7-0.8 mm wide, mid lobe cuneate, 

ovate-elliptic, acute to acuminate, apiculate, 7.5-8 

mm long, 4-4.5 mm wide, margin crisped, apex rolled 

to appear awn-like for 1 mm; column straight, 

clavate, obscurely auriculate, 6-7.5 mm long; pedicelate 

ovary slender, 19-21 mm long. Fruits unknown. 

Based on the form of the labellum, this species is 

closely related to E. oxypetala, but one may distinguish 

the two by the robust plants of E. monteverdensis 

which have very large pseudobulbs. Furthermore, the 

flowers of E. monteverdensis have perianth parts that 

are much wider, and the mid lobe is very obviously 

undulate-crispate. The plant habit of E. monteverdensis 

and the form of the sepals and petals are reminiscent of 

E. ochrantha A. Richard, but the mid lobe of the labellum 

in the latter is broader than long and the apex is 

acute rather than awn-like as in E. monteverdensis. 

The type locality, Monte Verde, is an area of high 

endemism in Cuba. Thus far, this species is only 

known from the Wright’s type collection of which we 

have seen three sheets. Given that this is a large 

Encyclia and we have not seen any other specimens 

other than the type material, we have little hope that 

Encyclia monteverdensis is thriving today. 

DISTRIBUTION: Cuba: Prov. Guantánamo; Macizo de 

Sagua Baracoa. 

ECOLOGY: Encyclia monteverdensis is an epiphyte but 

that is about all we can guess. As was the practice in 

the mid 19th century, Charles Wright did not make 

detailed collection notes. 

ETYMOLOGY: Named for the type locality, Monte 

Verde, Guantánamo Province. 

A NEW COMBINATION 

The story of Dendrophylax filiformis (Sw.) 

Carlsward & Whitten is a horrifying one. The 

basionym, Epidendrum filiforme Sw. was first confused 

with Campylocentrum fasciola (Lindl.) Cogn. 

in the mid 19th century and also with Dendrophylax 

porrectus (Rchb. f.) Carlsward & Whitten in the 

20th century. Floristic treatments until very recently 

have criss-crossed their identities, which has only 

been compounded by the need to get them in the 

right genera. Recent molecular work on neotropical 

Angraecinae (Carlsward et al. 2003), unequivocally 

showed that Swartz’s epithet should be transferred 

to Dendrophylax. 

The eagle eye of Mark Nir, though, discovered 

that the Carlsward & Whitten combination had 

already been made in 1898 by Fawcett in “A provisional 

list of the indigenous and naturalised flowering 

plants of Jamaica”. Fawcett had attributed the 

combination to Bentham, who, having been dead for 

ten years at the time, was unable to defend himself. 

After Mark Nir notified me of the earlier combination, 

I decided to dig deep into the origin of 

Fawcett’s name because of the long history of confusion 

surrounding the epithet. Fawcett placed 

Aeranthes in parenthesis below his combination and 

the only Aeranthes filiformis on record is by 

Grisebach (1864) in “Flora of the British West 

Indian Islands”. Grisebach provided a detailed 

description and cited three specimens from Jamaica

Abril 2004 

(McNab s.n., Purdie s.n., Wilson s.n.) and one from 

Trinidad (Bradford s.n.). The description and all 

four specimens (K!), match that of the earlier name, 

Campylocentrum fasciola. Unfortunately, Grisebach 

also cited Swartz and Lindley’s combinations of filiformis 

in Limodorum and Angraecum, respectively. 

This error may have been the original source of confusion 

between the two species. Because Grisebach 

was no doubt basing his description on the material 

he had seen rather than that of Swartz, Grisebach’s 

Aeranthes filiformis should be regarded as a new 

species, not a new combination. Thus, Aeranthes 

filiformis Griseb. and Dendrophylax filiformis 

(Griseb.) Benth. ex Fawc. should be regarded as 

synonyms of Campylocentrum fasciola Lindl. 

This of course makes Dendrophylax filiformis 

(Sw.) Carlsward & Whitten a later homonym. The 

next available name is the following: 

Dendrophylax monteverdi (Rchb.f.) Ackerman & 

Nir, comb. nov. 

Aeranthes monteverdi Rchb.f, Flora 48: 279. 1865; 

Campylocentrum monteverdi (Rchb.f) Rolfe, 

Orchid Rev. 11: 247. 1903; Harrisella monteverdi 

(Rchb.f) Cogn. in Urb., Symb. Antill. 6: 687. 

1910; Type: CUBA: C. Wright 1497 (holotype 

W!; isotypes NY!, K!, K-L!). 

Epidendrum filiforme Sw., Prodr. 126. 1788; 

Limodorum filiforme (Sw.) Sw., Nova Acta 

Regiae Soc. Sci. Upsal. 6: 80. 1799; 

Campylocentrum filiforme (Sw.) Cogn. ex 

Kuntze, Revis. Gen. Pl. 3(2): 298. 1898; 

Harrisella filiformis (Sw.) Cogn. in Urb., Symb. 

Antill. 6: 687. 1910; Campylocentrum filiforme 

(Sw.) A. D. Hawkes, Phytologia 3: 248. 1950, 

nom. superfl.; Dendrophylax filiformis (Sw.) 

Carlsward & Whitten, Int. J. Pl. Sci. 164: 50. 

2003, non Dendrophylax filiformis (Griseb.) 

Benth. ex Fawc.; Type: HISPANIOLA: Swartz s.n. 

(holotype BM!, isotype G!). 

Ironically, I had earlier pointed out how 

Campylocentrum filiforme (Sw.) Cogn. ex Kuntze 

was the correct name for plants commonly known as 

C. monteverdi (Rchb.f) Rolfe (Ackerman 1995), but 

now that we know the species should be placed in 

Dendrophylax, we are forced to return to 

Reichenbach’s name. 

ACKERMAN - Notes on the Caribbean orchid flora. V 

NEW RECORDS 

Our knowledge of the Caribbean orchid flora has 

increased dramatically over the last few decades as 

botanists have explored ecological, systematic and 

floristic problems. While the Flora of the Greater 

Antilles project continues at a steady pace, major floras 

(Ackerman 1995, Nir 2000), smaller scale florulas 

(Feldmann and Barré 2001), and checklists have been 

published. Herein we add a few new records for various 

islands of the Caribbean. 

CUBA 

Eurystyles domingensis Dod, Moscosoa 1: 43. 1977. 

Basis for concept: protologue and accompanying 

illustration and an isotype: DOMINICAN REPUBLIC: 

Villa Altagracia, confluencia del Río Haina y de Río 

Duey, elev. 250 m, 15 Sept 1976, D.D. Dod 475 (isotypes 

AMES!, SEL!). 

CUBAN RECORDS: Cuba Orientali, 1860, C. Wright 

1482 (MO!); Orientali, prope villam Monte Verde 

dictam, Jan-Jul 1859, C. Wright 1482 (AMES!); 

Oriente, La Prenda, 30 Dec 1920, Hioram 4162 

(NY!). 

The Cuban specimens cited above were previously 

identified as E. ananassocomos (Rchb. f.) Schltr., a 

species that may be confined to Jamaica. The Hioram 

collection was the basis for the Cuban record reported 

by Acuña (1939) and Sauget y Barbier (1946). I have 

examined this plant and the Wright specimens carefully 

and compared the flowers with those of 

Jamaican material (Syme s.n., J.P. 2283, NY!) and the 

Dod isotype at AMES. I conclude that all are more 

akin to E. domingensis than E. ananassocomos. 

Dietrich (1988, 1992) reported two other collections 

of E. ananassocomos from Santiago de Cuba but I 

have not been able to verify their identities. 

Malaxis hispaniolae (Schltr.) L. O. Williams, 

Caldasia 5: 14. 1942. 

Basis for concept: protologue, and the following 

paratypes: DOMINICAN REPUBLIC. Near Constanza, 

elev. 1200 m, Jun 1910, Türckheim 3457 (NY!); 

Barahona, elev. 500 m, Nov 1910, Fuertes 734 (NY!). 

CUBAN RECORD: CUBA. Prov. Oriente, 1860, C. 

Wright 1696 (BR!, MO!). 

The Wright specimens were previously determined 

as Microstylis umbellulata (= Malaxis umbelliflora 

53


Vol. 4, Nº 1 

Sw.) and Malaxis spicata Sw. but they clearly are distinguished 

from it by the larger flowers, and the 

broad, auriculate labellum with a ciliolate margin. 

Furthermore, the inflorescence is racemose, rather 

than a tight subumbel as in the Cuban and Jamaican 

specimens of M. umbelliflora. 

Malaxis apiculata Dod, Moscosoa 4: 174. 1986. 

Basis for concept: protologue and accompanying 

illustration, and the following paratypes: DOMINICAN 

REPUBLIC. Ciénaga de la Culata, Constanza, elev. 

1500-1600 m, 28 Nov. 1969, A. H. Liogier 17075 

(NY!); Monteada Nueva, Caña Brava, Polo area, 

elev. 1200-1300 m, 26 Feb. 1969, A. H. Liogier 

14260a (NY!). 

CUBAN RECORDS: CUBA. Prov. Oriente, Loma del 

Gato, 8 Dec. 1859, Wright 613 (AMES!); Prov. 

Oriente, 1856-1857, Wright 613 (AMES!); Prov. 

Oriente [Santiago de Cuba]: Loma San Juan 

(Gato), Jul. 1922, León & Clément 10399 (MT!); 

Loma Cardero, south of Pico Turquino, elev. 3800 

ft., 31 Jul. 1935, Roig, Acuña & Bucher 6623 

(NY!); Prov. Oriente [Santiago de Cuba]: Pico 

Turquino, south slopes, elev. 150-300 m, 20-21 Jul. 

1940, W. Seifriz 1031 (US!); Prov. Oriente, Loma 

del Gato, Sierra Maestra, Jul. 1944, Alain 364 

(AMES!); Prov. Oriente: Pico de La Bayamesa, 

north slope, elev. 4900-5200 ft., 16-19 Jul. 1955, 

Harvard Course in Tropical Botany (Schultes, 

Barclay, Beaman, Freeberg, Lee) 606A (AMES!); 

Prov. Oriente: Pico de La Bayamesa, north slope, 

elev. 4900-5200 ft., 16-19 Jul. 1955, Harvard 

Course in Tropical Botany (Schultes, Barclay, 

Beaman, Freeberg, Lee) 604 (AMES!); Prov. 

Oriente: Pico de La Bayamesa, north slope, elev. 

4900-5200 ft., 16-19 Jul. 1955, Harvard Course in 

Tropical Botany (Schultes, Barclay, Beaman, 

Freeberg, Lee) 749 (AMES!). 

Dod’s illustration, Fig. 16, is mislabeled as Malaxis 

megalantha Dod. The Cuban collections are from 

Loma del Gato and the southern side of Pico 

Turquino. The specimen from lower elevations (150- 

300 m, Seifriz 1031) of Turquino has smaller flowers 

than what I have seen in the Dominican Republic and 

also for what was reported by Dod. However, plants 

much further up slope (ca. 1150 m, Roig 6623, NY!) 

have flowers that are more typical in size. 

DOMINICA 

Cyclopogon miradorensis Schltr., Repert. Spec. Nov. 

Regni Veg. 21: 332. 1925. 

Basis for concept: original description and drawing 

of type (MEXICO. Veracruz, Mirador, 900 m elev., J. 

A. Purpus 92) at AMES, but see discussion below. 

DOMINICA RECORD: DOMINICA. Heuters de la Réserve 

Caraibe. Bois de Gommier. Forêt dense et humide, 

elev. 800 m, 22 Apr. 1946, H. et M. Stehlé s.n. (US!). 

This is the first record of Cyclopogon miradorensis in 

the Lesser Antilles. It is also known from Puerto 

Rico, Dominican Republic, Jamaica, Cuba and the 

type locality, Mexico. 

Dod (1989) was the first to report this species for 

the Antilles. Since then, I have collected Cuban 

(Ackerman et al. 3231), Jamaican (Ackerman & 

Meléndez-Ackerman 2876), Dominican plants 

(Ackerman & Thomas 2079) as well as Puerto Rican 

material (Ackerman 2570, Ackerman & Meléndez 

2678, Ackerman & Angell 3007) and they are the 

same (all at UPRRP). 

The Antillean plants are very similar to the drawings 

of the C. miradorensis type sent to AMES by 

Mansfeld prior to World War II. Unfortunately, these 

drawings were not made under the supervision of 

either R. Schlechter or Mrs. Schlechter (G. Romero- 

González, pers. comm. 1993). There are some differences 

among the drawings, the protologue and our 

specimens. The labellum apex in the drawing is 

rounded and subapiculate whereas it is obscurely 

trilobed in both Antillean specimens and the protologue. 

Furthermore, our plants have sparsely pubescent 

ovaries that turn glabrous or nearly so as the 

fruits mature. The Mansfeld drawing and the protologue 

indicate glabrous ovaries. These discrepancies 

suggest that Greater Antillean plants may be a different 

species, but I am unwilling to make such a move 

without seeing good material of C. miradorensis from 

the type locality or nearby. 

Cyclopogon miradorensis has been reported from a 

number of countries in Central and South America. 

Hamer (1982) reported the species from Nicaragua 

but the Caribbean plants differ from Hamer’s in that 

the leaves are smaller, the lamina base is rounded and 

not cuneate, the petioles are very slender, and the 

perianth parts are approximately one third the size.


Vol. 4, Nº 1 

Nir for the Latin descriptions. I am also grateful to Norris 

Williams and the staff at FLAS for providing logistic support 

during my sabbatical leave from the University of 

Puerto Rico, Bobbi Angell for the illustrations, and the 

curators and staff of the herbaria cited herein for specimen 

loans. This work has been supported by the National 

Science Foundation grant DEB-9505459. 

LITERATURE CITED 

Ackerman, J.D. 1995. An orchid flora of Puerto Rico and 

the Virgin Islands. Mem. New York Bot. Gard. 73: 1- 

203. 

Carlsward, B.S., W.M. Whitten & N.H. Williams. 2003. 

Molecular phylogenetics of neotropical leafless 

Angraecinae (Orchidaceae): reevaluation of generic 

concepts. Int. J. Pl. Sci. 164: 43-51. 

Dod, D.D. 1989. Orquídeas (Orchidaceae) nuevas para la 

Española y otras notas: II. Moscosoa 5: 235-249. 

Dressler, R.L. 1993. Field guide to the orchids of Costa 

Rica and Panama. Cornell University Press, Ithaca. 

Dressler, R.L. 1999. A reconsideration of Stellilabium and 

Dipterostele. Harvard Pap. Bot. 4: 469-473. 

Dunsterville, G.C.K. & L.A. Garay. 1979. Orchids of 

Venezuela. An illustrated field guide. A-G. Botanical 

Museum of Harvard University, Cambridge, 

Massachusetts. 

Fawcett, W. 1898. A provisional list of the indigenous and 

naturalised flowering plants of Jamaica. Aston W. 

Gardner & Co., Kingston. 

Feldmann, P. & N. Barré. 2001. Atlas des orchidées 

sauvages de la Guadeloupe. Patrim. Natur. 48: 1-228. 

Grisebach, A.H.R. 1864. Flora of the British West Indian 

Islands. Lovell Reeve & Co., London. 

Hamer, F. 1982. Orchids of Nicaragua, Part 1. Icon. Pl. 

Trop., fasc. 7. 

Nir, M. 2000. Antillanae Orchidaceae. DAG Media 

Publishing, New York. 

Salazar, G.A. 1990. Cyclopogon comosus (Rchb. f.) 

Burns-Balogh & Greenwood. Plate 10. In: E. Hágsater 

& G.A. Salazar (eds.). Orchids of Mexico, part 1. Icon. 

Orchid., fasc 1. Asociación Mexicana de Orquideología, 

México.

ISSN 1409-3871 

LANKESTERIANA 

VOL. 4, NO. 1 ABRIL 2004 

Sinopsis del género Gibsoniothamnus (Schlegeliaceae) en Costa Rica, 

con una nueva especie 

J. FRANCISCO MORALES 1 

Estudio morfológico de Smilax L. (Smilacaceae) en Costa Rica, 

con implicaciones sistemáticas 

LILIAN FERRUFINO ACOSTA & JORGE GÓMEZ LAURITO 7 

Tipos de orquidáceas brenesianas, descritas por R. Schlechter, 

en el Herbario Nacional de Costa Rica 

SILVIA LOBO C. 37 

Notes on the Caribbean orchid flora. V. New species, combinations 

and records 

JAMES J. ACKERMAN 47 

Symplocos retusa (Symplocaceae), una nueva especie de Costa Rica 

RICARDO KRIEBEL, JOSÉ GONZÁLEZ & EVELIO ALFARO 57 

Nuevos registros de la familia Orchidaceae en Cuba 


Notas sobre ecología y distribución del género Lepanthes (Orchidaceae) 

en Cuba, con una lista actualizada y revisada 


continúa 


UNIVERSIDAD DE COSTA RICA


SYMPLOCOS RETUSA (SYMPLOCACEAE), UNA NUEVA ESPECIE 

DE COSTA RICA 

RICARDO KRIEBEL, JOSÉ GONZÁLEZ & EVELIO ALFARO 

La familia Symplocaceae consta de un solo género, 

Symplocos Jacq., cuyo nombre se deriva del griego 

symploké, ligazón o cópula, posiblemente en alusión 

a su corola simpétala. Symplocos se distribuye en las 

zonas tropicales y subtropicales de América, así como 

en el sur y el este de Asia y en Australia; cuenta con 

aproximadamente 250 a 300 especies (Almeda 1982). 

Standley (1938) registra cuatro especies en su flora de 

Costa Rica; actualmente podemos afirmar que este 

número ha aumentado a 11 ó 12 especies. 

Symplocos retusa Kriebel, J.A. González & E. 

Alfaro, sp. nova FIG. 1. 

TIPO: COSTA RICA: San José; Pérez Zeledón, 

Parque Nacional Chirripó, Cordillera de Talamanca, 

sendero al Cerro Urán, 09°31’41”N, 83°35’17”O, 

2640 m, 6 abr 1995 (fl), J. González 638 (holotipo, 

INB; isotipos, CR, F, MO). 

A Symplocos tribracteolata Almeda, cui affinis, 

foliis integris, apicibus retusis, floribus pentameris 

violaceis differt. 

Árbol, 8-12 m de altura; yemas vegetativas y ramitas 

Instituto Nacional de Biodiversidad (INB) 

Apdo. 22-3100, Santo Domingo, Heredia, Costa Rica 

ABSTRACT. Symplocos retusa, a new species restricted to the wet forests of the Pacific slope of the 

Talamanca range in Costa Rica is described, illustrated, and compared to its closest presumed relative. 

Symplocos retusa is distinguished by its entire leaf blades with a conspicuous retuse apex; purple, pentamerous, 

pedicellate, solitary, axillary flowers subtended by deciduous bracts; fruit apex flat and distended 

beyond the point of calyx lobe attachment. It is compared to S. tribracteolata Almeda, another Costa Rican 

endemic with solitary, pedicellate, white to pink hexamerous flowers and serrulate or crenate leaf blades 

with acuminate apex. 

RESUMEN. Symplocos retusa, una especie nueva restringida a los bosques húmedos de la vertiente Pacífica 

de la Cordillera de Talamanca en Costa Rica, es descrita, ilustrada y comparada con la especie que se presume 

es su pariente más cercana. Symplocos retusa se distingue por sus láminas foliares enteras con el ápice 

conspicuamente retuso; flores moradas, pentámeras, solitarias, axilares, pediceladas, subtendidas por 

brácteas deciduas; ápice del fruto plano, excediendo los lóbulos del cáliz. Se compara con S. tribracteolata 

Almeda, otra especie endémica de Costa Rica con flores solitarias, pediceladas, blancas a rosadas, 

hexámeras, y margen de la lámina foliar aserrado o crenado, con el ápice acuminado. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Symplocaceae, Symplocos retusa, Symplocos tribracteolata, Costa Rica. 

glabras a levemente ciliadas. Hojas 4,3-8,5 x 1,6-2,9 

cm, alternas, subcoriáceas, pecíolos 5-14 x 1-2 mm, 

glabros a ciliados. Lámina foliar glabra, elíptica, con 

margen entero, ápice retuso, base aguda, 5 a 13 

nervios secundarios por lado. Flores axilares, solitarias, 

con pedicelos de 8-15 mm, cilíndricos, glabros 

o puberulentos; bracteolas 3 ó 4, de 1,5-2 x 1-2 mm, 

sésiles, caducas, ovadas a deltoides, con el margen 

ciliado; cáliz pentalobado, los lóbulos ovados, de 2 x 

2 mm, glabros, con el margen ciliado; corola simpétala, 

pentalobada, de 6-8 mm de largo, morada, glabra; 

estambres 30 a 50 o más, dispuestos en 3 ó 4 verticilos, 

filamentos connados basalmente, la porción libre 

de los filamentos linear a linear-oblonga, de 2-3 x 

0,25-0.6 mm, anteras de ca. 0,5 mm, bitecas, introrsas, 

oblongo-ovadas; ovario ínfero, apicalmente 

piloso, de 5-6 mm de largo, tri o tetralocular, pared 

interna de los lóculos lisa; estilo recto, ca. 6,5 mm, 

glabro en su totalidad; estigma irregularmente lobado. 

Drupas ca. 6-8 x 3,5-5 mm, elipsoides, glabras, ápice 

plano y excediendo los lóbulos del cáliz, éstos 

patentes o adpresos; semillas oblongo-fusiformes, ca. 

5,5 mm.


Vol. 4, Nº 1 

Figura 1. Symplocos retusa Kriebel, J.A. González & E. Alfaro. A. Ramita florida. B. Fruto, vista lateral. C. Fruto, 

corte transversal. D. Flor. E. Corola abierta. F. Cáliz y pistilo. Basado en J. González 638 (INB). 

DISTRIBUCIÓN Y HÁBITAT. Symplocos retusa crece en 

Costa Rica en los bosques pluviales de la vertiente 

Pacífica de la Cordillera de Talamanca, entre 1800 y 

2700 m de elevación, junto con especies como 

Viburnum costaricanum (Oerst.) Hemsl. (Caprifo- 

liaceae), Quercus costaricensis Liebm. (Fagaceae), 

Cinnamomum triplinerve (Ruiz & Pav.) Kosterm., 

Nectandra cufodontisii (O.C. Schmidt) C.K. Allen, 

Miconia tonduzii Cogn. (Melastomataceae), Ocotea 

praetermissa van der Werff (Lauraceae), Magnolia

Abril 2004 

poasana (Pittier) Dandy (Magnoliaceae) y Styrax 

argenteus C. Presl (Styracaceae), entre otras. 

ETIMOLOGÍA. El epíteto de la especie hace alusión al 

ápice retuso de las hojas. 

Symplocos retusa, pese a ser una de las especies 

menos recolectadas del género en Costa Rica, es una 

de las más distintivas por las laminas foliares glabras, 

con el ápice retuso y el margen entero, las flores 

moradas, solitarias, axilares, y los frutos con el ápice 

plano y excediendo los lóbulos del cáliz. Las especies 

restantes tienen invariablemente el ápice agudo, obtuso 

o redondeado (menos frecuente), excepto algunos 

especímenes de S. limoncillo que lo tienen retuso. 

Sólo algunos especímenes de S. austin-smithii y S. 

serrulata tienen las láminas foliares con el margen 

entero. Además, todas las especies, excepto S. tribracteolata, 

tienen las flores dispuestas en cimas, 

racimos o fascículos, y solamente S. limoncillo y S. 

tribracteolata comparten el particular fruto con el 

ápice plano, que excede los lóbulos del cáliz. 

Un espécimen depositado en CAS (Stevens 13457) 

posee la mayoría de caracteres diagnósticos de S. 

retusa, como la lámina glabra con el margen entero, 

KRIEBEL et al. - Symplocos retusa 59 

el ápice retuso, las flores moradas y el ápice del 

ovario piloso; pero difiere de lo típico en S. retusa 

por sus inflorescencias racemosas. 

PARATIPOS: COSTA RICA: Puntarenas; Coto Brus, 

Zona Protectora Las Tablas, Estación Las Alturas de 

Cotón, 08°58’20”N, 82°50’05”O, 1800 m, 20 mayo 

2000 (fr), E. Alfaro 3184 (CR, INB, MO). San José; 

San Gerardo de Dota, 09°34’31”N, 83°48’20”W, 

2550 m, 30 jul 1996 (fr), R. Wasselingh et al. 25, 27 

(CR). 

AGRADECIMIENTOS. Los autores desean agradecer cordialmente 

a Frank Almeda, por sus aportes para la 

comprensión del género en la región mesoamericana 

y por la revisión y los comentarios del artículo, y a 

Claudia Aragón por la ilustración. 


Almeda, F. 1982. Three new Costa Rican species of 

Symplocos (Symplocaceae). Bull. Torrey Bot. Club. 

109: 318-324. 

Standley, P. 1937-1938. Flora of Costa Rica. Vol. 1-4. 

Fieldiana, Bot. Chicago, Field Museum of Natural 

History. 1616 p.

LANKESTERIANA 4(1): 60. 2004. 

NUEVOS REGISTROS DE LA FAMILIA ORCHIDACEAE EN CUBA 

Como parte de la realización del libro “Cuba y 

sus Orquídeas”, fueron visitadas varias regiones de 

la isla, con el objetivo de ilustrar la diversidad de 

este grupo de plantas. Se encontraron dos nuevos 

registros para la flora orquidácea de la mayor de las 

Antillas. 

En octubre del 2002 se visitó la costa norte de la 

provincia de Holguín. En la manigua costera se 

encontró una especie afila que corresponde a 

Dendrophylax barrettiae. Esta planta ya se había 

encontrado en el área en 1997, pero era un ejemplar 

muy joven con una inflorescencia que tenía sólo una 

flor, lo que no aportaba mucho para la correcta identificación 

de esta especie. También se había publicado 

una fotografía de esta especie con el nombre 

Dendrophylax lindenii (como Polyradicion lindenii), 

por Marta A. Díaz en 1985, pero sin hacer referencia 

a ningún material de herbario (Díaz 1985). 

Dendrophylax barrettiae Fawc. & Rendle, J. Bot. 47: 

266. 1909. 

DISTRIBUCIÓN HISTÓRICA: Jamaica (Adams 1972). 

DISTRIBUCIÓN EN CUBA: Costa norte de Las Tunas- 

Holguín, Oriente. 

ECOLOGÍA: Epífita en arbustos, manigua costera 

(matorral xeromorfo costero), de 0 a 20 m. Florece 

desde septiembre hasta diciembre. 

TESTIGO: CUBA. Holguín: Guardalavaca, El Cayuelo, 

14 de noviembre del 2002, J. Llamacho y A. González 

(HAC-42099), epífita en manigua costera. 

JUAN A. LLAMACHO OLMO 

Instituto de Ecología y Sistemática (IES). Carretera de Varona Km 3 1/2 

Capdevila, Boyeros, Ciudad de la Habana. Cuba. 

botanica.ies@ama.cu / llamacho@yahoo.com 

ABSTRACT. Two species of Orchidaceae are first recorded from Cuba: Dendrophylax barrettiae and 

Triphora surinamensis. 

RESUMEN. Se dan a conocer dos nuevos registros de la familia Orchidaceae en Cuba: Dendrophylax 

barrettiae y Triphora surinamensis. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Orchidaceae, Dendrophylax barrettiae, Triphora surinamensis, Cuba 

En julio del 2003 se realizó una expedición a la 

región de Baracoa, casi en el extremo oriental de la 

isla, en la escalada a Alto Iberia, donde se encontraron 

varios ejemplares de Triphora surinamensis 

Lindl., en zonas parcialmente inundadas. 

Triphora surinamensis (Lindl.) Britton, Sci. Surv. 

Porto Rico & Virgin Islands 5: 184. 1924. 

DISTRIBUCIÓN HISTÓRICA: Brasil (Amazonas), 

Colombia, Guyana Francesa, Guyana, Isla Española, 

Jamaica, Antillas Menores, Puerto Rico, Surinam, 

Trinidad y Venezuela (Ackerman 1997). 

DISTRIBUCIÓN EN CUBA: Alto Iberia, Macizo montañoso 

Moa-Baracoa, Oriente. 

ECOLOGÍA: Planta terrestre en zonas muy húmedas 

del bosque pluvial, asociada a musgos del género 

Sphagnum. Florece en julio y agosto. 

TESTIGO: CUBA. Guantánamo: Baracoa, Alto Iberia, 

16 de julio del 2003, J. Llamacho (HAC-42100). 


Ackerman, J. 1997. An Orchid flora of Puerto Rico and the 

Virgin Islands. Mem. New York Bot. Gard. 73. 

Adams, C.D. 1972. Flowering Plants of Jamaica. 

University of the West Indies. 

Díaz, M. A. 1985. Las orquídeas nativas de Cuba. Editorial 

Científico Técnica. Cuba.


NOTAS SOBRE ECOLOGÍA Y DISTRIBUCIÓN DEL GÉNERO LEPANTHES 

(ORCHIDACEAE) EN CUBA, CON UNA LISTA ACTUALIZADA Y REVISADA 

El género Lepanthes fue descrito por Swartz en 

1799 a partir de plantas recolectadas en Jamaica, que 

originalmente habían sido incluidas en el género 

Epidendrum. Para algunos autores, como Salazar & 

Soto (1996), el nombre genérico se origina a partir de 

los términos griegos lepis (envoltura) y anthos (flor), 

haciendo tal vez referencia al hábitat epífito de estas 

plantas que viven sobre la corteza de los árboles, vista 

como una envoltura; otros autores lo interpretan 

como “flores pequeñas con aspecto de escama”, 

porque el término lepis significa también escama 

(Luer 1986). 

Según la clasificación de Dressler (1981), el 

género se ubica en la subfamilia Epidendroideae, 

tribu Epidendreae, subtribu Pleurothallidinae. Luer 

(1986) realiza una división taxonómica y considera 

cuatro subgéneros: Lepanthes, Brachycladium, 

Marsipianthes y Draconanthes; el primero es el único 

presente en Cuba. Los tres restantes corresponden a 

especies de la región andina, que se considera el centro 

de diversificación de este género (Luer 1986). 

Lepanthes es un género neotropical que se distribuye 

desde México hasta Bolivia y el norte de 

Brasil; también está presente en el arco antillano. 

Posee alrededor de 800 especies descritas, cifra que 

puede aumentar debido a que crecen en áreas de difícil 

acceso. 

La primera recolecta del género Lepanthes en 

Cuba fue realizada por Charles Wrigth en el siglo 

XIX, en la zona oriental de la isla. Las especies 

JUAN A. LLAMACHO OLMO 

Instituto de Ecología y Sistemática (IES). Carretera de Varona Km 3 1/2 

Capdevila, Boyeros, Ciudad de la Habana. Cuba. 

botanica.ies@ama.cu / llamacho@yahoo.com 

ABSTRACT. Notes about ecology and distribution of the genus Lepanthes in Cuba are given. The paper 

includes a list of all the species recorded for the island, and the location of their types in herbaria. 

RESUMEN. Se ofrecen notas sobre la ecología y la distribución del género Lepanthes en Cuba, con una lista 

de las especies registradas en la isla y de los herbarios donde se encuentran depositados los tipos. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Orchidaceae, Lepanthes, ecología, Cuba. 

recolectadas por Wright fueron estudiadas y descritas 

por Lindley en 1858 (Howard 1988). 

Wright recolectó nueve especies, pero varias no 

fueron tomadas en cuenta por Lindley por encontrarse 

hasta tres especies diferentes en un solo ejemplar. 

Entre las especies recolectadas por Wright y posteriormente 

descritas por Lindley se encuentran L. blepharophylla 

(Wright 1508), de la zona de Monte 

Verde, Guantánamo; L. dorsalis (Wright 662) y L. trichodactyla 

(Wright 661) de la Sierra Maestra. 

Reichenbach fil. (1865, en Flora 48) estudió los 

especímenes de Wright y agregó dos nuevas especies: 

L. wrightii (Wright 3340) y L. mandibularis (Wright 

1342), ambas del macizo montañoso Moa-Baracoa. 

A principios del siglo XX, el sueco E.L. Ekman 

exploró la región oriental del país; recolectó cinco 

nuevas especies de Lepanthes, descritas por 

Schlechter en 1923. Resulta significativo que algunas 

de ellas ya habían sido recolectadas con anterioridad 

por Wright, pero aún no habían sido descritas. Entre 

las especies descritas como nuevas se encuentra L. 

melanocaulon (Ekman 3361) de la Sierra de Nipe. 

Las especies restantes fueron recolectadas en la escalada 

de Ekman al Pico Turquino: L. blepharantha 

(Ekman 5491), L. ekmanii (Ekman 5409), L. pergracilis 

(Ekman 5490) y L. turquinoensis (Ekman 5438). 

Todas las especies encontradas en Cuba hasta ese 

momento fueron registradas por Julián Acuña en el 

Catálogo de Orquídeas Cubanas, publicado en 1938 

(Acuña 1938). Posteriormente, se realizó una revisión 

del género en la obra Flora de Cuba, en la que


Vol. 4, Nº 1 

aparece un total de 21 especies (León 1946). 

En 1973 Hespenheide publicó una revisión del 

género en Cuba, en la que recopiló 18 especies. Este 

trabajo se basó estrictamente en el estudio de los 

ejemplares depositados en herbarios, ya que el autor 

reconoció que nunca había visitado el país. En ese 

artículo describe seis especies nuevas y realiza una 

nueva combinación: L. acuñae, L. blepharophylla, L. 

cubensis, L. dressleri, L. grisebachiana, L. occidentalis 

y L. obliquiloba (Hespenheide 1973). 

En 1988 Helga Dietrich describió L. silvae, 

recolectada en la región de Moa, en el norte de 

Oriente (Dietrich 1988). 

Una expedición formada por renombrados especialistas 

en la familia Orchidaceae recorrió el norte de 

la región oriental de Cuba en 1997. Producto de la 

misma, C. Luer describió seis nuevas especies: L. 

comadresina, L. diaziae, L. llamachoi, L. minimamundana, 

L. palpelabris y L. woodfredensis (Luer 

1998). Con posterioridad a esta publicación, Luer 

continuó trabajando con materiales recolectados en 

varias regiones de la isla y ha publicado las siguientes 

especies: L. aubryi, L. cyrillicola, L. decoris y L. 

nana, de la región del Pico Turquino, y L. martae de 

la región de Cuchillas de Moa-Baracoa (Luer 1999, 

2001, 2002). 

Distribución. El género Lepanthes está restringido 

únicamente a las montañas de la isla y presenta la 

mayor diversidad en el macizo montañoso Nipe- 

Sagua-Baracoa con un total de 16 especies; le sigue la 

Sierra Maestra, con 13, el Macizo Guamuhaya, con 

tres, y la Cordillera de Guaniguanico, con dos. Es 

muy probable que en todas las regiones montañosas 

de Cuba existan especies nuevas por descubrir. 

Este género está adaptado a condiciones ecológicas 

muy especificas, pues requiere de una humedad relativa 

muy alta y preferentemente regiones neblinosas. 

En la Sierra Maestra sólo se encuentra por encima de 

1000 metros de altitud, debido a que a esta altura predominan 

dichas condiciones. En el Macizo Nipe- 

Sagua-Baracoa comienzan a aparecer en las laderas 

con exposición norte, a partir de 300 metros de altitud, 

generalmente en las zonas de condensación de la 

humedad de los vientos procedentes del mar. Los sistemas 

montañosos del centro y del occidente de la 

isla presentan las mismas características. 

Varias especies tienen una distribución muy 

restringida y sólo se conocen de la localidad tipo; de 

otras únicamente se conocen una o dos poblaciones. 

Esta característica atenta contra la conservación de 

muchos de estos taxa. Particularmente crítico es el 

caso de L. comadresina, que fue recolectada por 

única vez en Arroyo Las Comadres en Moa, en 1997, 

donde se encontró creciendo en las márgenes del 

arroyo, y en posteriores expediciones a la zona en 

2000 y 2002 no fue hallada. Presumiblemente, la 

población se extinguió durante una severa sequía que 

sufrió la zona en 1999; no obstante, aún no se ha 

podido comprobar si se trata de una extinción total de 

la especie, o si ésta podrá recolonizar el área. 

Fluctuaciones poblacionales también han sido observadas 

en especies mexicanas que sufren extinciones 

locales. 

Hábitat. Las plantas se caracterizan por ser epifitas o 

litófitas, aunque muchas de ellas prefieren indistintamente 

estos dos sustratos, pero hay otras que son 

estrictamente epífitas o litófitas. 

Las formaciones vegetales que mayor número de 

Lepanthes albergan son el bosque nublado, en la 

región del Turquino, y los bosques pluviales de Moa- 

Baracoa. Incluso en estos bosques las poblaciones son 

más densas en las áreas de mayor condensación. 

Muchas de estas especies se encuentran vinculadas a 

cursos de agua, sobre todo en la región nororiental de 

la isla. A pesar de lo antes descrito, en el bosque pluvial 

de Monte Iberia, en el macizo Moa-Baracoa, que 

es una zona de alta humedad y numerosas precipitaciones, 

prácticamente no existen especies de 

Lepanthes, lo que podría deberse a la competencia 

por el sustrato, dado que en los troncos de los árboles 

predominan absolutamente musgos y helechos. 

Fenología. Todas las especies del género florecen 

durante todo el año; sólo dejan de hacerlo ante la 

ocurrencia de períodos de sequía que provocan estrés 

hídrico. Esta aseveración ha sido corroborada con 

observaciones independientes en Sierra de Nipe, 

Sierra de Moa y Pico Turquino. Cuando pasan varios 

días sin lluvia o rocío, las flores se cierran y se 

pueden mantener en esas condiciones por 3 o 4 días, 

para volver a abrirse con el aumento de la humedad. 

Cuando las condiciones secas se mantienen por más 

de 10 días las flores mueren, pero quedan las yemas 

latentes, que posibilitan comenzar la floración del

Abril 2004 

mismo escapo cuando cambian las condiciones ambientales. 

Una de las características más singulares de este 

grupo es la coexistencia y la floración simultánea de 

varias especies en un mismo sustrato. Por ejemplo, en 

una sola piedra se han encontrado juntas L. fractiflexa, 

L. turquinoensis, L. ekmanii y L. trichodactyla. 

Resulta una incógnita cómo logran el aislamiento 

reproductivo pese a que todas florecen al mismo 

tiempo; es probable que esté garantizado por el 

mecanismo de polinización. 

Respecto a los polinizadores del género prácticamente 

no hay resultados de investigación. Sólo se ha 

identificado el mosquito de los hongos Bradysia sp. 

(Sciaridae) como polinizador de L. glicensteinii Luer, 

de Costa Rica (Blanco & Barboza 2001). 

LISTA DE ESPECIES CUBANAS CON TIPOS 

Y DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA 

En Cuba se reconoce en la actualidad un total de 

29 especies de Lepanthes. 

1. Lepanthes acuñae Hespenh., Brittonia 25: 263. 

1973. 

TIPO: CUBA. Entre Pico Turquino y La Bayamesa, 

C. Morton & J. Acuña 3675 (Holotipo: US!). 

DISTRIBUCIÓN: Pico Turquino, Sierra Maestra. 

2. Lepanthes aubryi Luer & P. Jesup, Selbyana 

23(1): 4. 2002. 

TIPO: CUBA. Santiago de Cuba, Sierra Maestra, 

Pico Turquino, Y. Aubry, dic. 2000, cultivado en 

Bristol, CT, P. Jesup 8 (Holotipo: MO). 


3. Lepanthes blepharantha Schltr., Urban Symb. 

Antill. 9: 61. 1923. 

TIPO: CUBA. Ladera N del Pico Turquino, E. 

Ekman 5491 (Holotipo: S). 


4. Lepanthes blepharophylla (Griseb.) Hespenh., 

Brittonia 25: 260. 1973. 

Basiónimo: Pleurothallis blepharophylla Griseb., 

Cat. Pl. Cub. 260. 1866. 

TIPO: CUBA. Sierra de Toa, cerca de Monte Verde, 

C. Wright 1508 (Holotipo: GOET!; isotipo: AMES). 

DISTRIBUCIÓN: Conocida sólo de la localidad tipo. 

LLAMACHO OLMO - Lepanthes en Cuba 63 

5. Lepanthes chrysostigma Lindl., Ann. Mag. Nat. 

Hist. III 1: 329. 1858. 

TIPO: CUBA. Sierra de Toa, Monte Verde, C. 

Wright s.n. (Holotipo: K!). 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Moa-Baracoa. 

6. Lepanthes comadresina Luer, Lindleyana 13(3): 

138. 1998. 

TIPO: CUBA. Holguín: Moa, camino a la Melba, 

Arroyo las Comadres, 350 m, 29 nov. 1997, C. Luer, 

J. Luer, M. Díaz, J. Llamacho, J. Ackerman, K. & R. 

Dressler 18650 (Holotipo: HAJB; isotipo: MO). 

DISTRIBUCIÓN: Arroyo Las Comadres, La Melba, 

Moa. Holguín. 

7. Lepanthes cubensis Hespenh., Brittonia 25: 269. 

1973. 

TIPO: CUBA. Sierra de Toa, Monte Verde, C. 

Wright 1512 (Holotipo: PH!; isotipos: AMES, BR!, 

K!, NY, MO!,W!) 


8. Lepanthes cyrillicola Luer & Llamacho, Selbyana 

22(2): 104. 2001. 

TIPO: CUBA. Pico Turquino. Sierra Maestra, J. 

Llamacho 0014 (Holotipo: HAC; isotipo: MO). 


9. Lepanthes decoris Luer & Llamacho, Selbyana 

22(2): 106. 2001. 

TIPO: CUBA. Paso del mono, Pico Turquino, Sierra 

Maestra. 5 jun. 1999, J. Llamacho 0010a (Holotipo: 

HAC; isotipo: MO). 


10. Lepanthes diaziae Luer, Lindleyana 13(3): 138. 

1998. 

TIPO: CUBA. Holguín, Mayarí, Sierra de Nipe, epífito 

en bosque pluvial, Cayo las Mujeres, 650 m, 25 

nov. 1997, C. Luer, J. Luer, M. Díaz, J. Llamacho, J. 

Ackerman, K. & R. Dressler 18622 (Holotipo: HAJB; 

isotipos: MO, UPRRP). 

DISTRIBUCIÓN: Sierra de Nipe y Sierra Cristal. 

11. Lepanthes dorsalis Lindl., Ann. Mag. Nat. Hist. 

III 1: 329. 1858. 

TIPO: CUBA. Cresta de Nima-Nima, Sierra 

Maestra, C. Wright 662 (Holotipo: K!) 

DISTRIBUCIÓN: Sierra Maestra y Sierra de Nipe.


Vol. 4, Nº 1 

12. Lepanthes dressleri Hespenh., Brittonia 25: 268. 

1973. 

TIPO: CUBA. Pico Sombrero, NE del Naranjo, 

Trinidad, R.L.Dressler 1335 (Holotipo: US- 

2399322!) 

DISTRIBUCIÓN: Sierra del Escambray. Sierra del 

Rosario y Sierra del Infierno. 

13. Lepanthes ekmanii Schltr., Urban Symb. Antill. 

9: 62. 1923. 

TIPO: CUBA. Pico Turquino, Sierra Maestra, E. 

Ekman 5409 (Holotipo: S) 


14. Lepanthes fractiflexa Ames & C. Schweinf., 

Sched. Orch. 10: 42. 1930. 

TIPO: CUBA. Cueva del aura, Pico Turquino, 

Bucker 30 (Holotipo: NY; isotipo: AMES) 


15. Lepanthes fulva Lindl., Ann. Mag. Nat. Hist. III 

1: 329. 1858. 

TIPO: CUBA. Sierra del Toa, cerca de Monte 

Verde, C. Wright s.n. (Holotipo: K!). 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Moa-Baracoa, Sierra de Nipe 

y Sierra Maestra. 

16. Lepanthes grisebachiana Hespenh., Brittonia 25: 

272. 1973. 

TIPO: CUBA. Sierra del Toa, cerca de Monte 

Verde, C. Wright 1510 (Holotipo: PH!; isotipos: BR, 

MO!, W!) 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Moa-Baracoa, Sierra Cristal. 

17. Lepanthes llamachoi Luer, Lindleyana 13(3): 

138. 1998. 

TIPO: CUBA. Holguín: Moa, camino a la Melba, 

Arroyo las Comadres, 350 m, 29 nov. 1997, C. Luer, 

J. Luer, M. Díaz, J. Llamacho, J. Ackerman, K. & R. 

Dressler 18651 (Holotipo: HAJB; isotipo: MO). 

DISTRIBUCIÓN: Sierra de Moa, Oriente. 

18. Lepanthes martae Luer, Selbyana 22(2): 109. 

2001. 

TIPO: CUBA. Datos de recolecta no disponibles, 

1999, M.A. Díaz 10 (Holotipo: HAC; isotipo: MO). 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Montañoso Toa-Baracoa. 

Nota: En la publicación original no existen datos de la 

colección, pero la especie fue recolectada en las montañas 

de Guantánamo (M.A. Díaz, com. pers. 2003). 

19. Lepanthes melanocaulon Schltr., Urban Symb. 

Antill. 9: 64. 1923. 

TIPO: CUBA. Río Piloto, Sierra de Nipe, E. Ekman 

3361 (Holotipo: S; isotipos: Herb. Garay!, NY) 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Nipe-Sagua-Baracoa. 

20. Lepanthes nana Luer & P. Jesup, Selbyana 

23(1): 17. 2002. 

TIPO: CUBA. Santiago de Cuba: Sierra Maestra, 

Pico de Santiago, 1200 m, Y. Aubry, mayo 2000, cultivado 

en Bristol, P. Jesup s.n. (Holotipo: MO). 


Nota: El topónimo Pico de Santiago no existe. La especie 

fue recolectada en una zona de la Sierra Maestra, 

perteneciente a la provincia de Santiago de Cuba. 

21. Lepanthes occidentalis Hespenh., Brittonia 25: 

276. 1973. 

TIPO: CUBA. 12 km al S de Manicaragua, Las 

Villas, R.L. Dressler 1294 (Holotipo: US!; isotipo: 

MO!) 

DISTRIBUCIÓN: Sierra del Escambray. 

22. Lepanthes obliquiloba Hespenh., Brittonia 25: 

273. 1973. 

TIPO: CUBA. Las Villas, 3 km NE del Naranjo, 

Sierra de Trinidad. R.L. Dressler 1333 (Holotipo: 

US!, isotipo: MO!) 

DISTRIBUCIÓN: Sierra del Escambray y Sierra del 

Rosario. 

23. Lepanthes palpelabris Luer, Lindleyana 13(3): 

138. 1998. 

TIPO: CUBA. Holguín: Moa, camino al Toldo, Alto 

de la Calinga, 950 m, 30 nov. 1997, C. Luer, J. Luer, 

M. Díaz, J. Llamacho, J. Ackerman, K. & R. Dressler 

18658 (Holotipo: HAJB; isotipos: MO, UPRRP). 

DISTRIBUCIÓN: Meseta del Toldo, Moa, Holguín. 

24. Lepanthes pergracilis Schltr., Urban Symb. 

Antill. 9: 65. 1923. 

TIPO: CUBA. Ladera N del Pico Turquino, 1950 m, 

E. Ekman 5490, pro parte (Holotipo: S; isotipo: Herb. 

Garay!). 

DISTRIBUCIÓN: Pico Turquino y Pico Bayamesa, 

Sierra Maestra. 

25. Lepanthes silvae H. Dietr., Wiss. Zeitschr. 

Friedrich-Schiller-Univ. Jena 37(1): 157. 1988. 

TIPO: CUBA. Sierra de Moa. Álvarez et al. (HAJB).

Abril 2004 

DISTRIBUCIÓN: Macizo Montañoso Sagua-Baracoa. 

26. Lepanthes trichodactyla Lindl., Ann. Mag. Nat. 

Hist. III 1: 329. 1858. 

TIPO: CUBA. Cresta de Nima-Nima, Sierra 

Maestra, C. Wright 661 (Holotipo: K-L!; isotipos: 

AMES, pro parte, Herb. Garay, K-Herb. Hooker!, 

PH!, W!). 

DISTRIBUCIÓN: Sierra Maestra y Macizo Nipe-Sagua- 

Baracoa. 

27. Lepanthes turquinoensis Schltr., Urban Symb. 

Antill. 9: 65. 1923. 

TIPO: CUBA. Sierra Maestra,Ladera N del Pico 

Turquino, 1800 m, E. Ekman 5438 (Holotipo: S). 


28. Lepanthes woodfredensis Luer, Lindleyana 

13(3): 138. 1998. 

TIPO: CUBA. Holguín: Mayarí, Sierra de Nipe, epífito 

en bosque pluvial, Cayo Mujeres, 750 m, 25 nov. 

1997, C.A. Luer, J. Luer, M. Díaz, J. Llamacho, J. 

Ackerman & R.L. Dressler 18623 (Holotipo: HAJB; 

isotipo: MO). 

DISTRIBUCIÓN: Sierra de Nipe, Oriente. 

29. Lepanthes wrightii Rchb.f., Flora 48: 275. 1865. 

TIPO: CUBA. Sin localidad, C. Wright 3340 

(Holotipo: W!, dibujo; isotipos: AMES, BR!, K!). 


RELACIÓN DE SINÓNIMOS 

O REGISTROS ERRÓNEOS DE LEPANTHES EN CUBA 

(en negrita el nombre aceptado) 

Lepanthes brevipetala Fawc. & Rendle = 

Lepanthopsis melanantha (Rchb.f.) Ames 

Lepanthes ciliata Lindl. ex Griseb. = Lepanthes blepharophylla 

(Griseb.) Hespenh. 

Lepanthes leonii C. Schweinf. ex León = 

Lepanthopsis microlepanthes (Griseb.) Ames 

Lepanthes lindmaniana Schltr. = L. fulva Lindl. 

Lepanthes loddigesiana Rchb.f. = especie de Jamaica; 

confundida con L. dorsalis Lindl. 

Lepanthes longicruris Schltr. = L. trichodactyla 

Lindl, 

Lepanthes mandibularis Rchb.f. = L. chrysostigma 

Lindl. 

LLAMACHO OLMO - Lepanthes en Cuba 65 

Lepanthes minima-mundana Luer = L. silvae H. 

Dietr. 

Lepanthes ovalis (Sw.) Fawc. & Rendle = especie de 

Jamaica; confundida con L. melanocaulon Schltr. 

Lepanthes ovata Ames & C. Schweinf.= L. ekmanii 

Schltr. 

Lepanthes pristidis Rchb.f. = especie de México, considerada 

sinónimo de L. disticha (A. Rich & 

Galeotti) Garay & R.E. Schult.; los registros de 

Cuba corresponden a Lepanthes cubensis 

Hespenh. Acuña (1938) menciona esta especie de 

la Sierra Nipe, sin hacer referencia a ningún ejemplar 

de herbario. No se ha encontrado material de 

herbario ni poblaciones en la región, por lo que la 

distribución queda confinada al macizo Moa- 

Baracoa. 

Lepanthes tridentata (Sw.) Sw. = especie de Jamaica; 

confundida con L. grisebachiana Hespenh. 

Lepanthopsis blepharophylla (Griseb.) Garay = 

Lepanthes blepharophylla (Griseb.) Hespenh. 

Pleurothallis blepharophylla Griseb. = Lepanthes 

blepharophylla (Griseb.) Hespenh. 

AGRADECIMIENTOS. Al Dr. Carlyle Luer por todas sus 

enseñanzas y contribuciones al estudio del género 

Lepanthes en Cuba. Este trabajo se realizó bajo el auspicio 

del proyecto del Programa Ramal: 2043 de Colecciones 

Biológicas. 


Acuña Galé, J. 1938. Catálogo Descriptivo de las 

Orquídeas Cubanas. Est. Exp. Agron. Santiago de las 

Vegas. No. 60. 

Blanco, M. & G. Barboza. 2001. Polinización de 

Lepanthes: un nuevo caso de pseudocopulación en las 

orquídeas. Memorias 2do Seminario Mesoamericano de 

Orquídeología y Conservación. San José, Costa Rica. 

Dietrich, H. 1988. Orchidaceae cubanae novae VI. 

Lepanthes silvae H. Dietrich. Wiss. Zeitschr. Frierich- 

Schiller-Univ. Jena 37(1): 157. 

Dressler, R.L. 1981. The orchids: natural history and classification. 

Cambridge, Mass., Harvard Univ. Press. 

Hespenheide, H.A. 1973. A revision of the West Indian 

species of Lepanthes (Orchidaceae). III. Cuba. 

Brittonia 25: 257-283. 

Howard, R.A. 1988. Charles Wright in Cuba, 1856-1867. 

Meckler Corporation. United States.


Vol. 4, Nº 1 

León, H. (Sauget). 1946. Flora de Cuba, Vol. 1. Contr. 

Ocas. Mus. Hist. Nat. Col. La Salle. No. 8. 

Luer, C.A. 1986. Systematics of the Pleurothallidinae 

(Orchidaceae). Icon. Pleuroth. I. Missouri Botanical 

Garden. 

Luer, C.A. 1998. New species of orchids from Cuba. 

Lindleyana 13(3): 138-147. 

Luer, C.A. 1999. New species of Pleurothallis from Cuba 

and Hispaniola. Lindleyana 14(2): 106-121. 

Luer, C.A. 2001. Miscellaneous New Species in the Pleurothallidinae 

(Orchidaceae). Selbyana 22(2): 103-127. 

Luer, C.A. 2002. Miscellaneous New Species in the 

Pleurothallidinae (Orchidaceae). Selbyana 23(1): 1-45. 

Salazar, G.A. & M.A. Soto. 1996. El género Lepanthes 

Sw. en México. Asociación Mexicana de Orquideología, 

A.C.


STANHOPEINAE MESOAMERICANAE II (ORCHIDACEAE). DOS 

ESPECIES NUEVAS: POLYCYCNIS BLANCOI Y CORYANTHES MADUROANA 

GÜNTER GERLACH 

Botanischer Garten München-Nymphenburg 

Menzinger Str. 65, 80638 München, Germany. gerlach@botanik.biologie.uni-muenchen.de 

ABSTRACT. Two new species of Stanhopeinae (Orchidaceae) are described and illustrated in this paper: 

Polycycnis blancoi, from Costa Rica, and Coryanthes maduroana from Panama. 

RESUMEN. Se describen e ilustran dos especies nuevas de Stanhopeinae (Orchidaceae): Polycycnis blancoi, 

de Costa Rica, y Coryanthes maduroana de Panamá. 

PALABRAS CLAVE / KEY WORDS: Orchidaceae, Stanhopeinae, Coryanthes, Polycycnis, new orchid species, 

Mesoamérica. 

Polycycnis blancoi G. Gerlach, spec. nova 

TIPO: COSTA RICA. Fila Costeña a lo largo de la 

división territorial entre las provincias San José y 

Puntarenas: Refugio de Vida Silvestre Boracayán, 

aproximadamente 10 km al este de Dominical, cerca 

de la Catarata de San Luis, a lo largo de la Fila 

Tinamastes, 09°14'57,89"N, 83°45'01,48"W, 1008 m, 

M. Blanco, F. Pupulin, H. León-Páez, G. Gerlach s.n., 

30 mayo 2003, floreció en invernadero del Jardín 

Botánico de Múnich-Nymphenburg, Alemania, 

octubre 2003, bajo el número 03/2628 (Holotipo: 

USJ-84851). FIG. 1-3. 

Selva siempreverde, densa y muy húmeda. Planta 

epífita en la base de un árbol, entre musgos, en la 

cresta de la fila en una parte sumamente húmeda. 

Junto con plantas como Drymonia macrantha 

(Gesne-riaceae), Besleria hirsuta (Gesneriaceae), 

Tovomita weddelliana (Clusiaceae), Pitcairnia brittoniana 

(Bromeliaceae), Kefersteinia costaricencis 

(Orchidaceae), Topobea parasitica (Melastomataceae) 

y Psammisia ulbrichiana (Ericaceae). 

P. blancoi inflorescentias pendentes et lobulos lateralibos 

hypochili acutos possidet ut in speciebus P. 

morganii Dodson, P. trullifera D.E. Benn. & 

Christenson, P. silvana F. Barros subgeneris 

Polycycnis. P. blancoi distincta est ab P. trullifera e 

Peruvia floribus minoribus (longitudo labelli 1,65 cm 

versus 3,3 cm), ab P. silvana e Brasilia lobulis lateralibus 

hypochili brevioribus (ratio longitudo:latitudo 

in P. blancoi 1:1, in P. silvana 1:2) et ab P. morganii 

ex Aequatoria inflorescentiis brevioribus et densioribus 

et ovariis (cum pedunculis) brevioribus (P. 

blancoi inflorescentia 15 floribus longitudinae 17 cm, 

ovario cum pedunculo 1,4 cm; P. morganii inflorescentia 

15 floribus longitudinae 45 cm, ovario cum 

pedunculo 3,0 cm). 

DESCRIPCIÓN: Planta epifítica, pseudobulbos unifoliados, 

máximo 3,5 cm de alto y 3,0 cm de diámetro, levemente 

aplanados, piriformes, en corte transversal 

levemente romboides, apicalmente con un anillo distintivo 

de color marrón; hoja peciolada, pecíolo de 7,5 

cm, lámina plicada, 49,0 cm de largo por 10,0 cm de 

ancho, con 7 nervios prominentes; inflorescencia péndula, 

densa, 17 cm de largo, con 15 flores, raquis, 

pedúnculo y ovario hirsutos, de color oliváceo con 

pelos marrones, raquis revestido con varias vainas 

tubulosas, hirsutas, ovario más pedicelo 1,4 cm de 

largo, brácteas lanceoladas, cóncavas, acuminadas, en 

la cara externa pubescentes; flores con sépalos y pétalos 

de color oliváceo pálido, con barras transversales o 

puntos rojo-marrón, labelo amarillo vivo en el hipoquilo 

y el ápice del epiquilo con barras transversales o 

puntos rojo-marrón, columna verde, con alas purpúreas; 

sépalos y pétalos patentes hasta levemente 

reflexos, sépalos cóncavos, libres, sépalo dorsal lanceolado, 

acuminado, 2,1 cm de largo y (cuando aplanado) 

0,65 cm de ancho, sépalos laterales levemente 

asimétricos, pétalos angostamente oblanceolados, algo


Vol. 4, Nº 1 

Fig. 1. Polycycnis blancoi G. Gerlach. A – Hábito. B – Sépalos, pétalo y labelo, extendidos. Dibujado del holotipo. 

Ilustración: Corina Gerlach. 

estipitados, sigmoides, 2,0 cm de largo y 0,35 cm de 

ancho; labelo cortamente unguiculado, 1,65 cm de 

largo, en la base con dos aurículas erectas, obtusas, 0,2 

cm de largo; hipoquilo en el centro con una quilla longitudinal, 

elevándose más hacia el ápice, sobrepasando 

el epiquilo y dos lóbulos laterales subtriangulares, agudos, 

cuando aplanados de extremo a extremo midiendo 

1,1 cm, parte central densamente pubescente a lo largo 

de la quilla; epiquilo truliforme hasta romboide, agudo, 

1,1 cm de largo y 0,8 cm de ancho, en la base con 

pelos largos esparcidos; columna arqueada, delgada, 

clavada en el extremo distal, con alas redondeadas, rostelo 

tridentado, diente medio muy largo y delgado, 

agudo, los dientes laterales en parte unidos con el 

medio por una película hialina, clinandrio casi plano; 

polinario con un viscidio agudo, un estípite linear y 

delgado y dos polinios angostamente oblongoides. 

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL: La nueva especie tiene 

con las especies P. morganii, P. trullifera y P. silvana

Abril 2004 

Fig. 2. Polycycnis blancoi G. Gerlach. Inflorescencia. 

Fotografía del holotipo. 

Fig. 3. Polycycnis blancoi G. Gerlach. Flor. Fotografía 

del holotipo. 

GERLACH - Stanhopeinae Mesoamericanae. II 69 

en común inflorescencias péndulas y lóbulos laterales 

del hipoquilo agudos. Se diferencia de P. trullifera de 

Brasil por sus flores más pequeñas (largo del labelo 

1,65 cm versus 3,3 cm), de P. silvana de Brasil por 

los lóbulos laterales del hipoquilo más anchos 

(relación largo a ancho de P. blancoi 1:1, de P. silvana 

1:2), y de P. morganii por sus inflorescencias 

más cortas y más densas y el ovario más corto (P. 

blancoi – 15 flores, 17 cm de largo, ovario más 

pedicelo 1,4 cm; P. morganii – 15 flores, 45 cm de 

largo, ovario más pedicelo 3,0 cm). 

OBSERVACIONES: Como la única planta conocida no 

era de las más grandes y se había establecido recientemente 

en invernadero, es muy probable que en el 

futuro crecerá y florecerá con una inflorescencia más 

larga y con más flores. 

Hasta ahora existen 17 especies válidas en el 

género Polycycnis. Éste puede dividirse en dos subgéneros: 

1) Subgénero Polycynis – plantas epifíticas o terrestres, 

inflorescencias erectas o péndulas, epiquilo 

más o menos truliforme. 

1.1) Especies con inflorescencias erectas: 

P. escobariana G. Gerlach: Colombia, Ecuador 

P. grayi Dodson: Ecuador 

P. muscifera (Lindl. & Paxt.) Rchb.f. 

(Cycnoches muscifera Lindl. & Paxt., 

Cycnoches buchtienii Krzl., P. acutiloba 

Schltr.): Venezuela, Colombia, Bolivia 

P. pfisteri Senghas, Taggesell & G. Gerlach: 

Colombia 

P. villegasiana G. Gerlach: Colombia 

1.2) Especies con inflorescencias péndulas: 

P. annectans Dressler: Ecuador 

P. blancoi G. Gerlach: Costa Rica (¿también 

Panamá?) 

P. barbata Rchb.f.: Costa Rica, Panamá 

P. lehmannii Rolfe: Colombia 

P. lepida Linden & Rchb.f. (sin.: P. gratiosa 

Endrés & Rchb.f.): Costa Rica, Panamá, 

Colombia 

P. morganii Dodson: Colombia, Ecuador 

P. trullifera D.E. Benn. & Christenson: Perú 

P. silvana F. Barros: Brasil


Vol. 4, Nº 1 

2) Subgénero Angustilabia – plantas epifíticas, 

inflorescencias siempre péndulas, epiquilo linear. 

P. aurita Dressler: Colombia 

P. ornata Garay: Panamá, Colombia, Ecuador 

P. surinamensis C. Schweinf.: Surinam, 

Venezuela 

P. tortuosa Dressler: Panamá 

Sin duda, la especie nueva P. blancoi se puede 

integrar al subgénero Polycycnis, en el grupo con 

inflorescencias péndulas. De las especies agrupadas 

aquí, P. barbata y P. trullifera tienen las flores más 

grandes del género. P. barbata y P. lepida tienen los 

lóbulos laterales del hipoquilo obtusos y redondeados, 

mientras P. annectans, P. blancoi, P. lehmannii, 

P. morganii, P. silvana y P. trullifera los tienen agudos 

y triangulares. Polycycnis annectans es una 

especie muy particular, porque tiene la columna más 

corta y gruesa que el resto del género; se parece más 

bien a la columna de una Kegeliella. Los lóbulos laterales 

del labelo de P. lehmannii son muy angostos 

y largos, tienen una relación largo por ancho de 3:1 

y, así, la especie se distingue fácilmente de todas las 

otras especies del género. Según estos caracteres 

exclusivos ya mencionados, quedarían las especies 

P. morganii de Ecuador y P. silvana de Brasil, las 

más difíciles de distinguir de la nueva especie. Ésta 

se distingue de P. morganii por la inflorescencia más 

densa y más corta y el ovario con el pedicelo más 

corto (P. blancoi – 15 flores, 17 cm de largo, ovario 

más pedicelo 1,4 cm; P. morganii – 15 flores, 45 cm 

de largo, ovario más pedicelo 3,0 cm). Polycycnis 

blancoi se distingue de P. silvana por las aurículas 

un tercio más cortas (0,2 cm en vez de 0,3 cm o más) 

y la forma de los lóbulos laterales (relación 

largo:ancho es en P. blancoi 1:1, en P. silvana 1:2). 

Además, existen patrones diferentes de colores del 

labelo; en P. silvana la combinación de rojo con 

crema es dominante, en P. morganii es verde con 

puntos rojos, mientras que en P. blancoi es casi unicolor, 

amarillo. 

ETIMOLOGÍA: La especie está dedicada a Mario 

Blanco, orquideólogo costarricense que encontró la 

planta investigada durante una excursión de recolecta. 

Mario se dedica con mucho entusiasmo, desde hace 

varios años, a la investigación de la orquideoflora de 

Costa Rica. 

Coryanthes maduroana G. Gerlach, spec. nova 

TIPO: PANAMÁ: Provincia de Coclé; El Valle de 

Antón, floreció en cultivo en Panamá, 4 de diciembre 

2002, Andrés Maduro y Erick Olmos 512 (Holotipo: 

PMA). FIG. 4. 

Species nova differt ab speciebus omnibus generis 

Coryanthis combinatione hypochili minus profundi 

cum verrucis paucis in mesochilo dorsali 

DESCRIPCIÓN: Planta epifítica, cespitosa, siempre creciendo 

en hormigueros; psedobulbos angostamente 

oblongoides hasta oblongo-cónicos, profundamente 

multi-surcados, bifoliados, con un anillo marrón en el 

ápice, 11,0 cm de alto y 2,1 cm de diámetro, cuando 

jóvenes parcialmente revestidos por vainas membranáceas; 

hojas angostamente elípticas, hasta linearlanceoladas, 

agudas, 52 cm por 4,0 cm, pecíolo indistinto; 

inflorescencia péndula, 30 cm de largo, con 3 

flores; pedúnculo marrón verdoso, con 4 vainas parduscas, 

tubulosas, membranáceas, lanceoladas, de 2,3 

cm de largo; brácteas floríferas ovadas, agudas, 3,5 

cm de largo y 1,4 cm de ancho; pedicelo más ovario 

9,5 cm de largo; flores de tamaño medio para el 

género, de color crema hasta amarillento o verdoso 

con manchas leopardinas (margen oscuro y centro 

pálido con una mancha oscura) de un rojo cárneo, 

pétalos, hipoquilo y mesoquilo solamente con puntos 

rojo cárneo, uña con manchas alargadas; sépalos 

fuertemente enrollados; pétalos algo ligulados, falcados, 

4,1 cm de largo y 1,3 cm de ancho; labelo 7,2 cm 

de alto, con la uña de 1,3 cm, ligeramente comprimida 

dorsalmente; hipoquilo galeiforme, poco profundo, 

1,1 cm de alto y 1,8 cm de ancho, externamente con 

un semicírculo piloso, márgenes inflexos, ápice poco 

emarginado; mesoquilo canaliculado, algo comprimido 

lateralmente, 2,9 cm de largo y 1,5 cm de ancho, 

con dos líneas de verrugas que siguen a lo largo de su 

mediana con dos estrías pilosas, su parte visible con 

dos excrecencias en forma de verrugas cónicas; 

epiquilo hemisférico, en el ápice tridentado; columna 

3,1 cm de largo, en el tercio distal rectangular, 

reflexa, en la encorvadura con dos alas redondeadas, 

en la base con dos pleuridios subcuadrados de 0,6 cm 

por 0,7 cm; polinario parecido al de las otras 

especies. Aroma fuerte y un poco desagradable. 

PARATIPO: Panamá. Prov. Veraguas: Santa Fe, leg. I.

Abril 2004 

Zapato s.n. 2002, floreció en cult. en el Jardín Botánico 

de Múnich, Alemania, 2 de abril 2003, 02/2950 (M). 

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL: Se diferencia de todas las 

otras especies del género Coryanthes por la combinación 

de un hipoquilo poco profundo con unas pocas 


Fig. 4. Coryanthes maduroana G. Gerlach. A – Flor, vista semilateral. B – Labelo, vista dorsal. C – Labelo, vista 

lateral. Dibujado del paratipo (M). Ilustración: Corina Gerlach. 

verrugas visibles en la base dorsal del mesoquilo. 

DISTRIBUCIÓN: Hasta ahora la especie se conoce solamente 

de Panamá. Así, se trata de una planta endémica 

en ese país. 

ETIMOLOGÍA: La especie está dedicada al Sr. Andrés


Vol. 4, Nº 1 

Maduro, quien con sus recolectas y su colección de 

plantas cultivadas aumentó significativamente el 

conocimiento de las orquídeas panameñas. Con su 

inmensa ayuda pude entender mejor la taxonomía del 

género Coryanthes en Panamá y mejorar muchísimo 

la identificación de las especies en este país. 

OBSERVACIONES: El aroma floral de C. maduroana es 

notablemente simple; está compuesto solamente por 

tres moléculas: 

2-N-metilaminobenzaldehido 94,5 % 

(2-N-methylaminobenzaldehyde) 

metil-N-metilantranilato 0,3% 

(methyl-N-methylanthranilate) 

2-aminobenzaldehido 0,2% 

(2-aminobenzaldehyde) 

Todas estas sustancias pertenecen al mismo 

camino de biosíntesis. Lo interesante es que el aroma 

se compone solamente de tres sustancias; normalmente 

son un mínimo de 10 sustancias ó mas. El 

aroma de las flores pertenecientes al síndrome floral 

de perfumes 1 normalmente no es muy complejo; en 

unas pocas especies sólo se han encontrado desde 

uno hasta tres componentes (Gerlach & Schill 1989, 

1991, 1993). El 2-N-metilaminobenzaldehido fue 

encontrado por primera vez como sustancia natural 

en el aroma floral de Coryanthes mastersiana 

Rchb.f. (Gerlach & Schill 1989). Esta especie se distingue 

de todas las otras especies del género 

Coryanthes por la presencia de este compuesto. En 

cuanto a estructura y color C. mastersiana es muy 

variable, pero como tenemos muchas recolectas de 

esta especie del Chocó colombiano sabemos bastante 

sobre su plasticidad en forma y color. Asimismo, 

sabemos que posee un aroma floral que contiene más 

de 90% de 2-N-metilaminobenzaldehido. Los 

primeros intentos de sintetizar 2-N-metilaminobenzaldehido 

fracasaron, debido a la autopolimerización 

de la sustancia (así perdió su atractividad) y a problemas 

con la infraestructura en el Chocó. Finalmente, 

algunos experimentos con cebos de esta sustancia en 

la costa del Chocó mostraron en 1994 su atractividad 

para los polinizadores. 

Con las verrugas dorsales visibles sobre el mesoquilo, 

la especie nueva muestra cierto parentesco con 

las especies de la sección Lamellunguis, pero el resto 

de los caracteres (hábito, forma del mesoquilo, aroma 

floral) la ubican en la sección Coryanthes. Aunque el 

aroma floral es casi idéntico al de C. mastersiana, se 

trata sin duda de una especie diferente. Coryanthes 

mastersiana ha sido recolectada solamente en 

Colombia, mientras que C. maduroana fue hallada en 

El Valle de Antón (prov. Coclé) y en Santa Fe (prov. 

Veraguas), ambos sitios situados al oeste del istmo de 

Panamá. Además, nunca se han observado flores de 

C. mastersiana con verrugas en el mesoquilo. 

AGRADECIMIENTOS. Quiero dar las gracias a Franz 

Schuhwerk (Botanische Staatssammlung München, 

Alemania) por traducir las descripciones diferenciales al 

latín, a Corina Gerlach por los dibujos y las correcciones 

del texto, y a Roman Kaiser (Givaudan Schweiz AG, 

Dübendorf, Suiza) por los análisis de los aromas florales. 

1 El síndrome floral de perfumes describe un sistema de 

polinización. Las plantas que exhiben este síndrome son 

polinizadas únicamente por machos de abejas euglósidas, 

que buscan y recolectan sustancias aromáticas en las flores.

Abril 2004 



De Barros, F. 1983. Uma nova espécie de Polycycnis (Orchidaceae) do Brasil. Rev. Brasil. Bot. 6: 15-18. 

Dodson, C.H. 1980. Polycycnis morganii. Icon. Pl. Trop. 3: 269. 

Dressler, R.L. 1977. El género Polycycnis en Panamá y Costa Rica. Orquideología 8(1): 117-127. 

Gerlach, G. & Schill, R. 1989. Fragrance analyses, an aid to taxonomic relationships of the genus Coryanthes 

(Orchidaceae). Plant. Syst. Evol. 168: 159-165. 

Gerlach, G. & Schill, R. 1991. Composition of Orchid Scents Attracting Euglossine Bees. Bot. Acta 104: 379-391. 

Gerlach, G. & Schill, R. 1993. Die Gattung Coryanthes Hook. (Orchidaceae); eine monographische Bearbeitung unter 

besonderer Berücksichtigung der Blütenduftstoffe. Trop. Subtrop. Pflanzenwelt 83: 1-205.


VALIDATION OF THE SPECIES OF SEPTOBASIDIUM (BASIDIOMYCETES) 

DESCRIBED BY JOHN N. COUCH 

ABSTRACT. Names of species and varieties first described as new by J.N. Couch in his monograph of 

Septobasidium, including those previously but invalidly proposed by other authors, which failed to be validated 

in 1938 for lack of a Latin description or diagnosis, are posthumously validated here by provision of 

translation into Latin of Couch’s English descriptions. Holotypes, some isotypes and paratypes, and one 

neotype and isoneotype are designated here for these newly validated names. 

RESUMEN. Aquí se validan póstumamente los nombres de especies y variedades nuevas descritas por J.N. 

Couch en su monografía de Septobasidium (1938); se incluyen los propuestos antes por otros autores, que 

no eran válidos por faltar una descripción latina. Se proveen traducciones al latín de las descripciones inglesas 

de Couch y se designan holotipos, algunos isotipos y paratipos, un neotipo y un isoneotipo. 

KEY WORDS / PALABRAS CLAVE: Basidiomycetes, Septobasidium, heterobasidiomycetes, nomenclature. 

In the Preface of his classical monograph of 

Septobasidium, John N. Couch, then Professor of 

Botany at the University of North Carolina, wrote: 

“When this work was started in 1926 about seventyfive 

species of Septobasidium had been named, but 

few of these had been adequately described and illustrated.” 

However, when the monograph was published 

(Couch 1938) the species had been considerably 

augmented in number (from some 75 to 173 

taxa), carefully illustrated and compared but those 

opening lines of his preface remained correct because 

Couch did not comply with the requirements of the 

International Code of Botanical Nomenclature to provide 

Latin descriptions for the new taxa he proposed 

(Article 36.1, St. Louis Code, Greuter et al. 2000) in 

his monograph (Couch 1938). The only exceptions 

are names published before the date established by 

the Code, 1st January 1935, for the species described 

in his “A monograph of Septobasidium. Part I. 

Jamaican species” (J. Elisha Mitchell Sci. Soc. 44, 

1929). 

The senior author researched the files of the 

Elisha Mitchell Science Society as well as those 

kept by the University of North Carolina Press on 

LUIS D. GÓMEZ 1 & DANIEL A. HENK 2 

1 

Academia Nacional de Ciencias, Costa Rica, Apdo. 676-2050 Costa Rica. ldgomez@hortus.ots.ac.cr 

2 

Department of Biology, Duke University, Durham, North Carolina 

the subject but failed to discover any typescript or 

manuscript materials indicating that there ever was 

a Latin description for the species, nor any statement 

of the author as to why such Latin descriptions 

were not published simultaneously or asserting 

a personal stance unequivocally and expressly 

contrary to comply with the Code. Couch mentions 

throughout the text some of the Code’s principles 

which is evidence that he was aware of the requirements. 

He also translated from Latin into English 

many of the older descriptions so it obtains that he 

had a working knowledge of the Latin language sufficient 

to write generic and specific descriptions as 

he did in 1949 (Couch 1949). Therefore we have 

assumed that Couch’s intentions were to produce 

Latin descriptions at some time in the future, possibly 

to include all the new taxa he had collected after 

1938. 

Throughout his publication, Couch adopted a number 

of “herbarium names” that were not formally published 

by their authors. Clearly, Couch accepted the 

species attached to those names, in a majority of 

cases with original specimens at hand. Those names 

are also validated here.


Vol. 4, Nº 1 

It is the purpose of this paper to complete Prof. 

Couch’s work by translating his English descriptions 

into Latin and thus validating his names, now in wide 

use. Whenever possible, type information is given, 

and comments added, even for species of earlier 

authors that Couch included in his monograph. For all 

nomenclatural and practical purposes, the descriptions 

in this paper, and the names validated by the 

provision of Latin translations and designation of 

types are to be considered as Couch’s (ICBN, St. 

Louis Code Art. 36, Ex. 3, Greuter et al. 2000). 

Materials and methods 

The book The Genus Septobasidium (Couch, 

1938), its official day of publication was 16th. July 

1938, as published by the University of North 

Carolina Press is the source of Couch’s species 

names enumerated here. Types as conserved in the 

herbarium at Chapel Hill (NCU), North Carolina, 

with their many annotations in Couch’s handwriting 

have served to confirm his intended use of new and 

old names. The exclamation mark “!” identifies 

specimens studied by the authors of the present 

paper. Texts authored by Couch, whether translated 

by us or not, are explicitly credited to him by the 

addition of “[Couch]”. 

No attempt is made here to discuss the systematics 

and phylogeny of the genus and its species as they 

appear in Couch’s publication. Geographical names 

remain as cited by Couch from his specimens, with 

no attempt to modernization or correction, e.g. 

“China, Tonkin” instead of Vietnam, Tonkin. The 

only exceptions are some Central American locations. 

The abbreviations of herbaria where type materials 

are located are the official, standardized ones in the 

eighth edition of Index Herbariorum (Holmgren et al. 

1990). The collections of Patouillard and Burt materials 

at BPI and FH are accompanied by sheet numbers 

which may serve to distinguish them. 

The validated specific names (indicated by *) are 

listed in alphabetical order and this constitutes the 

only variance from Couch’s original arrangement of 

the taxa [page number in brackets]. The species 

names validly published by Couch in 1929 are preceeded 

by ‡. 

Septobasidium Patouillard 

J. de Bot. 6: 61. 1892. 

nomen conservandum 

The generic name and concept of Septobasidium 

Pat. was preceded by Glenospora Berk. & Desm. (J. 

Royal Hort. Soc. 4: 243. 1849). Boedijn and 

Steinmann (1931) proposed Septobasidium for conservation 

against Glenospora, a proposal upheld by 

Couch (1938, p. 67) and supported by Donk ( Bull. 

Bot. Gdns. Buitenzorg III, 17: 178. 1941) and Rogers 

(Farlowia 3: 476. 1949). The proposal was accepted 

by ballot by the Special Committee for Fungi (in 

Code 77, Mycologia 45: 316. 1953) and ratified by 

the Paris Congress (Taxon 4: 162. 1955).The conserved 

type of Septobasidium is S. velutinum Pat. 

S. abnorme (Henn.) Höhnel & Litsch. [287]. 

S. acaciae Sawada. [189]. Holotype: Formosa, 

Taihokuchô Shakukô, Sawada & Fiyikuro, Sept. 

26, 1910, at NCU! 

S. accumbens (Berk. & Br.) Bres. in Pat. [258]. 

Couch stated that this name was never published 

by Bresadola. However, Patouillard did publish 

Bresadola’s species, discussed it at length and analyzed 

the illustration, thus validating the name 

(Bull. Soc. Myc. Fr. 41: 338 – 341, 1925). Isotype: 

Ceylon, Hautane, G. H. K. Thwaites coll., at NCU! 

S. alatum Lloyd [108]. Isotype: Philippines, 

McGregor, Feb. 1913, Bureau of Science #20385 

at NCU!. This is, according to Couch in an annotation 

of a specimen at NCU, a later synonym of S. 

granulosum Sydow (q.v.). 

S. albidum Pat. [245]. Holotype at FH, FH-Pat. 1044, 

two collections as mentioned by Couch. 

S. album Burt [295]. Included under notes to excluded 

species, it was later published as Helicogloea 

alba (Burt) Couch (Mycologia 41: 435.1949), 

which is the actual and correct name. 

S. aligerum Petch [110]. Although validly published 

by Petch (Tr. Br. Myc. Soc. 12: 276, pl. 18, figs. 1, 

2 pl. 19, figs. 1, 2. 1927) it was based on 

Hymenochaete rameale Berk. (J. Linn. Soc.14: 68. 

1873) and thus preceded by Septobasidium 

rameale (Berk.) Bres. in Petch (Tr. Br. Myc. Soc.

Abril 2004 

7: 34. 1921), which is the correct name for this 

species. Isotype: Ceylon, N. Ellya, J. Gardner, Jan 

1847 at NCU! 

S. alni Torrend [150]. Isotype: Portugal, on Alnus, 

Torrend 373 at NCU! 

* S. alni Torrend var. brasiliense Couch, var. nov. 

[153]. Basidiocarpus resupinatus textura aspera 

brunneofuscus, saepe spinis dispersae, 10 cm 

quadr. latis, in sectione transversali 200 – 260 µm 

crassus, subiculatus, columnatus, stratosus. 

Hymenium, basidia et sporae ut in hac specie 

[Couch]. Holotype: Brazil, São Leopoldo, Rick 

Dec. 16, 1937 at NCU. 

* S. alni Torrend var. squamosum Couch, var. nov. 

[153]. See J. Elisha Mitchell Sci. Soc. 51: 35. 

1935. Basidiocarpus resupinatus, sectione transversali 

tenuissimus, umbrinus vel brunneolus sed 

griseo-tinctus, margine determinato vel indeterminato. 

Probasidium sphaericum, 9 – 11.3 µm, 

basidium cylindricum, 4-cellulatum, 4 –5 x 40 – 50 

µm, sporae 3.4 – 4.2 x 15. 9 – 21 µm, leniter flexae, 

3-septatae [Couch]. Holotype: S. Carolina, St. 

Helena’s Island, on Liquidambar, March 21, 1930, 

J. N. Couch 8479, at NCU. Couch suspected this 

taxon to be a hybrid between S. alni and S. castaneum. 

‡ S. alveolatum Couch [216]. J. Elisha Mitchell Sci. 

Soc. 44: 253. 1929. Holotype is not at NCU. 

Isotype: Jamaica, Portland Gap, on Psychotria, 

Couch 8549, at BPI 268369. 

* S. alveomarginatum Couch, sp nov. [158]. 

Basidiocarpus resupinatus, ochraceus sed 

vinaceus deinde atrofuscus, in sectione transversali 

450 - (550) – 625 µm crassus, margine determinato, 

albo, nitido, e partibus tribus compositus: 

subiculum ex hyphis albidis compositum, 25 – 50 

µm crassum; aliquot columnae curtae, 25 – 60 x 60 

– 80 µm; stratum superum 30 – 420 µm crassum, 

ex hyphis 3.8 – 4.4 µm latis, septatis, efibulatis, 

ramificatis, sub lente olivaceis dilutis. Hymenium 

33 – 42 µm crassum, hyphis compactis, intricatis, 

1.8 – 2.4 µm latis, apibus hyalinis. Probasidia 11.5 

– (12.6) - 16 µm, subglobosa, basidia recta, 4-cellulata, 

5.8 – 6.4 x 42 – 54 µm, Sterigmata brevia. 

Sporae n.v. [Couch]. Holotype: Brazil, São 

GÓMEZ & HENK - Validation of Septobasidium 77 

Leopoldo, Rick, on Citrus sp., Oct. 13, 1932, 

U.N.C. no. 9364 at NCU! 

* S. apiculatum Couch, sp. nov. [106]. See J. Elisha 

Mitchell Sci. Soc. 51: 62. 1935. Basidiocarpus 

resupinatus, sordide albus vel bubalino tingens, 

inconspicuuus, superficiei leviter granulosus, in 

sectione transversali 250 – (275) – 550 µm crassus, 

stratosus. Hyphis 4 – 5 µm latis, septatis, 

septo constrictis, efibulatis. Probasidia tenuiuncicata, 

hyalina, ovoidea deinde in basidia elongata 

formantia. Basidia clavata, 6.8 – 8.4 x 23 – 32 µm, 

3-cellulata. Sterigmata longa. Sporae 4.6 – 6.3 x 

13 – 25 µm, elliptico-curvatae [Couch]. Holotype: 

North Carolina, Chapel Hill, Couch 8422, on 

Cornus amomum, at BPI 268372. 

S. arachnoideum (Berk. & Br.) Bres. [238]. Isotype: 

Ceylon, Habgalla, Thwaites 539, Feb. 1868 at 

NCU! 

S. arboreum (Couch) Boedijn & B.A. Steinm. [131]. 

Bull. Jard. Bot. Buitenzorg III, 11: 168. 1931. 

Based on Helicobasidium arboreum Couch (J. 

Elisha Mitchell Sci. Soc. 44: 257. 1929). 

Holotype: J. N. Couch, Blue Mountains Peak 

Trail, Jamaica, June 1926 is not at NCU. Isotype 

at BPI 292617. 

‡ S. areolatum Couch [88]. J. Elisha Mitchell Sci. 

Soc. 44: 248. 1929. No type material at NCU. 

Isotype at BPI 268373. 

S. atratum Pat. [143]. Holotype at FH FH-Pat. 1054. 

Isotype: Guadeloupe, Morne Gemmier, on Eugenia 

jambos, coll. Duss 1836 at NCU! 

‡ S. atropunctum Couch [190]. J. Elisha Mitchell 

Sci. Soc. 44: 251. 1929. Holotype: Jamaica, 

Cinchona, J. N. Couch, July 1926 not at NCU. 

Isotype at BPI 268376 

S. bagliettoanum (Fr.) Bres. [241]. Authentic 

Bresadola material from Tuscany, on Quercus, 

May 11, 1908 at NCU!, cf. material at FH as FH- 

Pat. 1061. 

S. bakeri Pat. [272]. Couch cites as the type a specimen 

from NY he annotated in Jan. 1929: 

“Philippines, Laguna, Los Baños, C. F. Baker 87” 

now at NCU! However, the holotype is at FH as


Vol. 4, Nº 1 

FH-Pat. 1056, but the collection corresponds to 

Baker 73 (of which there is a fragment at NCU 

annotated by Couch as “S. bakeri Pat. from Pat. 

H.73. On coccid colonies bamboo. Sept. 22, 1912. 

Los Baños, PI. Baker collection”). 

* S. boedijnii Couch, sp. nov. [198]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculas irregulares 2-5 - (-17) mm 

formans, bubalinus vel pallide ochraceus, margine 

supero determinato, infero indeterminato, in sectione 

transversali ca. 1 mm crassum, stratis tribus: 

subiculum, medulla columnata, stratus superus. 

Subiculum tenuissimum, 5 – 27 µm crassum, 

iuventutem albidum senectute fuscum, cribrosum. 

Columnae 500 – 900 µm longae, 10 – (20) – 40 µm 

crassae, rectae, ex hyphis 3 – 5 µm latis, pauci 

septatis, apicibus ramificatis. Stratum superum 70 

– 170 (375 fide Boedijn et B.A. Steinm.) µm crassum, 

ex hyphis 3.8 – 5 mµ latis, pallide brunneis, 

irregulariter textus. Hymenium 30 – 50 µm crassum, 

ex hyphis 2.2 – 4 µm latis, hyalinis, irregulariter 

textum vel substratosum. Probasidia 16- 19 

(raro –33) longa, sphaerica, saepe obovoidea, ubi 

maturitate evacuantia. Basidia 4-cellulata, 8.8 – 

9.3 x 32 – 38 µm, curvata. Sterigmata ?. Sporae 6 

– 7.5 x 20 – 26 µm (fide Boedijn et B.A. Steinm. 

1931) [Couch]. Holotype: Java, Tjibodas on 

Fagraea obovata leg. Boedijn, October 1929, at 

NCU! 

S. bogoriense Pat. ex Henn. in Warburg [213]. 

Isotype: Hortus Bogoriense on bark of living tree, 

June 3, 1898, E. Nyman coll., at NCU! 

S. bresadolae Pat.[103]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1061.Isotypes: Brazil, São Leopoldo, Rick collection 

at NCU and at BPI 268387. 

S. burtii Lloyd [168]. Holotype: Louisiana, near St. 

Martinsville, 1890, Langlois coll., at NCU! 

* S. burtii Lloyd var. acerinum Couch, var. nov. 

[171]. Basidiocarpus resupinatus, crustaceus, cinnamomeus 

vel atrobrunneus, nodosus, superficialiter 

sinuoso fractus; subiculum determinatum, 

fimbriatum.Contextus sine columnis, in sectio 

transv. 0.6 mm crassus, 3-stratificatus, medulla 

laxe fibrosa, tecta. Probasidia persistentes. 

Haustoria spirarum irregularium. [Couch]. 

Holotype: North Carolina, Chapel Hill, on bark of 

Acer saccharinum, Feb.28, 1930, J.N. Couch coll. 

#8438 at NCU! 

S. cabralii Torrend [293]. Included in Couch’s 

“incompletely known species” as he had no access 

to the type material. 

S. canescens Burt [107]. Isotype: California, 

Pasadena, on Quercus, June 15, 1914, A. G. Smith 

at NCU! Holotype at BPI 269280. 

S. capnodes (Berk. & Br.) Bres. [286]. 

S. carbonaceum Pat. [289]. Holotype at FH as FH- 

Pat. 1062. 

S. carestianum Bres. [155]. Part of holotype: Italy, 

on branches of Salix, det. Bresadola in 1897 at 

NCU! ex NY. Material in FH as FH-Pat. 1063 

from Italy ex Bresadola, also FH-Burt 14. 

* S. carestianum Bres. var. natalense Couch, var. 

nov. [157]. Basidiocarpus resupinatus, maculas 

irregulares ad 6 cm formans, iuventute avellaneas 

deinde cinnamomeas, superficiei sub lente pruinosula, 

margine determinato. Subiculum album, 

tenuissimum sed in maturitate stromaticum. 

Columnis incipientibus, medulla ex hyphis 

obliquis, ramificatis, pallide brunneis, 2.1 – 4.2 

µm latis. Hymenium 30 – 63 µm crassum. 

Probasidia sphaerica, 11.3 – 15.1 µm, in senectute 

brunnea. Basidia longe cylindrica, apicem acuta, 

4-cellulata, 5 – 6.7 x 62 – 71 µm. Sterigmata brevia. 

Sporae ellipticae, flexae, 4. 2 – 5 x 21 – 23 µm 

[Couch]. Holotype: Africa, Natal, P. Maritzburg, 

on Citrus coll. J. van der Vywer, May 19, 1932, # 

26321 at NCU! 

S. castaneum Burt [147]. Holotype: Near Montgomery, 

Alabama, R. P. Burke 20421 at NCU! annotated 

as “Part of type. Farlow H dist. by Dr. Burt. 

For photo.” 

S. cavarae Bres. [173]. Isotype: Sardinia, on Pistacia 

lentiscus Oct. 1900, Cavara, ex herb. Bresadola, at 

NCU! At FH a specimen under FH-Pat. 1064. 

* S. cervicolor Couch, sp. nov. [182]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculas irregulares formans, brunneolas 

vel hinnuleas vel fuscas, margine determinato, 

superficiei laevi, in sectione transversali 

500 – 800(1000) µm crassum, multistratosum.


Vol. 4, Nº 1 

FH-Pat. 1056, but the collection corresponds to 

Baker 73 (of which there is a fragment at NCU 

annotated by Couch as “S. bakeri Pat. from Pat. 

H.73. On coccid colonies bamboo. Sept. 22, 1912. 

Los Baños, PI. Baker collection”). 

* S. boedijnii Couch, sp. nov. [198]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculas irregulares 2-5 - (-17) mm 

formans, bubalinus vel pallide ochraceus, margine 

supero determinato, infero indeterminato, in sectione 

transversali ca. 1 mm crassum, stratis tribus: 

subiculum, medulla columnata, stratus superus. 

Subiculum tenuissimum, 5 – 27 µm crassum, 

iuventutem albidum senectute fuscum, cribrosum. 

Columnae 500 – 900 µm longae, 10 – (20) – 40 µm 

crassae, rectae, ex hyphis 3 – 5 µm latis, pauci 

septatis, apicibus ramificatis. Stratum superum 70 

– 170 (375 fide Boedijn et B.A. Steinm.) µm crassum, 

ex hyphis 3.8 – 5 mµ latis, pallide brunneis, 

irregulariter textus. Hymenium 30 – 50 µm crassum, 

ex hyphis 2.2 – 4 µm latis, hyalinis, irregulariter 

textum vel substratosum. Probasidia 16- 19 

(raro –33) longa, sphaerica, saepe obovoidea, ubi 

maturitate evacuantia. Basidia 4-cellulata, 8.8 – 

9.3 x 32 – 38 µm, curvata. Sterigmata ?. Sporae 6 

– 7.5 x 20 – 26 µm (fide Boedijn et B.A. Steinm. 

1931) [Couch]. Holotype: Java, Tjibodas on 

Fagraea obovata leg. Boedijn, October 1929, at 

NCU! 

S. bogoriense Pat. ex Henn. in Warburg [213]. 

Isotype: Hortus Bogoriense on bark of living tree, 

June 3, 1898, E. Nyman coll., at NCU! 

S. bresadolae Pat.[103]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1061.Isotypes: Brazil, São Leopoldo, Rick collection 

at NCU and at BPI 268387. 

S. burtii Lloyd [168]. Holotype: Louisiana, near St. 

Martinsville, 1890, Langlois coll., at NCU! 

* S. burtii Lloyd var. acerinum Couch, var. nov. 

[171]. Basidiocarpus resupinatus, crustaceus, cinnamomeus 

vel atrobrunneus, nodosus, superficialiter 

sinuoso fractus; subiculum determinatum, 

fimbriatum.Contextus sine columnis, in sectio 

transv. 0.6 mm crassus, 3-stratificatus, medulla 

laxe fibrosa, tecta. Probasidia persistentes. 

Haustoria spirarum irregularium. [Couch]. 

Holotype: North Carolina, Chapel Hill, on bark of 

Acer saccharinum, Feb.28, 1930, J.N. Couch coll. 

#8438 at NCU! 

S. cabralii Torrend [293]. Included in Couch’s 

“incompletely known species” as he had no access 

to the type material. 

S. canescens Burt [107]. Isotype: California, 

Pasadena, on Quercus, June 15, 1914, A. G. Smith 

at NCU! Holotype at BPI 269280. 

S. capnodes (Berk. & Br.) Bres. [286]. 

S. carbonaceum Pat. [289]. Holotype at FH as FH- 

Pat. 1062. 

S. carestianum Bres. [155]. Part of holotype: Italy, 

on branches of Salix, det. Bresadola in 1897 at 

NCU! ex NY. Material in FH as FH-Pat. 1063 

from Italy ex Bresadola, also FH-Burt 14. 

* S. carestianum Bres. var. natalense Couch, var. 

nov. [157]. Basidiocarpus resupinatus, maculas 

irregulares ad 6 cm formans, iuventute avellaneas 

deinde cinnamomeas, superficiei sub lente pruinosula, 

margine determinato. Subiculum album, 

tenuissimum sed in maturitate stromaticum. 

Columnis incipientibus, medulla ex hyphis 

obliquis, ramificatis, pallide brunneis, 2.1 – 4.2 

µm latis. Hymenium 30 – 63 µm crassum. 

Probasidia sphaerica, 11.3 – 15.1 µm, in senectute 

brunnea. Basidia longe cylindrica, apicem acuta, 

4-cellulata, 5 – 6.7 x 62 – 71 µm. Sterigmata brevia. 

Sporae ellipticae, flexae, 4. 2 – 5 x 21 – 23 µm 

[Couch]. Holotype: Africa, Natal, P. Maritzburg, 

on Citrus coll. J. van der Vywer, May 19, 1932, # 

26321 at NCU! 

S. castaneum Burt [147]. Holotype: Near Montgomery, 

Alabama, R. P. Burke 20421 at NCU! annotated 

as “Part of type. Farlow H dist. by Dr. Burt. 

For photo.” 

S. cavarae Bres. [173]. Isotype: Sardinia, on Pistacia 

lentiscus Oct. 1900, Cavara, ex herb. Bresadola, at 

NCU! At FH a specimen under FH-Pat. 1064. 

* S. cervicolor Couch, sp. nov. [182]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculas irregulares formans, brunneolas 

vel hinnuleas vel fuscas, margine determinato, 

superficiei laevi, in sectione transversali 

500 – 800(1000) µm crassum, multistratosum.


Vol. 4, Nº 1 

300 – 600 µm ex hyphis 4.2 – 5.4 µm latis, crassitunicatis, 

pallide brunneis, apicem ramificans stratum 

superum formantia; stratum superum in sect. 

transv. 50 – 100 µm, hyphis 4.2 – 5 µm, gradatim 

angustatis, filiformis 2 – 3 µm latis. Probasidia 

sphaerica, 11.7 – 15.1 µm, germinans, maturitate 

evacuantia et basidium curvatum vel tortum formantia, 

4-cellulata. Sterigmata longa. Sporae 

ellipticae, 8 – 25 µm, distaliter flexae [Couch]. 

Holotype: Philippines, Davao, Mindanao, Mt. Apo 

on Clethra canescens, Clemens 5313 at NCU! 

* S. cokeri Couch, sp. nov. [138]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculas magnas formans, albus, 

regione marginale determinata, superficiei laevi, 

in sect. transv. 0.6 – 1.3 mm crassus, partibus 

tribus compositus: subiculum 40 – 70 µm crassum, 

ex hyphis 3 – 3.7 µm latis; columnae 18 – 185 x 

370 – 510 µm, ex hyphis multiseptatis, septis constrictis, 

crassitunicatis, intertextis, dispersis vel 

aggregatis, omnis ad basim cum hyphis curtis, 

hispido-erectis et crystalis circulatis. Hymenium in 

stratum superum, 25 – 50 µm crassum, e hyphis 2 

– 3 µm latis, paraphysibus, probasidiis et basidiis. 

Probasidia crassitunicata (-2 µm), globosa, subglobosa 

vel plerumque obovoidea, 10 x 11 – 16 

µm, aliquando 2-cellulato-pedicellata. Basidia 

longe cylindrica nonnumquam flexa, 4.4 – 6.2 x 40 

– 55 µm, 4-cellulata, longe pedicellata ad probasidia 

vacua affixa. Sterigmata lateralia, brevia, 5 

µm longa. Sporae ellipticae, curvatae, 3 – 3.7 x 

14.8 – 22.4 µm [Couch]. Holotype: North 

Carolina, Chapel Hill, on Quercus rubra, Couch 

10004, not at NCU. Isotype at BPI 268584. 

* S. conidiophorum Couch, sp. nov. [262]. 

Basidiocarpus resupinatus, fuscus vel atrobrunneus, 

velutinum vel fuligineus, margine determinato, 

in sect. transv. 400 – 700 µm crassus, partibus 

duabus compositus: subiculum 60 – 300 µm crassum 

ex hyphis obscure brunneis vel aliquando 

hyalinis, 3.5 – 5 µm latis, compacte et intricate 

intertextis, et cellulis vesiculosis, crassitunicatis, 

hyalinis, 5.4 – 6.5 µm diam. Columnae nullae sed 

contextum ex hyphis atrobrunneis, crassitunicatis, 

rectis vel curvatis, septatis, irregulariter ascendens 

stratum superum, laxitextum formantia et hyphis 

hyalinis, tenuitunicatis, valde curvatis, apici concatenatis 

cellulis cylindraceis vel cupiformis. 

Cellulae longiores quam latae conidia hyalina, 1.5 

x 4 µm formantia [Couch]. Holotype: Florida, 

Canal Point, on Citrus sp., O. D. Link , Jan. 26, 

1933 at FLAS as F7703. 

* S. cremeum Couch, sp. nov. [ 227]. See J. Elisha 

Mitchell Sci. Soc. 51: 46.1935. Basidiocarpus 

resupinatus, iuventute bubalinus deinde cinnamomeus, 

superficiei laevi deinde irregulariter fissurata, 

margine indeterminato, in sect. transv. 225 µm 

crassa, partibus tribus compositus: Subiculum ± 

33 µm crassum, ex hyphis hyalinis, septatis. 

Columnae curtae. Stratum superum 60 – 130 µm 

crassum. Hymenium 35 – 45 µm crassum, hyalinum, 

ex hyphis 2.2 – 3.5 µm latis, hyalinis, ramificatis, 

dense compactis, intricatis. Contextum ex 

hyphis septatis, 3.8 – 4.2 µm latis, efibulatis, sub 

lente ambarinis. Probasidia subglobosa, 8 – 9 µm 

latis. Basidia generaliter circinata, 4.2 – 5 x 35 – 

40 µm, 4-cellulata. Sterigmata longa. Sporae 3.8 – 

5 x 11.5 – 16.8 µm, suballantoideae [Couch]. 

Holotype: Florida, near Jacksonville, on 

Liquidambar styraciflua, J.N.Couch, March 11, 

1932, NCU no. 9232, at BPI 268589. 

S. crinitum (Fr.) Pat. in Rick, Ann. Mycol. 4: 311. 

1906. [252]. Holotype at FH as FH-Pat. 1065. 

Isotype: Brazil, São Leopoldo, on Myrsine sp., leg. 

Rick at NCU! 

* S. crustaceum Couch, sp. nov. [241]. Basidiocarpus 

resupinatus, avellaneus vel tabacinus, superficiei 

laevi, sub lente minute fissurata, tuberculata, 

margine determinato, contextum distinctum, 50 – 

100 µm crassum. Contextum ex hyphis brunneis, 

intricatis, dense compactis textum. Probasidia 

sphaerica, 8.2 – 9.2 µm, germinantia basidium 

helicoideum vel valde curvatum, 5.6 –6.3 x 28 – 34 

µm, 4-cellulatum formantia. Sterigmata 8 – 10 µm 

longa. Sporae curvato-ellipticae, 4.2 x 14.7 – 21 

µm. Probasidia, basidia multi oleagineo-vacuolata 

[Couch]. Holotype: Australia, North Queensland, 

on lemon, with S. bogoriense and S. aligerum, July 

17, 1936 at NCU! There are also two specimens 

from Argentina, San Isidro, Aug. 1936, on 

Cupressus with Diaspis, annotated by Couch as 

representing this species which are, however, S. 

cupressi.

Abril 2004 

* S. cupressi Couch, sp. nov. [225]. Basidiocarpus 

resupinatus, minutus, foliicolus, bubalinus, flocculosus, 

margine determinato, in sect. transv. 200 – 

350 µm crassus, e partibus tribus compositus: 

subiculum album, 20 – 40 µm crassum ex hyphis 3 

– 4.2 µm latis, hyalinis, irregulariter inflatis, septatis, 

pauce ramificatis; columnae vel caespes ex 

hyphis hyalinis, subiculo similis; stratum superum 

ex hyphis laxitextis, hyalinis, tenuetunicatis, 3 – 

3.5 µm latis. Probasidia globoso-obovata, hyalina, 

7. 5 – 10 x 13 – 15 µm, germinantia basidium elongatum 

formantia. Basidia 5 – 6 x 28 – 33 µm, 2cellulata. 

Sporae elliptico-curvatae [Couch]. 

Holotype: Argentina, Buenos Aires, on Cupressus 

sp., Grodsinsky, at NCU! 

S. curtisii (Berk. & Desm.) Boedijn & B. A. Steinm. 

[164]. Of wide distribution, this taxon is erroneously 

reported by Couch from the Caribbean: 

“Guadeloupe, near San José, on Erythrina, leg. 

Condert”. The specimen is from “ Guadalupe, near 

San José, Costa Rica”, and is also contained in the 

Patouillard herbarium at FH (FH-Pat. 1708, with S. 

leprieurii) and was recorded by A. Tonduz and O. 

Jiménez in their unpublished ms. Hongos de Costa 

Rica. I. Determinavit Cl.N. Patouillard, collegit 

A.Tonduz et O. Jiménez (1908-1914), in the 

library of the senior author. 

This name is based on Glenospora curtisii Berk. & 

Desm. (J. Roy. Soc. Hort. 4: 255. 1849) and later 

as G. curtisii Berk & M.A.Curtis in Berk. 

(Grevillea 4: 161. 1876). Despite its wide geographical 

distribution and the familiar name, the 

correct name for this species seems to be S. ramorum 

(Schwein.: Fr.) Donk (Taxon 7: 164. 1958), a 

name based on Racodium ramosus Schwein. in 

Schr. Naturfr. Ges. Leipzig 1: 131. 1822, 

Oedemium ramorum (Schwein.) Fr. (Syst. mycol. 

3(2): 345. 1832, ramorum in error). 

S. dictyodes (Berk. & Br.) Pat. [92]. Isotype: Ceylon, 

Central Province, Thwaites 1027, Dec. 1868 at 

NCU! Holotype at FH as FH-Pat. 1066. 

* S. elatostemae Couch, sp. nov. [263]. Basidiocarpus 

resupinatus, hypophyllus, minutus, gregarius, pulvinatus. 

Superficiei laevi vel minute granulosa, 

atrobrunnea, margine vegetativo in subiculo inde- 


terminato, in strato supero determinato, in sect. 

transv. ca. 1 mm crassus, partibus tribus indistinctis: 

subiculum ex hyphis pallide brunneis vel hyalinis, 

2.2 – 4 µm latis, pluriramificatis anastomosans. 

Stratum superum ex hyphis 3 – 4 µm latis, 

atrobrunneis. Probasidia, basidia n.v. 

Conidiophora septata, elongata, conidia 3-cellulata, 

crassitunicata, fusca, formantia [Couch]. 

Holotype: Philippines, Mindanao, Mt. Apo, on 

leaves of Elatostema, Clemens 5622 at NCU! 

* S. ficicolum Pat. ex Couch, sp. nov. [167]. 

Basidiocarpus resupinatus, tenuis, brunneus. 

Regione marginale in subiculo determinata, inconspicue 

caespitosa, in strato supero irregulariter 

fimbriata. Basidioma in sect transv. 250- 370 µm 

crassa e partibus tribus composita: subiculum 

tenuissimum, 12 – 30 µm crassum, contextum 

columnatum (columnae 50 – 210 x 70 – 90 µm) vel 

vallumnatum. Contextum ex hyphis 2.1 –2.8 – 4 

µm latis, rectis, pauce ramificatis. Probasidia 

sphaerica, 8. 4 – 12.6 µm. Basidia longe cylindrica, 

4. 6 – 5.2 x 52 – 58 µm, 3-septata. Sterigmata 

ca. 4 µm longa. Sporae ellipticae, 4 – 4.3 x 14.8 – 

17 µm, distaliter pauce curvatae [Couch]. 

Holotype: Philippines, Luzon, Mt. Maquiling, on 

Ficus sp., Sept. 30, 1920, J. Lebunas 10243, at 

NCU! Isotype at FH as FH-Pat. 1067. 

* S. filiforme Couch, sp. nov. [205]. See J. Elisha 


resupinatus, effussus, iuventute albus deinde sepiaceus, 

maculam magnam formans. Basidioma in 

sect. transv. 800 – 1000 µm crassa e partibus 

tribus composita: subiculum album, 20 – 50 µm 

crassum, ex hyphis tenuitunicatis 2 – 3.2 µm latis, 

septatis, efibulatis. Columnae ex hyphis 3.2 – 4.4 

µm latis, ramificatis, raro septatis. Hymenium 42 – 

60 (raro 90) µm crassum, ex hyphis 3 µm latis. 

Probasidia obovoidea, 7.7 – 11.8 x 14 – 23 µm. 

Basidia 4 – 5 x 28 – 40 µm, 4-cellulata, helicoidea. 

Sterigmata 20 – 30 µm. Sporae hyalinae, ellipticae, 

curvatae, mucronatae, 3.4 – 4 x 13 – 21 µm 

[Couch]. Holotype: Couch 9179 from 

Mecklenburg County, Virginia, July 1927, at 

NCU. Isotype at BPI 268663. 

S. fisso-lobatum Lloyd [243]. Based on 

Hymenochaete fissolobata P. Henn. (Hedwigia 43:


Vol. 4, Nº 1 

179. 1904) and distributed as # 41 in the exsiccatae 

of Mycotheca Brasiliensis. The correct citation is: 

Septobasidium fisso-lobatum (P. Henn.) Lloyd. 

S. flavo-brunneum Boedijn & B. A. Steinm. [248]. 

Isotype: Java, Tjikadjang, on Erythrina, Feb. 1930, 

Prillwitz coll. at NCU! 

S. foliicolum Torrend [293]. Included by Couch in 

his “incompletely known species” as he had had no 

access to the type material. 

* S. formosense Couch, sp. nov. [239]. Basidiocarpus 

resupinatus, tenuis, indefinitus, brunneus. 

Subiculum roseo-bubalinus, indeterminatus, in 

sect. transv. 10 – 25 µm crassum, ex hyphis pallidissime 

brunneis, 3 – 5 µm latis, probasidiis, 

basidiis et conidiophoris. Stratum superum 400 – 

500 µm crassum. Probasidia sphaerica, 9.6 – 11. 7 

µm, hyalina, plerumque pedicellata, in maturitate 

unilateraliter crassitunicata, evacuantia. Basidia 

curvata vel helicoidea, 4-cellulata, 5.4 – 7 x 33 – 

42 µm. Conidiophora ex hyphis brunneis elongatis, 

20 – 50 x 200 – 500 µm, 6-12-cellulatis. Sporae ut 

videtur nulla [Couch]. Holotype: Formosa, Trail to 

Rengichi from Gojyo, on Citrus sp., March 13, 

1928, R. K. Beattie coll. at BPI 268667. Isotype at 

NCU!. 

* S. fragile Couch, sp. nov. [196]. Basidiocarpus 

resupinatus, sepiaceus, minute pulveraceus, sub 

lente minute alveolatus, in sect transv. 40 – 150 (- 

700) µm crassus, regione marginale indeterminata. 

Subiculum indeterminatum, diffusum; contextum 

ex hyphis 4.2 – 6.7 µm latis, laxitextum. 

Probasidia sub- vel sphaerica 10 – 12.6 µm diam., 

hyalina. Basidia cylindrica, 5. 2 – 6.3 x 40 – 50 

µm, aliquando pauciter flexa. Sporae ? [Couch]. 

Holotype: Jamaica, Blue Mts., Hardware Gap, on 

deciduous tree, July 1926, J. N. Couch 8517 at 

NCU! 

S. fumigatum Burt [180]. Holotype: S. Carolina, 

Gourdin, on Acer rubrum, Nov. 4, 1914, C. J. 

Humphrey 2588 at NCU! Isotype 268701 at BPI. 

Paratype: Alabama, near Montgomery, R.P. Burke 

50, May 1916 at BPI 268693. 

* S. fusco-cinereum Bresadola ex Couch, sp. nov. 

[83]. Basidiocarpus resupinatus, griseobrunneus- 

brunneus, regione marginale determinata, albidula. 

Basidioma e partibus tribus composita. 

Probasidia ut videtur nulla. Basidia longe cylindrica, 

8 – 11.7 x 37 – 50 µm, 1-septata (2-cellulata). 

Sterigmata lateralia, 46 µm longa. Sporae 6.7 x 25 

µm, proximaliter ampliatae, distaliter acute flexae 

[Couch]. Holotype: Brazil, São Leopoldo, Rick, 

Oct.1905 at FH as FH-Pat. 1102, isotype at NCU! 

S. fusco-violaceum Bres. [224]. Isotypes: Poland, on 

Salix cinerea at NCU!, FH as FH-Pat. 1071. 

* S. fuscum Couch, sp. nov. [191]. See J. Elisha 


resupinatus, brunneus vel fuscus, regione marginale 

indeterminata. Basidioma in sect. transv. 

125 – 200 µm crassa, e partibus tribus composita. 

Subiculum ex hyphis 4.2 – 5.8 µm latis. Contextum 

ex hyphis erectis. Stratum superum 60 – 85 µm 

crassum, ex hyphis 2.2 – 3.5 µm latis, ramificatis 

apicem curvatis. Probasidia sphaerica vel subsphaerica, 

10 – 12.6 µm. Basidia cylindrica, 4.2 – 

5.4 x 35 – 40 µm, 4-cellulata. Sterigmata 4 – 5 µm 

longa. Sporae 4 – 5 x 6 – 13.4 µm, ellipticae, curvatae 

[Couch]. Holotype: Mississippi, near 

Pascagoula, Couch 9192, at FLAS F7657. Isotypes 

at BPI 268674 and 268675. 

S. galzinii Bourdot [160]. Possibly a fragment of 

holotype: France, l’Aveyron, on Calluna vulgaris 

and Erica cinerea, Galzin, June 9, 1913 and May 

12, 1914, Bourdot’s herbarium no. 20212 and 

20221 at NCU! FH as FH-Pat. 1072. 

S. gossypinum Pat. [234]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1073. Isotype: China, Cho Ganh, Tonkin, on 

branches of liana, M. Petelot 715, Nov.1923 at 

NCU! 

* S. grandispinosum Couch, sp. nov. [154]. 

Basidiocarpus resupinatus, compactus, ex albo ad 

avellaneum vel brunneum, regione marginale 

determinata, fimbriata vel pectinata, superficiei 

spinifera (spinae dispersae vel aggregatae, 1 x 1 – 

1.5 mm, acutae) vel laevi tunc spinae nullae. 

Basidioma in sect. transv. 1 – 1.5 mm crassa, aliquando 

stratosa. Subiculum album incipientem, 

non continuum, ex rhizomorphis et hyphis 

mycelialibus reptantis deinde erectis constatum. 

Contextum ex hyphis hyalinis vel brunneis, pluri-

Abril 2004 

ramificatis, crassitunicatis, 4 – 4.2 µm latis, intricatis. 

Stratum superum ex hyphis 2.8 – 3.5 µm 

latis, dense compactis, pluriramificatis. Probasidia 

plerumque subglobosa, 12.6 – 18 µm diam. 

Basidia longe cylindrica, 5.4 – 7.5 x 54 – 68 µm, 

recta sed leviter flexa, 4-cellulata, plerumque pedicellata 

ad probasidia adnexa. Sterigmata lateralia, 

brevia. Sporae unilateraliter applanatae vel concavae, 

e medio incrassatae, 4.5 – 5.4 x 20 – 22 µm 

[Couch]. Holotype: S. Africa, Transvaal, near 

Pretoria, on Gymnosporia buxifolia, L. Kresfelder, 

March 1925 at NCU! 

* S. grandisporum Couch, sp. nov. [79]. See J. Elisha 


resupinatus, atrobrunneus, regione marginale 

determinata. Basidioma in sect. transv. ca. 2.5 mm 

crassa e partibus duobus composita. Subiculum 

nullum. Contextum ex rhizomorphis intricatis et 

hyphis pluriramificatis, septatis, efibulatis, 3 – 4.2 

µm latis. Hymenium 150 – 250 µm crassum ex 

hyphis hyalinis vel pallide brunneis, ramificatis, 3 

– 3.5 µm latis. Probasidia subsphaerica, 12 – 17 

µm. Basidia longe cylindrica, distaliter inflata, 8.4 

– 9.6 x 46 – 56 µm. Sterigmata una, apicale, 8 – 22 

µm. Sporae ellipticae, 12.6 – 17 x 29 – 32 µm, 

irregulariter septatae, hyalinae deinde pallide 

brunneae [Couch]. Holotype: S. Carolina, about 30 

m N of Charleston, on Cornus florida, Else Couch 

coll. U.N.C. no. 8465 at NCU!, isotypes at FLAS 

F7658, at BPI 268676 & 268677. 

S. granulosum Sydow [121]. Isotype: New Guinea, 

Sepik Expedition, Felspize, coll. C. Ledermann 

12983 at NCU ex B, and see S. alatum Lloyd. 

* S. griseopurpureum Couch, sp. nov. [105]. Fungus 

resupinatus, griseo-atropurpureus, cum soredia 

lichenes viridi tinctus, superficiei multifissurata, 

margine determinata. Basidioma in sect. transv. 

200 – 550 µm crassa, e partibus tribus composita: 

Subiculum ex hyphis atrobrunneis, crassitunicatis, 

plerumque septatis, 3 – 6.3 µm latis, laxitextum. 

Contextum ca. 85 µm crassum, ex hyphis erectis, 

3.5 – 6.3 µm latis, laxitextum. Probasidia 

numerosa, e latere et apice hypharum generativarum 

exorientia, plerumque aggregata, sphaerica, 

9.5 – 11.7 µm diam., hyalina deinde fuscatis, 

minutissime aspere tunicatis, in maturitate evac- 


uantia basidium formantia. Basidia clavata, 2-cellulata, 

recta nonnumquam curvata, 6 – 6.3 x 30 – 

33 µm, distaliter incrassata. Sterigmata ca. 2.8 x 

8.4 µm. Sporae hyalinae, 4.2 – 5 x 15.9 – 18 µm, 

pauce curvatae [Couch]. Holotype: S. Africa, P. 

van der Bijl in Lloyd collection 39226, at NCU! 

S. griseum Couch, sp. nov. [98]. Basidiocarpus 

resupinatus, extensus, in sicco pallide murinus, 

superficiei minute et copiose pustulata, minute 

granulosa vel pulverata, quasi laevi, raro fissurata, 

margine indeterminata. Basidioma 1- 1.3 mm 

crassa, e partibus tribus constata. Subiculum ex 

hyphis 2 – 4.2 µm latis, atrobrunneis, rhizomorphis 

anthracinis et hyphis arachnoideis gracilioris; 

contextum columnatum ex hyphis erectis, atropurpureis, 

apici ramificatis stratum superum formantia. 

Stratum superum 80 – 170 µm crassum, ex 

hyphis brunneis ad apicem hyalinis, incrustatis. 

Probasidia 10 – 12 µm diam. Basidia clavata, distaliter 

incrassata, 2-cellulata, ca. 8 x 25 µm 

[Couch]. Holotype: Costa Rica, Limón, Finca 

Castilla, July 25, 1936, C. W. Dodge & V. F. 

Georger Dodge 9351 at NCU! 

* S. hakgalanum Couch & Petch, sp. nov. [142]. 

Basidiocarpus resupinatus, rufobrunneis vel sepiaceus, 

superficiei sinuosa, margine bubalinovinacea, 

determinata. Basidioma in sect. transv. 

700 – 1000 µm crassa e partibus tribus composita. 

Subiculum 160 – 220 µm crassum, ex hyphis 4 – 

4.2 µm latis, brunneis, dense compactis textum. 

Contextum ex hyphis hyalinis, ca. 3 µm latis, erectis, 

non ramificatis, nonnumquam incrustatis; 

columnae 40 – 90 x 250 – 450 µm ex hyphis brunneis, 

4.2 – 5 µm latis, compactis, intricatis constatum. 

Stratum superum 60 – 160 µm, 4.2 – 5 µm 

latis, intricatis, densitextum. Hymenium indistinctum. 

Probasidia subglobosa vel globosa, 15 – 20 

µm diam., evacuantia et basidium elongatum formantia. 

Basidia longe cylindrica, 5.8 – 7.1 x 68 – 

84 µm, 4-cellulata, cellula apicale acuta. 

Sterigmata 5 – 6 µm longa. Sporae hyalinae, 4.2 – 

5 x 25 – 27 µm, ellipticae, leviter flexae [Couch]. 

Holotype: Ceylon, Hakgala, April 1919, T. Petch 

coll., at NCU! 

S. henningsii Pat. ex P. Henn. in Warburg [243]. 

Holotype at FH as FH-Pat. 1074. Isotype: Java,


Vol. 4, Nº 1 

Gedeh, about 2000 m elevation, July 17, 1898, E. 

Nyman coll. ex B, at NCU! Couch indicated the 

location of the type as Berlin but, as with several 

other such cases, the specimens have not been 

returned and remain at NCU. 

* S. hesleri Couch, sp. nov. [117]. See J. Elisha 


resupinatus, pallide vinaceo-griseus deinde tabacinus, 

superficiei praecipue floccosa, regione marginale 

determinata vel indeterminata aliquot 

columnata vel inflato-fimbriata. Basidioma in sect. 

transv. 250 – 400 µm e partibus tribus instructa. 

Subiculum 12 – 20 µm crassum, ex hyphis erectis 

(ca. 40 µm altis), incrustatis, hyalinis, raro ramificatis. 

Columnae 30 – 140 µm crassae, 100 – 190 

µm altae. Stratum superum 40 – 100 µm crassum. 

Hymenium 30 – 40 µm crassum ex hyphis subhyalinis 

praecipue dichotomo-furcatis, 2.8 – 3.2 

µm latis. Stratum superum 40 – 100 µm crassum. 

Sub-hymenium ex hyphis brunneis, ramificatis, 3 – 

4.2 µm latis. Probasidia ut videtur nulla. Basidia 

helicoidea, 4.5 – 5.8 x 32 – 38 µm, 4-cellulata. 

Sterigmata angusta. Sporae 5 – 6.3 x 13 – 18 µm 

[Couch]. Holotype: Near Gatlinburg, Tenn., on 

Carpinus caroliniana, Hesler coll., at FLAS 

F7659, isotypes at BPI 268680 and 269368. 

* S. heveae Couch, sp. nov. 149]. Basidiocarpus 

resupinatus, atrobrunneus vel atrogriseus vel 

anthracinus. Superficiei sinuosa, fissurata, perforata, 

tuberculata, fragilis, regione marginale ex 

inconspicue rhizomorphis. Basidioma in sect. 

transv. 0.5. – 2 mm crassa e partibus duabus composita: 

Stratum inferum ex rhizomorphis mycelialibus, 

ramificatis, nigris, horizontalis deinde erectis 

columnatis, hyphis rectis, compactitextis, ramificatis, 

3.7 – 5.4 µm latis. Stratum superum 100 – 

600 µm crassum, stratosum, ex hyphis flexis, brunneis, 

apicaliter hyalinis, constatum. Probasidia 

ovoidea, 9. 4 – 12.6 x 12.6 – 16.8 µm, in maturitate 

evacuantia basidium cylindricum, 6 – 6.3 x 29 – 38 

µm. 4-cellulatum formantia. Sterigmata 4.2 – 4.8 

µm. Sporae 3.6 – 4.2 x 12.6 – 13.4 µm, ellipticae, 

curvatae [Couch]. Holotype: Brazil, Rio Jurá, on 

Hevea brasiliensis, no.2729 ex B, at NCU! 

S. humile Raciborski [228]. Holotype: Java, near 

base of Mt. Pangerango on western side above 

Tjitwruk, on underside of leaves of Tetranthera sp. 

Raciborski coll. at NCU! This specimen is annotated 

“for photo” and is undoubtedly authentic 

Raciborski material. Two other collections were 

received from v. Höhnel. See also Oberwinkler 

(1989). 

* S. indigophorum Couch, sp. nov. [282]. Basidiocarpus 

resupinatus, indigus vel atrocyaneus, 

regione marginale minutissime fimbriata. 

Basidioma in sect. transv. 330 – 550 µm crassa, e 

partibus tribus constata: Subiculum tenue, 16 – 20 

µm crassum, ex hyphis albis et atris, 3.8 µm latis. 

Columnae aliquot curtae, 90 – 150 µm crassae, 

75 µm altae. Stratum superum 190 – 365 µm crassum, 

ex hyphis atrobrunneis, laxitextis, 3.8 – 4 µm, 

septatis. Hymenium non visum [Couch]. Holotype: 

Japan, Shino Mura, Tamba Kyotofu, on Prunus, 

Nov. 15, 1927, R. K. Beattie coll. at NCU! Isotype 

at BPI 268681. 

* S. irregulare Couch, sp. nov. [219]. Basidiocarpus 

resupinatus, brunneus, superficiei maxime variabili. 

Basidioma 400 – 900 µm crassa e partibus 

tribus composita: subiculum 25 – 126 µm crassum, 

ex rhizomorphis et hyphis brunneis, sed hyphis 

raro quasi hyalinis, 3 –4.2 µm latis, pluriseptatis. 

Columnae numerosae, aggregatae, vel nullae, 

plerumque 25 – 80 µm crassae, ex hyphis atrobrunneis, 

3.6 – 4.2 µm latis, intricatis, pluriramificatis. 

Hymenium e paraphysibus vel probasidiis 

brunneis, sphaericis vel clavatis. Probasidia hyalina 

vel brunnea, obovoidea, 8 – 9.2 x 12 – 16.8 µm, 

maturitate evacuantia basidium elongatum 

curvum, 5 x 34 µm, 4-cellulatum formantia. Spora 

elliptica, flexa, 4 x 16 µm unam visam. Holotype: 

Africa, Uganda, Mukono Hill, altitude 4300’, Nov. 

1914, R. Dummer coll at K, isotype at NCU! 

S. jamaicaense Burt [81]. Holotype at FH as FH- 

Burt 17. Isotype: Jamaica, Jim Crow Peak, 5500’ 

April, L. M. Underwood coll. 2439 at NCU! 

* S. lacunosum Couch, sp. nov. [291]. Basidiocarpus 

resupinatus, in maturitate brunneus, iuventute 

schistaceus, superficiei regulariter foveolatodepressa, 

reticulata, margine determinata. 

Basidioma 400 – 600 µm crassa, strata distincta 

nulla, ex hyphis brunneis vel hyalinis, 2.1 – 4.2 µm

Abril 2004 

latis, plerumque 3.5 – 4 µm, septatis, pauce ramificatis. 

Probasidia ovoidea vel obovoidea, 10.5 x 18 

µm. Basidia, sporae ut videtur nulla [Couch]. 

Holotype: Costa Rica, San José, Villas del río 

Torres, Feb. 26, 1911, A. Tonduz coll., at NCU! 

An isotype possibly at FH since A.Tonduz was 

sending material to Patouillard. 

* S. lagerheimii Couch, sp. nov. [229]. Basidiocarpus 

resupinatus, avellaneus deinde brunneus, superficiei 

ab initio subvelutina-hirsuta tunc sub lente 

granulosa, plurifissurata, margine indistincte 

determinata. Basidioma 250 – 650 µm crassa e 

partibus duobus vel tribus composita. Subiculum 

40 – 100 µm crassum ex hyphis brunneis vel hyalinis, 

3 – 4 µm latis, laxitextum. Contextum medullosum 

120 – 450 µm crassum, laxitextum, ex 

hyphis hyalinis vel brunneis, 3 – 4.6 µm latis. 

Columnae curtae, crassae, irregulariter dispersae 

vel agreggatae tunc anastomosans. Probasidia 9.6 

– 12. 6 µm, sphaerica, germinantia basidium helicoideum, 

5.2 – 5.8 x 33.6 – 42 µm, 4-cellulatum 

formantia. Sterigmata longa. Sporae non visae 

[Couch]. Holotype: Ecuador, near Quito, Jan. 31, 

1892, Lagerheim coll. at NCU! One of Couch’s 

specimens is annotated by him as “? S. pedicellatum 

(Schw.) Pat.”. In 1892, de Lagerheim collected 

large series of S. pedicellatum in the vicinity of 

Cotocollao, near Quito. It is quite possible that the 

minor differences that distinguish these two 

species are due to age, growth and microenvironmental 

conditions. 

S. langloisii Pat. [98]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1075. Isotype: Louisiana, near St Martinsville, on 

Crataegus arborescens, May 11, 1899, Langlois 

2995 at NCU! 

S. lanatum Chow. [294]. Included in Couch’s 

“incompletely known species” as he had had no 

access to the type material. 

S. lanosum Pat.[264]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1076. Isotype: China, Cho Gahn, Tonkin, on Citrus 

decumans, Feb. 19, 1922, M. Duport coll., at NCU! 

S. laxum Pat. [203]. Holotype at FH as FH-Pat. 1077. 

Isotype: Philippines, near Mt. Maquiling, Los 

Baños, on Astronia cummingiana, Nemesio 

Catalan coll. at NCU! 


* S. lepidosaphis Couch, sp. nov. [146]. See J. Elisha 


resupinatus, theobrominus vel rufobrunneus, 

superficiei spinae numerosae instructa, regione 

marginale determinata. Basidioma e duobus, raro 

tribus, partibus composita. Subiculum tenuissimum, 

10 – 20 µm crassum ex hyphis 3 – 6.3 µm 

latis, septatis, efibulatis sed anastomosantibus. 

Columnae spinosae ca. 75 µm crassae ex hyphis 

4.2 – 5 µm latis, rectis, septatis, efibulatis, raro 

ramificatis. Probasidia sphaerica, 8.4 – 12.6 µm, 

hyalina, tenuitunicata. Basidia cylindrica aliquando 

curva, 4.2 – 6.3 x 31.5 – 46 µm, 4-cellulata. 

Sterigmata 4.2 µm longa. Sporae 3.2 – 4.2 x 10.9 – 

13.8 µm, ellipticae valde curvatae [Couch]. 

Holotype: Brazil, Minas Gerais, Viçosa, A. S. 

Müller 43 at NCU! Isotypes at BPI 268749 and 

268750. 

S. leprieurii (Mont.) Pat. [174]. Material from 

Guyana in the Patouillard Herbarium at FH (FH- 

Pat. 1078) is an isotype. The holotype is at PC. See 

Ryvarden (1982) for discussion of the type. A portion 

of this material is also at NCU! Again, Couch 

erroneously misplaces the locality “near San José” 

to the island of Guadeloupe. Condert’s collection 

is from “Guadalupe, near San José, Costa Rica” 

(cf. S. curtisii). 

* S. leprosum Couch, sp. nov. [162]. See J. Elisha 


resupinatus, albus, regione marginale indeterminata. 

Basidioma in sect. transv. tenuissima, 60 – 

130 µm crassa, indistincte stratosa. Subiculum 12 

– 20 µm crassum, ex hyphis 4.2 µm latis, septatis, 

efibulatis, hyalinis. Hymenium ex hyphis 2.1 – 2.5 

µm latis, tenuitunicatis probasidiis et basidiis. 

Probasidia globosa, 10 – 11 x 10 – 13.8 µm, hyalina. 

Basidia recta, cylindrica, 6 – 6.5 x 50 – 56 µm, 

4-cellulata. Sterigmata curta. Sporae albidae, 

elliptico-curvatae, 4.2 – 5 x 12.6 – 15 µm [Couch]. 

Holotype: Chapel Hill, NC, Couch coll. at BPI 

269387. Isotype at BPI 268780. 

S. leucostemum (Berk. & Br.) Pat. [203]. Holotype at 

FH as FH-Pat. 1079. Isotype: Ceylon, Central 

Province, Feb. 1868, Thwaites coll. 551at NCU! 

annotated as “from Pat. Herb. ex Kew”.


Vol. 4, Nº 1 

S. lichenicolum (Berk. & Br.) Petch [250]. Isotype: 

Ceylon, Peradeniya, Dec. 1868, Thwaites 1026 at 

NCU! 

* S. lilacinoalbum Couch, sp. nov. [114]. See J. 

Elisha Mitchell Sci. Soc. 51: 56. 1935. Basidiocarpus 

resupinatus, maculam magnam formans. 

Basidioma in iuventute alba deinde pallidissime 

vinacea, senectute fumigata vel brunnea, superficiei 

laevi, sub lente minute granulosa, maturitate 

irregulariter fissurata, regione marginale vegetativa 

alba, determinata. Basidioma in sect. transv. 

360 – 430 µm crassa e partibus tribus constructa. 

Subiculum 60 – 80 µm crassum ex hyphis brunneis, 

compactis textis hyphisque erectis, hyalinis, 

ramificatis, incrustatis. Stratum medium columnatum. 

Columnae 35 – 150 µm latae, 210 – 250 

µm altae ex hyphis 3 – 4.2 µm latis, septatis, 

septo constrictis, efibulatis. Hymenium 60 –100 

µm crassum. Probasidia nulla. Basidia helicoidea, 

4.2 – 5 x 25 – 35 µm. Sterigmata longe 

apiculata. Sporae albae, elliptico-curvatae, 3 – 4 

x 10 – 17 µm, 1-3-septatae [Couch]. Holotype: 

Near Highlands, NC, E.R. Couch 9064. 

Paratypes: NC, Laurel Hill on Hicoria, Couch 

9843; NC, Chapel Hill, Couch 9843 at BPI 

268782 and 234396, respectively. 

S. lilacinum Burt [176]. Holotype at FH as FH-Burt 

28. Isotype: Trinidad, Port of Spain, Maraval 

Valley, Thaxter coll. at NCU! 

* S. linderi Couch, sp. nov. [104]. Basidiocarpus 

resupinatus, albidus vel brunneus, superficiei laevi 

aliquando minute fibrillosa, margine indeterminata. 

Basidioma tenue, raro 100 µm crassa, strata 

distincte nulla. Contextum ex hyphis compactis, 

intricatis, hyalinis vel olivaceis, septatis, ramificatis, 

3 – 5 µm latis constatum. Probasidia globosa, 

11 – 14.5 µm diam., laeve vel minute asperula, 

1-plures-aggregata, plerumque pedicellata, 

pedicellum 1-2-cellulatum, germinantia basidium 

longe cylindricum, 5. 8 – 6.5 x 34 – 42 µm (quando 

2-cellulatum), 5 – 5.8 x 52 – 63 µm si 3-4-cellulatum. 

Sterigmata conica, unica vel duplex. 

Sterigmata furcata. Sporae 5 – 6.7 x 18.4 – 21.4 

µm, maiora ex basidiis 2-cellulatis [Couch]. 

Holotype: Massachusetts, near Pembroke, on Pinus 

rigida, Apr. 11, 1937, D. H. Linder coll at NCU! 


* S. macadamiae Couch, sp. nov. [230]. Basidiocarpus 

resupinatus, roseo-bubalinus, avellaneus vel brunneus, 

superficiei in iuventute laevi tunc fissurata, 

margine superiore pauce fimbriata, inferiore 

inconspicue columnata. Basidioma in sect. transv. 

230 – 420 µm, e partibus tribus composita. 

Subiculum tenue, ex hyphis 3.8 µm late. Columnae 

umbellatae, 40 – 60 µm altae, ex hyphis 3 – 4.2 µm 

latis. Hymenium 50 –150 µm crassum, hyphis 

hyalinis vel pallide brunneis, septatis, ramificatis, 

apicaliter sinuosis, 2.5 – 3.5 µm latis. Probasidia 

sphaerica, 10.5 – 18 µm. Basidia 6.7 – 8 x 27 – 37 

µm, subcircinata. Sterigmata 6 – 8 µm. Sporae 

ellipticae, curvatae, 4.2 – 5.4 x 15.9 – 22.2 µm 

[Couch]. Holotype: Australia, Queensland, on 

Macadamia ternifolia, Oct. 19, 1933, W. Pollard 

2943 at NCU! 

S. maquilingianum Sydow [288]. Holotype: 

Philippines, Prov. Laguna, near Los Baños, Mt. 

Makiling, on Astronia sp., Feb. 1914, C. F. Baker 

coll. no. 2808 with photograph at NCU! from B. 

The specific epithet in Couch is “makilingianum” 

but the original spelling by Sydow (Ann. Mycol. 

1917: 170) is “maquilingianum” as recorded by 

Saccardo (Syll. Fung. 23: 566. 1925). 

S. mariani (Bres. in Sacc.) Bres. [134]. Isotype: Italy, 

near Rome, on Pyrus communis, 1902, Mariani 

coll. at NCU! This widely used name should be 

correctly cited as S. mariani (Bres. ex Sacc.) Bres. 

as the publication of Notae Mycologicae ( Ann. 

Mycol. 1: 24. 1903) was authored by Saccardo and 

starts with: “ 1. Septobasidium Mariani Bres. in 

litt., Hypochnus Michelianus Cald. var. quercinus 

Sacc. olim” Only one of the specimens listed by 

Saccardo, collected by Mariani near Rome, corresponds 

to Bresadola’s species, not formally 

described until 1905 (Ann. Mycol. 3: 164. 1905), 

the others are S. michelianum (Cald.) Pat. 

* S. mariani (Bres. ex Sacc.) Bres. var. japonicum 

Couch, var. nov. [137]. Basidiocarpus resupinatus, 

albidulus, gossypinus. Subiculum ex hyphis compactis, 

brunneis. Columnae numerosissimae, ex 

hyphis 3 – 4 m latis, ramificatis [Couch]. Holotype: 

Japan, Sendai, on Styrax japonica, coll. A.

Abril 2004 

Yasuda in Lloyd Collection 39231 at NCU. Couch 

wrote: “the correct position of this fungus will 

have to remain doubtful until the probasidial and 

basidial stages can be found”. 

S. merrillii Bres. [202]. Holotype (or a fragment of 

it?): Philippines, Luzon, Benguet, on Strobilanthus 

cincinalis, Merrill 6668, May 1909, received from 

B is at NCU! 

S. mexicanum Sydow [231]. Holotype: Mexico, on 

Cupressus sp., Reiche 46 at NCU! ex B. 

S. michelianum (Caldesi) Pat. [194]. Isotype: Italy, 

on Laurus nobilis, Caldesi 66, at NCU! and cf. S. 

mariani (Bres. ex Sacc.) Bres. 

S. minutulum H. & P. Sydow [200]. 

* S. molle Couch, sp. nov. [266]. Basidiocarpus 

resupinatus, siccus, russus, regione marginale 

indeterminata. Basidioma ca. 1 mm crassa, non 

stratificata. Contextum laxum ex hyphis pallide 

brunneis vel hyalinis, 4 – 6. 3 µm latis, ramificatis. 

crassiseptatis, hyphis vetustis crassitunicatis, aliquandum 

gelatinosis. Conidia ca. 8 µm crassa. 

Probasidia sphaerica, 18 – 23.2 µm, pallide vel 

atrobrunnea, superficiei pustulosa. Basidia, sporae 

non visi [Couch]. Holotype: Philippines, Laguna, 

Agricultural College, on Piper sp., Sept. 25, 1933, 

Domingo Altamirano 47, at NCU! 

S. molliusculum H. & P. Sydow [283]. Isotype: 

Philippines, Agusan, Mindanao, Cabadbaran, Mt. 

Urdantea, on Litsea cassiaefolia, Aug. 1912, 

Elmer coll., “isotype no. 13417 in Sydow Herb.” 

at NCU! 

* S. muelleri Couch, sp. nov. [171]. Basidiocarpus 

resupinatus, nicotianus vel griseobrunneus, albide 

variegatus, superficiei sub lente lunulato-porata, 

margine albida, determinata, minute plicato-fimbriata. 

Basidioma 400 - 600 µm crassa e partibus 

duobus disposita: subiculum 35 – 50 µm crassum. 

Columnae curtae, dispersae. Contextum ex hyphis 

3.4 – 3.8 µm latis, hyalinis vel brunneis, laxis sed 

partialiter pseudoparenchymatosis. Probasidia 

subglobosa, 16 x 21 µm. Basidia cylindrica, 6.7 x 

42 µm, 4-cellulata [Couch]. Holotype: Brazil, 

Viçosa, Minas Gerais, A. S. Müller 683 at NCU! 

Isotype at CUP. Couch suggests this taxon is a 


hybrid involving S. burtii. Dykstra (1974) has 

established through ultrastructural comparisons 

that hybridization may be possible between S. 

schweinitzii and S. pseudopedicellatum, as stated 

by Couch (p.114). 

S. murinum (Berk. & Br.) Pat. [237] based on 

Corticium murinum Berk. & Br. but never published 

by Patouillard and later replaced by S. murinum 

(Berk. & Br.) Petch (Ann. R. Bot. Garden 

Peradeniya IX: 298. 1925), which is the correct 

name. Holotype: Ceylon, Peradeniya, Thwaites 32, 

at PDA. Isotype at NCU! 

* S. myrsinae Couch, sp. nov. [273]. Basidiocarpus 

resupinatus, albidulus bubalino-maculatus vel 

bubalinus, superficiei laevi, pauce fissurata vel 

sinuosa, minute alveolata, tacto cum vellum, margine 

valde determinata. Basidioma e partibus 

tribus composita; subiculum regione marginale 

compacta, 20 – 40 µm crassa. Contextum 1 – 2 mm 

crassum, in sectione alveolatum. Columnae 16 – 

80 µm crassae, ex hyphis 3.8 – 4 µm latis, compactis, 

septatis, apicaliter tectum papyraceum formantia. 

Stratum superum 50 – 80 µm crassum. 

Probasidia, basidia et sporae non visa [Couch]. 

Holotype: Brazil, São Leopoldo, Rio Grande do 

Sul, Rick in Fungi Austro-Americani #157, as S. 

albidum Pat. at NCU!. Paratypes: Brazil, R. 

Grande do Sul, Rick, UNC 10321 and 10427, both 

on Myrsine, at NCU! 

* S. natalense Couch, sp. nov. [118]. Basidiocarpus 

resupinatus, papyraceus, argillaceus aliquandum 

glandaceus, superficiei sublaevi sed pauce corrugata, 

minute fissurata, margine determinata. 

Basidioma 250 – 500 µm crassa e partibus tribus 

constata. Subiculum membranaceum vel 

papyraceum ex hyphis albidis. Columnae sparsae, 

40 – 50 x 100 – 120 µm. Stratum superum 100 – 

300 µm crassum in senectute materia amorpha, 

hyalina, obtectum. Probasidia nulla. Basidia e latere 

hypharum generativarum exorientia, irregulariter 

flexi vel sigmoidea, 4-cellulata. Sporae nullae 

[Couch]. Holotype: S. Africa, Natal, P. Maritzburg, 

on Prunus domestica, June 21, 1923, J. H. 

Spencer coll. at NCU! 

S. neglectum Boedijn & B. A. Steinm. [233].

LANKESTERIANA 

88 Vol. 4, Nº 1 

Holotype at BO. Isotype: Java, Tjibodas, April 

1930, F. W. Went coll. at NCU! 

S. nodulosum Pat. [177]. Holotype at FH as FH-Pat. 

1087. Isotype: China, Tonkin, Cho Ganh, on bamboo, 

Duport 209, Feb. 1919, at NCU! 

S. obscurum Boedijn & B.A. Steinm. [140]. Isotype: 

Java, Priangan, Tjibodas, Oct. 1929, Boedijn 69, at 

NCU! 

* S. pachydermum Couch, sp. nov. [141]. 

Basidiocarpus resupinatus, tabacinus, superficiei 

quasi laevi vel velutina, sed partialiter rugulosa, 

minute scrobiculata, margine determinata, aliquantum 

strigosa. Basidioma 3 – 5 mm crassa. 

Subiculum atrum, compactissimum, 60 – (150) - 

200 µm crassum, ex hyphis 4 – 5 µm latis. 

Contextum irregulariter columnatum, columnis 

ramificatis, obscuris, vel laxitextum, ex hyphis 3 – 

(6.7) – 8.4 µm latis, crassitunicatis, erectis, 

pauciter ramificatis. Hymenium supra contextum, 

60 – 100 µm crassum, ex hyphis compactatis, intricatis, 

ramificatis, apicaliter circinatis. Probasidia 

globosa vel subglobosa, 15 – 18 µm, frequentiter 

agreggata, germinantia basidium elongatum formantia. 

Basidia recta, cylindrica, 7.8 – 8.4 x 42 – 

50 µm, 4-cellulata. Sterigmata ca. 3 µm longa. 

Sporae elliptico-flexae, 4.6 – 6.3 x 18 – 23 µm 

[Couch]. Holotype: Burma, Mawkmai, on bamboo 

(Dendrocalamus strictus), W. A. Robertson coll. at 

NCU! 

* S. pallidum Couch, sp. nov. [253]. Basidiocarpus 

resupinatus, bubalinus, superficiei laevi, margine 

determinata, sub lente minutissime fimbriata. 

Basidioma in sectione ca. 500 µm crassa, e partibus 

tribus composita. Subiculum 25 40 µm crassum 

albidulum vel bubalinus. Columnae 40 – 80 x 

84 µm, ex hyphis 3 – 4.2 µm, brunneis, septatis. 

Stratum superum 300 – 400 µm crassum, ex hyphis 

3 – 4.2 µm latis, hymenium albidulum, 40 – 60 µm 

crassum, ex hyphis hyalinis, tenuitunicatis, pluriramificatis, 

irregulariter flexis. Probasidia nulla. 

Basidia e latere hypharum exorientia, 7 – 8.4 x 29 

– 34 µm, 4-cellulata, distaliter incrassata, 

plerumque pauciter flexa. Sterigmata longa, 

plerumque basidio longiora. Sporae ellipticae, 

flexae, transverse septatae, 8- cellulatae, 4 – 4.6 x 

19 – 22 µm [Couch]. Holotype: Brazil, São 

Lourenço, Minas Gerais, Dec. 1936, on Pyrus 

communis, N. Azevedo coll. at NCU! 

S. pannosum (E. Fries) Bres. [235]. Holotype: 

Mexico, Liebman coll., indicated to be at UPS. 

S. patouillardii Burt [85]. Holotype at FH as FH-Burt 

20. Isotype: Louisiana, St. Martinsville, A. B. 

Langlois 3005 at NCU! 

S. paulense P. Henn. [265]. The holotype “Brazil, S. 

Paulo, Alto da Servia” is indicated to be at B, but a 

specimen, possibly an isotype is at NCU! 

* S. peckii Couch, sp. nov. [274]. See J. Elisha 


resupinatus, perennis, russus vel fulvus vel avellaneus, 

regione marginale determinata. Basidioma 

in sect. transv. e partibus tribus composita. 

Subiculum indistinctum, sparsum, ex hyphis hyalinis 

3 µm latis. Columnae sparsae, curtissimae, ex 

hyphis pallide brunneis 3.8 – 4 µm latis. Stratum 

superum irregulariter incompletum. Hymenium ex 

hyphis erectis, 3.8 – 4 µm latis. Probasidia, 

basidia ut videtur nulla [Couch]. Holotype: New 

York, Indian Lake, on Alnus incana, Chas. H. 

Peck, is in the Patouillard collection at FH labelled 

as S. pedicellatum Pat. fide Couch. Isotype: at 

NCU! 

S. pedicellatum (Berk. & Curt.) Pat. [215]. Isotype: 

Cuba, C. Wright 798 at NCU! and other herbaria 

where Wright’s materials were distributed as K 

and FH. Donk (1958) presents a strong argument 

for the rejection of this name which he substitutes 

for Septobasidium couchii Donk [Taxon 7: 197. 

1958; S. couchii Donk (Bull. Bot. Gardens 

Buitenzorg III, 17: 158. 1941, nomen nudum)]. 

* S. perforatum Couch, sp. nov. [290]. Basidiocarpus 

resupinatus, lignobrunneus vel sepiaceus, superficiei 

laevi sed multiforaminifera, margine albidula, 

determinata. Basidioma 400 – 650 µm crassa, e 

partibus tribus composita: subiculum 63 – 125 µm 

crassum, compactum, ex hyphis hyalinis vel brunneis, 

tenuitunicatis, 3 – 4 µm latis, subiculum partialiter 

ab contextum non distinctum. Contextum 

300 – 420 crassum, densitextum, ex hyphis erectis, 

multiramificatis, ca. 3 µm latis, pallide brunneis

Abril 2004 

vel hyalinis constatum. Hymenium 30 – 50 µm 

crassum, distinctis simum, ex hyphis hyalinis, 2.2 – 

3 µm latis, intricatis. Probasidia, basidia, sporae 

ut videtur nulla [Couch]. Holotype: Brazil, São 

Leopoldo, Rio Grande do Sul, Rick coll., in NCU 

no. 10395, at NCU! 

* S. petchii Couch, sp. nov. [126]. Basidiocarpus 

resupinatus, hypophyllus, tenuis, albus sed in sicco 

bubalinus, superficiei irregulariter verrucosa, verrucae 

numerosae, margine indistincte determinata. 

Basidioma ex hyphis cruciato-ramificatis constata. 

Hymenium inter verrucis tenuis simum. Hyphidia e 

latere hypharum generativarum exorientia. 

Probasidia nulla. Basidia helicoidea, 3. 8 – 4.2 x 

17 – 23 µm, 4-cellulata. Sporae ellipticae, leviter 

flexae, 3 – 4 x 10.5 – 11.7 µm [Couch]. Holotype: 

Ceylon, Nuwara Eliya, on Lasianthus sp., Sept. 11, 

1927, T. Petch coll., at NCU! 

* S. philippinense Couch, sp. nov. [247]. Fungus 

resupinatus, cinnamomeus, lignobrunneus, superficiei 

laevi sed minutissime fissurata, margine cremea, 

determinata. Basidioma in sect. transv. 0.4 – 

0.7 mm crassa, e partibus tribus composita: 

subiculum 30 – 50 µm crassum, ex hyphis dense 

compactis, 3.8 – 4.4 µm latis. Contextum 300 – 

450 µm crassum, ex hyphis 3.8 – 4.4 µm latis, septatis; 

hymenium 60 – 110 µm crassum, valde contexto 

distinctum, ex hyphis 4 µm latis, erectis, 

pluriseptatis. Probasidia nulla. Basidia primo subglobosa 

tunc elongata, recta vel leviter flexa, 

clavata, 9 – 11.7 x 33 – 48 µm, 4-cellulata. Sporae 

4 – 6.7 x 21 – 27 µm, ellipticae, flexae [Couch]. 

Holotype: Philippines, Laguna, Los Baños, on 

Citrus hybrid, O. A. Reinking 8917, Feb. 16, 1920, 

determined by Patouillard as S. albidum var. 

philippineum at FH. Isotype at NCU! 

S. pilosum Boedijn & B.A. Steinm. [261]. Isotype: 

Java, Plantation of Podong Gedé, on Thea, 

Steinmann coll, May 1930 at NCU! 

S. pinicola Snell [178]. Location of type unknown to 

us. 

* S. piperis P. Henn. ex Couch, sp. nov. [226]. 

Basidiocarpus resupinatus, bubalinus, superficiei 

laevi sed partialiter et pauce fissurata. Basidioma 

in sect. trasv. e partibus tribus composita: 


Subiculum tenuissimum membranaceum, 12 – 42 

µm crassum, ex hyphis 3 – 4 µm latis, brunneis et 

hyphis hyalinis flexis, incrustatis. Columnae 

aliquotae, 20 – 95 x 90 – 115 µm, apicaliter rami 

ficantia stratum superum formantia. Hymenium 

quasi hyalinum, 25-36 µm crassum, ex hyphis 3 – 

3.8 µm, ramificatis, crystallis minutis incrustatis. 

Probasidia sphaerica, 9.2 – 9.8 µm diam. Basidia 

irregulariter curvata vel flexa, 5.6 – 6.4 x 42 – 54 

µm. Sterigmata et sporae ut videtur nulla [Couch]. 

Holotype: Java, Linburg (?), on Piper nigrum, 

Aug. 23, 1901, Zimmermann coll. at NCU! 

‡ S. polypodii Couch [296]. J. Elisha Mitchell Sci. 

Soc. 44: 255. 1929. This taxon corresponds to 

Platycarpa polypodii (Couch) Couch (Mycologia 

41: 428. 1949) best placed among parasitic taxa of 

Auriculariales s.l., like Herpobasidium and allied 

genera (Oberwinkler & Bandoni 1984). 

S. proliferum Boedijn & B.A. Steinm. [232]. Isotype: 

Java, Priangan, April 1930, Boedijn 594 & 596 at 

NCU! 

S. protractum H. & P. Sydow [91]. Isotype: 

Southeast Africa, Transvaal, Pretoria, Plat River, 

on Acacia nigrescens var. pallens, J. P. Pienaar, 

Jan. 31, 1912, at NCU! 

* S . p r u n o p h i l u m C o u c h , s p . n o v . [ 2 8 0 ] . 

Basidiocarpus resupinatus, sepiaceus, superficiei 

laevi, raro squamo-flocculenta, tactu velutina, 

margine determinata, sub lente minute fimbriata. 

Basidioma in sectione 450 – 700 µm crassa e 4partibus 

composita: Subiculum ca. 40 µm crassum, 

ex hyphis compactis, obscuris, 3.6 – 4 µm latis. 

Columnae 85 – 130 µm crassae, 100 µm altae, ex 

hyphis 3.8 – 5 µm latis. Contextum 300 – 400 µm 

crassum, ex hyphis 3. 8 – 5 µm latis, dense adpressis, 

leviter ramificatis. Hymenium superum, 40 – 

80 µm, ex hyphis brunneis, erectis, ramificatis, 

plerumque parallelis, rectis vel flexis, septatis, 3.6 

- 4 µm latis. Probasidia, basidia nulla [Couch]. 

Holotype: Japan, Shino Mura, Tamba Kyotofu, on 

Prunus, R. Kent Beattie 154 at NCU! Paratype: 

Japan, Shino Mura, Beattie 151 at NCU! Isotypes 

at BPI 268896 and 268897. 

S. pseudopedicellatum Burt [132]. Holotype at BPI 

269407. Isotype at FH as FH-Burt 22.


Vol. 4, Nº 1 

S. pteruloides (Mont.) Pat. [270]. Holotype at PC. 

* S. punctatum Couch, sp. nov. [240]. Basidiocarpus 

resupinatus, roseo-bubalinus vel schistaceus, 

superficiei in iuventute reticulata, senectute laevi, 

fissurata et minute punctata, margine indeterminata. 

Basidioma 120 – 260 µm crassa, omnino compacta, 

e partibus duobus constata. Contextum 100 

– 200 µm crassum, ex hyphis 3.8 – 4.2 µm latis, 

violaceo-brunneis, septatis, dense compactis, intricatis 

textum. Hymenium 40 – 60 µm, valde compactum, 

ex hyphis hyalinis, tenuitunicatis, ramificatis, 

probasidiis et basidiis. Probasidia subglobosa-globosa, 

7.1 – 10.5 µm diam., e maturitate 

evacuantia basidium irregulariter curvatum formantia. 

Basidium 4.2 – 7.1 x 25 – 29 µm. 

Haustoria fusoidea [Couch]. H o l o t y p e : 

Philippines, Laguna, Los Baños, on Citrus sp., Oct. 

1920, O.A. Reinking coll. at NCU! 

‡ S. purpureum Couch [80]. J. Elisha Mitchell Sci. 

Soc. 44: 255. 1929. The holotype is not at NCU. 

Isotype: Jamaica, Cinchona, Couch 146, at BPI 

268898. 

S. reikingii Pat. ex Couch, sp. nov. [119]. 

Basidiocarpus resupinatus, murinus vel albus vel 

cinnamomeus, superficiei laevi, papyracei, iuventute 

minute pulverati in maturitate fissurati, nitens. 

Basidioma e partibus tribus composita: subiculum, 

contextum columnatum, stratum superum. 

Probasidia nulla. Basidia irregulariter curvata, 

5.4 – 6.7 x 35 – 50 µm, 4-cellulata. Sterigmata 

longa, 2.5 x 10.5 vel longiora. Sporae ellipticocurvatae, 

4 – 4.2 x 13.4 – 16 µm [Couch]. 

Holotype: Philippines, Los Baños, Feb. 16, 1920, 

Reinking 8848, in the Patouillard collection at FH 

as FH-Pat. 1095. Couch suggests this may be a 

hybrid involving S. bogoriense. 

S. retiforme (Berk. & Curt.) Pat. [90]. Holotype at 

FH as FH-Pat. 1094. 

S. rhabarbarinum (Mont.) Bres. [122]. Location of 

type unknown to us. 

* S. rickii Couch, sp. nov. [275]. Basidiocarpus 

resupinatus, argillaceus vel spadiceus vel roseo 

bubalinus, superficiei laevi, quasi glabra, pars 

minute lanata, crustosa, margine abrupte determi- 

nata. Basidioma 2.5 mm crassa, e 5-partibus composita: 

1- subiculum album, 30 – 85 µm crassum, 

ex hyphis 3.8 – 5 µm latis, laxis, pseudoparenchymatosis; 

2- ex hyphis fasciculatis, fascicula ramificans 

formantia; 3- masa spongiosa 1 – 1.5 mm 

crassa, compacta ex hyphis 4.6 – 5.2 µm latis, laxe 

intricatis, hyalinis, in matrix brunnea incrustatis. 

4- Columnae numerosae (4 – 8 /mm quad.), 40 – 

160 x 100 µm, ex hyphis ca. 4 µm latis, hyalinis vel 

brunneis, laxitextis; 5- Stratum superum 160 – 250 

µm crassum, ex hyphis 4 – 4.2 µm latis, hyalinis 

vel pallide brunneis hymenium formantia. 

Hymenium 60 – 80 µm crassum, ex hyphis dense 

compactis, erectis, apicaliter 1-3-cellulis ovoideis 

vel subglobosis coronatis. Probasidia nulla sed 

series moniliformis cellulis ampuloso-campanulatis, 

brunneis adsunt. Basidia non visa [Couch]. 

Holotype: Brazil, São Leopoldo, Rick coll. in 

Lloyd collection no. 46400, at NCU!. This gathering 

distributed by Rick as #157 of Fungi-Amer. 

determined as S. albidum Pat. consisted of two 

species, S. myrsinae Couch and S. rickii. 

* S. rimulosum Petch & Couch, sp. nov. [102]. 

Basidiocarpus resupinatus, in iuventute schistaceus 

– violaceo-griseus, in sicco avellaneus, 

superficiei conspicue et regulariter polygono-fissurata-reticulata, 

margine sinuosa, determinata 

vel indistincta. Basidioma 200-(300) – 600 µm 

crassa e partibus duobus composita. Subiculum 30 

– 60 µm crassum, ex hyphis 3.6 – 4 µm latis, brunneis, 

intricatis textum. Contextum 100 – 200 µm 

crassum, ex hyphis 3.4 – 3. 8 µm latis, brunneis, 

nonnumquam dichotomo-ramificatis, circinatis, 

aliquantum aspere tunicatis. Hymenium 60 – 200 

µm, ex hyphis densissime compactis, basi brunneis 

apici hyalinis. Probasidia subsphaerica-sphaerica, 

6.7 – 8. 4 µm diam., evacuantia et basidium elongatum 

formantia. Basidia 5 – 5.4 x 21 – 27 µm, 2cellulata. 

Sterigmata longa. Sporae 4 x 9.6 – 11.5 

µm, ellipticae, curvatae [Couch]. Holotype: 

Ceylon, Pambangama, May 1918, Petch 5759 at 

NCU! 

S. robustum Boedijn & B.A. Steinm. [278]. Location 

of type unknown to us. 

S. rubiginosum Pat. [218]. Holotype at FH, FH-Pat. 

1091.

Abril 2004 

* S. rugulosum Couch, sp. nov. [129]. See J. Elisha 


resupinatus olivaceo-fulvus vel sepiaceus superficiei 

raro laevi sed minute reticulata, atro punctata, 

regione marginale abrupte determinata 

saepissime minute fibrillosa. Basidioma in sect. 

transv. 60 – 250 µm crassa, compacta, e partibus 

duobus subdistincte composita. Subiculum ex 

hyphis brunneis, fragilis, 4 – 10.5 µm latis, septatis 

in septo constrictis. Hymenium superum ex 

hyphis incrustatis, circinatis. Probasidia nulla. 

Basidia cylindrica, 4 – 5 x 35 – 42 µm, torta vel 

cochleata, 4-cellulata. Sterigmata longa. Sporae 

ellipticae, curvatae, 3.9 – 4.6 x 12.6 – 18.9 µm, 

1-3-septatis [Couch]. Holotype: Jacksonboro, 

SC, Couch coll. 8472, at NCU. Isotypes at BPI 

269066 and 269067. 

* S. sabalis Couch, sp. nov. [93] See J. Elisha 


resupinatus, vinaceo-bubalinus vel fuscus, superficiei 

laevi quasi nitenti, regione marginale determinata. 

Basidioma in sect. transv. ad 1 mm crassa e 

partibus quatuor composita. Subiculum tenuis ca. 

50 µm crassum, columnatum, columnis 80 – 125 

µm altis. Stratum medium, imperfectum, incompletum, 

80 – 125 µm crassum. Columnae inconspicuae, 

ca. 12 – 20 / mm quadr. 20 – 70 x 275 – 

375 µm, apice ramificatis tectum (stratum superum 

dicto 500 – 600 µm crassum) formantia, ex hyphis 

4.2 µm latis, septatis, efibulatis. Hymenium superum, 

ca. 120 µm crassum ex hyphis pluriramificatis 

deinde intricatis, probasidiis, basidiis. Probasidia 

sphaerica vel obovoidea, 9.6 – 12.6 x 15 – 22 µm, 

maturitate germinantia et evacuantia basidium formantia. 

Basidia 8.4 – 9.6 x 12 – 50 µm, generaliter 

e parte media vel apice inflata, 1-septata. 

Sterigmata 30 µm longa. Sporae 5.4 – 8.4 x 19 – 27 

µm, distaliter tortae apicem recurvatae, transverse 

et longitudinaliter pluriseptatae [Couch]. Holotype: 

Louisiana, near Baton Rouge, on leaves and petioles 

of Sabal, C.A. Brown 317 at FLAS F21226, 

isotypes at BPI 269076 and 269077. 

* S. sabalis-minoris Couch, sp. nov. [188]. See J. 

Elisha Mitchell Sci. Soc. 51: 19. 1935. Basidiocarpus 

resupinatus, pulvinatus, minutus (3 – 10 

mm quad.), griseo-avellaneus, superficiei spon- 


giosa, regione marginale determinata. Basidioma 

in sect. transv. ca. 1 mm crassa, non stratificata. 

Contextum ex hyphis 3.6 – 4 µm latis. Hymenium 

ex contexto indistinctum ex hyphis pauce ramificatis, 

probasidiis, basidiis. Probasidia sphaerica 

vel obovoidea, 8.4 – 10.5 x 10 – 12 µm, praecipue 

cellula basale ampullosa instructa. Basidia cylindrica, 

4 – 4.6 x 33 – 42 µm, 4-cellulata. Sterigmata 

4 – 5 µm. Sporae ellipticae, tortae, ut videtur nonseptatae 

[Couch]. Holotype: Florida, 15 m north 

of St. Augustine, Bomhard coll. at FLAS F7673, 

isotype at BPI 269078. Couch’s original spelling 

of the specific epithet was sabal-minor, changed 

here to the correct genitive form. 

* S. scabiosum Couch & Petch, sp. nov. [286]. 

Basidiocarpus resupinatus, epiphyllicus vel 

hypophyllicus, pallide tabacinus vel sepiaceus. 

Subiculum inconspicuum, indeterminatum, ex 

hyphis 2.8 – 3.5 µm latis, fuscis vel hyalinis, 

pseudorhizomatis radialialiter ramificatis ex 

hyphis 6 – 8 µm latis, lateraliter intertextis et 

hyphis erectis, comatis, domatia formantia. 

Hymenium nullum. [Couch]. Holotype: Ceylon, 

Peradeniya, 1910, on Codiaeum variegatum, T. 

Petch 3168 at NCU! 

* S . s c h i z o s t a c h y i C o u c h , s p . n o v . [ 1 9 2 ] . 

Basidiocarpus resupinatus, nicotianus vel ligneobrunneus, 

superficiei laevi, irregulariter punctata, 

pauce fissurata, margine indeterminata vel indistincte 

indeterminata. Basidioma ca. 600 µm, e 

partibus tribus composita. Subiculum valde compactum, 

40 – 80 µm crassum, ex hyphis contexto 

angustioris, dense compactis quasi pseudoparenchymatosis. 

Contextum non columnatum, 60 

– 440 µm crassum, ex hyphis 4.2 – 7 µm latis, compactis, 

crassitunicatis, pauce septatis, atrorufibrunneis. 

Hymenium 60 – 210 µm crassum, ex 

hyphis erectis convallatis, contexto aequantis. 

Probasidia sphaerica, 12.6 – 16.8 µm diam. 

Basidia una visa ca. 6.7 x 40 – 50 µm, 4-cellulata 

[Couch]. Holotype: Philippines, Laguna, 

Agricultural College, Dec. 1933, O. Ocfemia 50 at 

CAHUP. Isotype under NCU no.10409, is not at 

Chapel Hill as indicated by Couch. 

S. schweinitzii Burt [112]. The holotype, “North 

Carolina, Schweinitz,” is apparently lost. A neo-


Vol. 4, Nº 1 

type is here proposed: Welcome, North Carolina, 

Roper leg. 28 Oct. 1928 on Fraxinus americana at 

BPI 269080, an isoneotype at NCU no. 8370. 

* S. sclerotioides Couch, sp. nov. [84]. Basidiocarpus 

resupinatus, fuscogriseus vel pallide brunneus, textura 

firma, superficiei sinuosa, irregulariter punctulata, 

foveo-fisso-cribrosa, margine determinata. 

Basidioma 200 – 800 µm crassa, e 2-3-partibus 

composita. Subiculum 60 – 580 µm crassum, ex 

hyphis 3 – 5.4 µm latis, atrobrunneis, dense compactis, 

crassitunicatis, pseudopulvinus stromaticus 

formantia. Columnae 30 – 60 x 200 – 250 µm, ex 

hyphis 4.8 µm latis vel columnae nullae. 

Hymenium ex subiculo si basidioma e partibus 

duobus constata si tribus supra columnae. 

Hymenium 84 – 130 µm crassum, ex hyphis ca. 3.8 

µm latis, ramificatis, sinuosis, erectis, apicaliter 

hyalinis et incrustatis. Probasidia nulla. Basidia 

9.6 – 12 x 25 – 30 µm, 2-cellulata, plerumque e 

medio leviter constricta, cellula apicale longiora, 

basaliter cellulae vacua pedicellata. Sterigmata 

basidium aequantia. Sporae distaliter valde curvatae, 

7 – 8.4 x 23 – 25 µm [Couch]. Holotype: 

Brazil, Bom Fin, Rio Jurá, Minas Gerais, Nov 

1900, no. 2733 ex Berlin, as S. velutinum at NCU! 

S. scopiforme Pat. [269]. Holotype: Brazil, Prov. São 

Paulo, Campinhas, Noack 792 at FH under FH-Pat. 

1098. Isotype at NCU!. This is also the type specimen 

of subgenus Noackia Pat. (Ann. Mycol. V: 

364. 1907). Apart from the substrate (bamboo) and 

characteristics of the subiculum, S. scopiforme is 

hardly distinct from S. pteruloides and somewhat 

akin to S. clelandii. 

* S. separans Couch, sp. nov. [185]. Basidiocarpus 

resupinatus, iuventute glandulaceus tunc theobrominus, 

crystallis minutis obtectus, comatus et in 

senectute quasi glabrus, vel superficiei sinuosa, 

rhizomato-venulosa, reticulata, margine determinata. 

Basidioma in sect. transv. 2.5 mm crassa, e 

partibus duobus composita. Subiculum nullum vel 

incipiens. Contextum ex hyphis 4 – 4.6 µm latis, 

irregulariter et remote inflatis, tabacinis vel violaceo-brunneis, 

septatis, septo incrassatis. 

Columnae nulla sed aliquantum fascicula 

hypharum. Hymenium ca. 20 µm crassum, in maturitatem 

contexto separans. Probasidia sphaerica 

vel subsphaerica, 10.5 – 13.8 µm, tenuitunicata vel 

crassitunicata, hyalina, pedicellata vel epedicellata. 

Basidia longe cylindrica, 5 – 6.3 x 46 – 71 µm, 

4-cellulata, plerumque caduca. Sterigmata delicata, 

6 – 8 µm longa. Sporae 3.8 – 4.2 x 15 – 21 µm, 

leviter flexae, 3-septatae [Couch]. Holotype: 

Brazil, Rio Grande do Sul, São Leopoldo, on 

Citrus aurantium, Nov. 9, 1931, Rick collection 16 

under NCU no. 9365, at NCU! The herbarium 

sheet also contains Rick’s collections 8, 12 and 15, 

from same locality and host plant, here designated 

as isotypes. 

S. septobasidioides (P. Henn.) Lloyd [254]. Based on 

Hymenochaete septobasidioides P. Henn. 

(Hedwigia 43: 172. 1904) it was combined under 

Septobasidium by Lloyd (Myc. Notes 5: 722. 

1917). S. papyraceum Couch (J. Elisha Mitchell 

Soc. 44: 249. 1929) is a later synonym. 

* S. simmondsii Couch, sp. nov. [279]. Basidiocarpus 

resupinatus, albidus vel cremeus, superficiei laevi, 

tactu vellum, sicca, opaca, margine determinata. 

Basidioma 1 – 1.6 mm crassa, e partibus tribus 

instructa. Subiculum inconspicuum, albidum. 

Columnae nullae vel sparsae, 0.1 – 0.2 mm altae. 

Stratum superum ex hyphis 3.6 – 4.2 µm latis, 

hyalinis, crassitunicatis, ramificatis, raro septatis. 

Hymenium 65 – 120 µm crassum, ex hyphis 3 – 3.8 

µm latis, hyalinis. Probasidia sphaerica ca. 12 µm 

ampla, si obovoidea 12 – 13.8 x 12 – 16.8 µm, 

hyalina, tenuitunicata. Basidia nulla [Couch]. 

Holotype: Australia, Queensland, Yarraman, on 

Milletia megasperma, Jan. 9, 1934, ex Herb. Plant 

Pathology Brisbane no. 3431 at NCU! 

* S. sinense Couch, sp. nov. [221]. Basidiocarpus 

resupinatus, bubalinus vel cinnamomeus, superficiei 

nodulosa vel quasi laevi, margine determinata. 

Basidioma 600 – 800 µm crassa, e centro e 5-partibus 

composita. 1- subiculum 35 – 80 µm crassum, 

ex hyphis 3.8 – 4 µm latis, hyalinis vel pallide fuscis; 

2- fascicula hypharum ca. 80 µm altae ex 

hyphis brunneis vel quasi hyalinis, 4 – 5.4 µm 

latis; 3- fascicula superiora fascia horizontale, 20 

– 30 µm crassa, compacta, atrobrunnea vel nigra 

formantia; 4- contextum 200 – 600 µm crassum, 

hyphis erectis, 4 – 5.4 µm latis, imbricatis, compactis, 

5- hymenium superum 65 – 100 µm cras-

Abril 2004 

sum, ex hyphis 2 – 3 µm latis, tenuitunicatis, erectis, 

hyalinis, sinuosis, ramificatis, anastomosans. 

Probasidia e latere hypharum generativarum 

exorientia. Probasidia ab initio hyalina, sphaerica 

tunc obovoidea 12.6 – 14.7 x 14. 7 – 23 µm, unilateraliter 

crassitunicata. Basidia 8 – 10.5 x 42 – 50 

µm, leviter flexa vel subcircinata, 4-cellulata, 

maturitate brunnea. Sterigmata longa. Sporae ut 

videtur nulla. Conidia hyalina, penicillo-concatenatis, 

minute asperula, hymenio et strato supero 

adsunt [Couch]. Holotype: China, Tang nen, 

Kwang Si, Reinking 4986, May 17, 1919, on 

Citrus limonia, at NCU! 

* S. sinuosum Couch, sp. nov. [100]. See J. Elisha 


resupinatus, maculam magnam formans, violaceogriseus 

aliquot atropunctatus, superficiei sinuosocostata, 

regione marginale tenue, albida, laxe 

fibrosa. Basidioma in sect. transv. 400 – 600 µm 

crassa e partibus tribus aliquantum indistincte 

composita. Subiculum tenuissimum ca. 20 µm 

crassum, ex hyphis 2.2 µm latis, versicoloris 

hyalinis, atromurinis vel purpureo-brunneis. 

Contextum subiculo concolorum, 300 – 400 µm 

crassum, ex hyphis 2 – 2.4 µm latis, laxis, fere 

dichotomo-ramificatis, intricatis, efibulatis sed sub 

lente verrucosis, punctatis vel spinosis. Hymenium 

praecipue hyalinum, 50 – 120 µm crassum ex 

hyphis dense compactis, contortis apice circinatis. 

Probasidia subsphaerica vel sphaerica, 5.8 – 7.2 

µm, maturitate germinantia basidium formantia. 

Basidium 3.8 – 4.4 x 20 – 32 µm, 1-septatum. 

Sterigmata 18 – 25 µm longa. Sporae laeves, 

allantoideae, 4 – 5 x 11.5 – 16.8 µm [Couch]. 

Holotype: North Carolina, near Magnolia, on 

Cornus florida, Jan. 1928, A.C. Mathews 8301 at 

NCU. 

S. siparium (Berk. & A.M. Curtis) Bres. [179]. 

Location of type unknown to us. 

S. spiniferum Burt [271]. Isotype: Chile, Concepción, 

dry scrub, Nov. 1905, Thaxter coll. at NCU! 

S. spongium (Berk. & Curt.) Pat. [187]. Holotype at 

FH as FH-Pat. 1099. 

* S. stevensonii Couch, sp. nov. [186]. Basidiocarpus 

resupinatus, maculam magnam formans, brunneus, 


purpureo-tinctus ad sordide roseo vel atrobrunneus, 

superficiei iuventute gossypina maturitate 

minute granulosa, compacta, regione marginale 

indeterminata. Basidioma in sect. transv. 300 – 

600 (raro 1000) µm crassa e partibus tribus constructa. 

Subiculum ca. 300 µm crassum, ex (1) 

hyphis reptantis, 4 – 5 µm latis, brunneis, laxitextis, 

et (2) hyphis erectis, hyalinis vel ambarinis, 4 

µm latis, ramificatis, contextum formans. 

Hymenium 40 – 65 µm crassum, ex hyphis 2.8 – 

3.5 µm latis, erectis vel pauce curvatis, ramificatis, 

tenuitunicatis, probasidiis et basidiis instructum. 

Probasidia sphaerica, 9.6 – 12.6 µm, hyalina 

maturitate persistentia. Basidia cylindrica, distaliter 

inflata, 6.3 – 7.6 x 37 – 50 µm, 4-cellulata. 

Sterigmata 7 – 10 µm longa. Sporae 4.2 – 5.4 x 13.4 

– 16.8 µm, ellipticae, tortae [Couch]. Holotype: 

Puerto Rico, Bayamon, on Citrus sp., J. A. 

Stevenson coll., Oct. 1, 1917 at NCU! The original 

spelling was “stevensoni” changed in accordance 

with the ICBN Art. 60.11 (Greuter et al. 2000). 

S. stratiferum Boedijn & B.A. Steinm. [199]. 

Isotype: Java, Tjisaroea, on Ficus lepicarpa, 

Boedijn 47, July 1930 at NCU! 

* S. stratosum Couch, sp. nov. [96]. Basidiocarpus 

resupinatus, brunneus vel sepiaceus, superficiei 

aspera, margine determinata. Basidioma 1 – 1.5 mm 

crassa, e partibus tribus composita. Subiculum ca. 

700 µm crassum, indistinctum. Columnae tenuissimae, 

ca. 600 µm altae. Hymenium 1- 7- stratificatum, 

unusquisque 30 – 40 µm, ex hyphis ca. 2 µm 

latis, hyalinis, e probasidiis et basidiis. Probasidia 

globosa vel subglobosa, 9.2 – 11.7 x 12 – 17 µm, ab 

initio hyalina tunc brunnescens. Basidia cylindrica, 

recta vel leviter flexa, 6 – 7 x 29 – 36 µm, 2-cellulata, 

caduca. Sporae 5 – 5.4 x 14.7 – 21 µm, ellipticae, 

curvatae [Couch]. Holotype: Brazil, Cochoeira, Aug. 

23, 1923, J. R. Weir coll. on Hevea brasiliensis, at 

BPI 269201. Isotype: Brazil, Cochoeira, Grande 

Manaus, Aug. 23, 1923, J. R. Weir coll., on Hevea 

brasiliensis at NCU! 

S. subcarbonaceum (Berk. & Br.) Couch, comb. nov. 

[197]. Thelephora subcarbonacea Berk. & Br. (J. 

Linn. Soc. London Bot. 14: 64. 1873). Akin to 

Septobasidium arachnoideum (Berk. & Br.) Bres. 

from which it differs in the less compacted growth,


Vol. 4, Nº 1 

the sparsely branched hyphae and straight basidia. 

S. sublilacinum (Ellis & Ev.) Burt [279]. Location of 


S. subolivaceum Sydow [126]. Location of type 

unknown to us. 

S. suffultum (Berk. & Br.) Pat. [144]. Essai Tax. 

Hymén. p. 10, 1900 & Bull. Soc. Myc. Fr. 24: 2, 

1908. Based on Thelephora suffulta Berk. & Br. (J. 

Linn. Soc. Bot. 14: 63. 1873) also combined by 

Bresadola as Septobasidium (Ann. Mycol. 14: 

142. 1909). Holotype: Thwaites 669, July 1868, 

from Ceylon at FH under FH-Pat.1100. 

* S. sydowii Couch, sp. nov. [236]. See J. Elisha 


resupinatus, castaneus vel atrans, superficiei conspicue 

fissurata, regione marginale determinata, 

minute perforata. Basidioma in sect. transv. 1 – 

1.5 mm crassa, compacta, firma, e partibus duobus 

composita. Contextum stratosum ex hyphis brunneis, 

3.6 – 5 µm latis, raro septatis, efibulatis, 

intricatis, parce ramificatis. Hymenium 90 – 115 

µm crassum, stratosum, ex hyphis dilute brunneis 

vel subhyalinis, 2.8 – 3.5 µm latis. Probasidia subglobosa 

vel ovoidea, 9 – 10.5 x 13 – 15 µm maturitate 

germinantia basidium formantia. Basidia 1cochleata, 

6 – 7 x 30 – 40 µm, 4-cellulata. 

Sterigmata 6 – 10 µm longa. Sporae 3.8 – 4.3 x 

15.5 – 20 µm, ellipticae, curvatae vel sigmoideae, 

3-septatae [Couch]. Holotype: Philippines, 

Sorsogon, on Pterocarpus sp., Elmer coll., NCU 

no.14820 at NCU! 

* S. taxodii Couch, sp. nov. [193]. J. Elisha Mitchell Sci. 

Soc. 51: 48. 1935. Basidiocarpus resupinatus, crustosus, 

tenuissimus, sordide fulvus, superficiei spongiosa 

vel aspera, regione marginale indeterminata. 

Basidioma in sect. transv. 100 – 250 µm crassa, non 

stratificata. Contextum ex hyphis brunneis, 2.1 – 4.2 

µm latis, dense intricatis, septatis, ramificatis, distaliter 

curvatis. Probasidia sphaerica, maturitate germinantia 

basidium formantia. Basidia cochleata, 5 – 6.3 

x 33 – 40 µm, 4-cellulata. Sterigmata 5 – 6 µm longa. 

Sporae dubiae visae [Couch]. Holotype: Louisiana, 

Opelousas, on Taxodium distichum, Apr. 16, 1932, P. 

R. Miller 5 at BPI 269206, a fragment at NCU! 


* S. tenue Couch, sp. nov. [128]. See J. Elisha 


resupinatus, murinus vel griseo-brunneus, sepiaceo-tinctus, 

superficiei laevi praeter minute foveolata, 

regione marginale determinata. Basidioma 

in sect. transv. 100 –225 µm crassa, (generaliter 

ca. 125 µm), non stratificata vel indistincte composita. 

Contextum ex hyphis hyalinis, 3.2 – 4.2 µm 

latis, intricatis, septatis, ramificatis, dense incrustatis, 

circinatis. Probasidia ut videtur nulla sed 

cellula incrassata basidium formantia est. Basidia 

6.3 – 7.5 x 29 – 37(50) µm, cochleata, torta, 4cellulata. 

Sporae (2.5)3.2 – 4.2 x (13)16.8 – 22 

µm, elliptico-curvatae, 4-8-septatae [Couch]. 

Holotype: SC, near Charleston, on Quercus, Couch 

coll. at FLAS F7676, isotypes at BPI 269211 and 

269212. 

S. theae Boedijn & B.A. Steinm. [259]. Present location 

of type unknown to us. 

S. thwaitesii (Berk. & Br.) Pat. [223]. Holotype at FH 

as FH-Pat. 1101. 

S. tigrinum Boedijn & B.A. Steinm. [268]. Isotype: 

Java, on Thea, July 1927, Steinmann coll. at NCU! 

* S . t o m e n t o s u m C o u c h , s p . n o v . [ 2 6 7 ] . 

Basidiocarpus resupinatus, inconspicuus, crustosus, 

brunneus, superficiei sub lente lanata, irregulariter 

et disperse sinuoso-punctulata, margine 

indeterminata. Basidioma in sectione transversali 

tenuissima, –600 µm, e partibus duobus constata. 

Subiculum tenuissimum sed 40 – 100 µm crassum, 

ex hyphis 3 – 3.5 µm latis, compactis, brunneis, et 

hyphis erectis, 3 – 4.2 µm latis, ramificatis, 

plerumque septatis, septo leviter constrictis, supra 

conidia ramificata, cylindrica vel elliptica vel 

elongato-ovata, 4 – 5 x 6.3 – 12.6 µm formantia. 

Probasidia, basidia nulla [Couch]. Holotype: 

Australia, North Queensland, on Citrus sp., July 

1936, ex Herb. Plant Pathology Brisbane no. 4516 

at NCU under herb. no. 10319. 

S. triviale Boedijn & B.A. Steinm. [141]. Location of 


S. tropicale Burt [209]. Holotype: Mexico, on 

Quercus, Pringle coll. June 1915, at BPI 269216. 

S. tuberculatum Boedijn & B.A. Steinm. [291].

Abril 2004 

Location of type unknown to us. 

* S. ugandae Couch, sp. nov. [161]. Basidiocarpus 

resupinatus, cinnamomeus vel fuscus vel ligneobrunneus, 

superficiei laevi vel minute pulverata vel 

distincte punctata, margine abrupte determinata, 

minutissime fimbriata. Basidioma in sect. transv. 

200 – 450 µm crassa, e partibus tribus instructa. 

Subiculum 21 – 84 µm crassum, ex hyphis 3 – 3.8 

µm crassis, septatis, dense imbricatis. Columnae 

60 – 168 x 40 µm ex hyphis erectis, 3.2 – 4 µm 

latis, ambarinis vel hyalinis. Hymenium 40 50 µm 

crassum, ex hyphis 3.2 – 4 µm latis, imbricatis, 

compactis, apicaliter curvatis. Probasidia globosa, 

12.6 – 14 µm, vel ovoidea, 10.5 – 13.4 x 13.8 – 

28.5 µm. Basidia cylindrica, 7.4 – 8.4 x 44 – 54 

µm, apicaliter acuminata, 4-cellulata. Sterigmata 

curta. Sporae 4.2 – 5.4 x 18 – 25.5 µm, ellipticocurvatae 

[Couch]. Holotype: Uganda, on 

Loranthus sp., 1915, T. D. Haitland coll., at NCU! 

S. ussanguense (P. Henn.) Lloyd [208]. Location of 


S. velutinum Pat. [97]. Holotype: Ecuador, Chimbo, 

on Citrus, Lagerheim coll., Aug. 1891, at FH under 

FH-Pat. 1102. 

* S. verrucosum Couch, sp. nov. [ 2 5 7 ] . 

Basidiocarpus resupinatus, verrucosus, atrobrunneus, 

regione vegetativa marginale indeterminata. 

Basidioma duobus partibus composita. Subiculum 

ex hyphis multiseptatis, ramificatis, fuscis. 

Verrucae propre in sect. transv. 2-stratificatae, 

basim pseudoparenchymatosae, 400 – 1000 µm 

crassae, ex hyphis 4 – 6 µm latis, supra hymenium 

formantia. Hymenium 160 – 450 µm crassum, ex 

hyphis 3 – 4.2 µm, pluriseptatis, ramificatis. 

Probasidia nulla. Basidia 5.8 – 6.7 x 20 – 25 µm 4cellulata. 

Sterigmata ut videtur nulla. Sporae 4 – 

4.2 x 16 – 16.8 µm, ellipticae, flexae [Couch]. 

Holotype: California, Riverside, on Quercus agrifolia, 

1915, H. S. Fawcett at NCU! 

* S. westonii Couch, sp. nov. [120]. Basidiocarpus 

resupinatus, lignibrunneus vel pallide vinaceobubalinus, 

superficiei laevi, margine determinata, 

fimbriata. Basidioma 350 – 700 µm crassa, e partibus 

tribus composita. Subiculum tenuis. Columnae 

20 – 40 x 320 – 420 m, ex hyphis 4.2 – 5.4 µm 


brunneis, septatis, efibulatis. Hymenium 35 – 45 

µm crassum. Probasidia nulla. Basidia helicoidea, 

4 – 5 x 30 µm, 3-septata. Sterigmata ut videtur 

nulla. Sporae 3.8 x 15.5 µm, ellipticae, curvatae. 

Conidia elliptica, numerosa [Couch]. Holotype: 

Panamá, Barro Colorado Island, on Aechmea magdalenae, 

Nov. 28, 1928, W. H. Weston coll. at 

NCU! 

ACKNOWLEDGEMENTS. We give thanks to Ms. Vicky 

Wells, Rights and Contracts Manager of the North 

Carolina University Press for researching the files related 

to J. N. Couch’s pre-publication correspondence and 

related matters; to Mrs. Sally Vilas, John Couch’s 

daughter for insights on her father’s work; to John 

McNeill and Robert Mill, Royal Botanic Gardens, 

Edinburgh; Guy Redeuilh, France; Werner Greuter, 

Botanischer Garten u. Museum, Berlin, for invaluable 

comments and opinions on the interpretation of the 

International Code of Botanical Nomenclature; to Mr. 

William Buck for assistance with herbarium materials 

at NCU; to Amy Rossman at BPI, for comments and 

information on specimens under her care. Donald 

Pfister, Farlow Herbarium of Harvard University, provided 

information on Patouillard specimens and excellent 

suggestions on the first draft. We also thank the late 

Rupert C. Barneby for comments and suggestions on 

Latin usage. L. Kisimova-Horovitz, Universität 

Tübingen, aided with some of the old European literature. 

W. Greuter, R. P. Korf and Arthur L. Welden read 

earlier versions of the manuscript and made valuable 

suggestions. 


Boedijn, K. & B. A. Steinmann. 1931. Les espèces des 

genres Helicobasidium et Septobasidium des Indes 

Néerlandaises. Bull. Jard. Bot. Buitenzorg III, 11: 165 – 

219. 

Couch, J. N. 1938. The genus Septobasidium. University 

of North Carolina Press, pl. 1-114, figs. 1-60, 480 p. 

Couch, J.N. 1949. The taxonomy of Septobasidium polypodii 

and S. album. Mycologia 41: 427-441. 

Dykstra, M. J. 1974. Some ultrastructural features in the 

genus Septobasidium. Can. J. Bot. 52: 971 – 972. 

Greuter, W., J. MCNeill, F. Barrie, H. Burdet, V. 

Demoulin, T. Figueiras, D. Nicolson, P. Silva, J. Skog, 

P. Trehane, N. Trurland & D. Hawksworth (eds.). 2000. 

International Code of Botanical Nomenclature (St. 

Louis Code). Regnum Vegetabile 138. 

Holmgren, P.K., N.H. Holmgren & L.C. Barnett. 1990. 

Index herbariorum. Part I. New York Bot. Garden, 693 p.


Vol. 4, Nº 1 

Lalitha, C.R. & Leelavathy, K. M. 1985. A coccid-association 

in Auriculoscypha and its taxonomic significance. 

Myc. Res. 94: 571-572. 

Oberwinkler, F. & Bandoni, R. , 1984. Herpobasidium and 

allied genera. Tr. Brit. Myc. Soc. 83: 639 – 658. 

Oberwinkler, F. 1989. Coccidiodictyon gen.nov., and 

Ordonia, two genera in the Septobasidiales. Opera 

Botanica 100: 185-191. 

Reid, D. A. & Manimohan, P. 1985. Auriculoscypha, a 

new genus of Auriculariales (Basidiomycetes) from 

India. Tr. Brit. Mycol. Soc. 85(3): 532 - 535. 

Ryvarden, L. 1982. Type studies in the Polyporaceae. II. 

Species described by J. F. C. Montagne alone or with 

other authors. Nord. J. Bot. 2: 75 – 84.

LANKESTERIANA 4(1): 97. 2004. 

VALIDATION OF FOUR MALAXIS SPECIES (ORCHIDACEAE) 

In a recent article (Dressler 2003) I had intended to 

publish four new species of Central American 

Malaxis, but I inadvertently omitted the necessary 

Latin diagnoses (although I carefully thanked F. 

Pupulin for his help with the missing Latin diagnoses.) 

I here publish the diagnoses needed to validate 

the species described in the Selbyana paper. The 

pagination in Selbyana 24(2), 2003 is indicated for 

each species after the correspondent name. 

Malaxis brevis Dressler (141) 

Malaxidi hastilabiae (Rchb.f.) Kuntze similis, sed 

flore multo minori, auriculis uncinatis usque ad deltoideis, 

labelli cavitatibus brevissimis dignoscenda. 

Malaxis insperata Dressler (142) 

Floris illis Malaxidis brachyrrhynchote (Rchb.f.) 

Ames similes, sed plantae cormis conicis. 

Malaxis rostratula Dressler (142) 

Flos ille Malaxidis aureae Ames similis, sed labello 

breviore profundiore abrupte rostrato. 

ROBERT L. DRESSLER 

Missouri Botanical Garden; Florida Museum of Natural History; Marie Selby Botanical Gardens 

Mailing address: 21305 NW 86th Ave., Micanopy, Florida 32667, U.S.A. 

ABSTRACT. Names of four species of Malaxis, described as new without a Latin diagnosis in Selbyana 24(2), 

2003, are validated here. 

RESUMEN. Se validan los nombres de cuatro especies de Malaxis descritas como nuevas sin diagnosis latina 

en Selbyana 24(2), 2003. 

KEY WORDS / PALABRAS CLAVE: Orchidaceae, Malaxis, nomenclature. 

Malaxis triangularis Dressler (143) 

A Malaxidi corymbosae (S. Wats.) Kuntze labello 

triangulari acuto recedit. 

Incidentally, if I had checked the proper computer 

file (Dressler 2001), the paper in Selbyana would 

have been entitled "Mesoamerican orchid novelties 

6," though I see no profit in changing the title at this 

late date. 


Dressler, R.L. 2001. Mesoamerican orchid novelties: 4, 

Habenaria. Bol. Inst. Bot. Univ. Guadalajara 7: 93-101. 

Dressler, R.L. 2003. Mesoamerican orchid novelties 4, 

Malaxis. Selbyana 24(2): 141-143.


El 26 de septiembre de 2003 apareció este primer 

volumen, tan esperado durante años, del Manual de 

Plantas de Costa Rica. Es el resultado de más de una 

década de trabajo arduo y constante. En contra de lo 

que algunos afirmaban hace una década, en Costa 

Rica faltaba exploración botánica y herborización. 

Algunas regiones permanecían, y permanecen 

todavía, poco estudiadas sistemáticamente. Un gran 

esfuerzo de campo, herbario y laboratorio esperaba a 

aquéllos que se atrevieron a participar en este proyecto 

y a quienes fueron invitados a contribuir con sus 

conocimientos y su experiencia. Desde 1938, cuando 

Paul C. Standley publicó Flora of Costa Rica, hasta 

inicios de la década de 1970, no existió ningún 

proyecto organizado para actualizar los conocimientos 

sobre la flora de Costa Rica. Posteriormente, ha 

sobresalido el esfuerzo de William C. Burger como 

editor y autor, junto con colaboradores, de Flora 

costaricensis, un proyecto del Field Museum of 

Natural History, en Chicago, EE.UU., que desde 

1971 hasta 2000 ha generado tratamientos de 55 

familias de espermatófitos, publicados en Fieldiana, 

Botany. En el prefacio del Manual se indica claramente 

que su propósito es actualizar y complementar 

la Flora costaricensis, ofreciendo así una muy necesaria 

ayuda para identificar este diverso grupo de 

plantas, en un país reconocido por sus iniciativas en 

conservación y como un sitio de categoría mundial 

para la capacitación de biólogos tropicales (p. xixii). 

El Manual de Plantas de Costa Rica, vol. II, dedicado 

al empresario estadounidense Jack C. Taylor, 

benefactor del Missouri Botanical Garden, es 

bilingüe (español/inglés) entre las p. viii y xviii, con 

una presentación, un prólogo, un prefacio y una 

explicación del plan de la obra, mientras que el resto 

del texto (parte sistemática), desde la p. 1 hasta la 

694, es enteramente en lengua castellana, lo que 

RESEÑAS DE LIBROS 

HAMMEL, BARRY E., MICHAEL H. GRAYUM, CECILIA HERRERA & NELSON ZAMORA (eds.). 2003. Manual de 

Plantas de Costa Rica. Vol. II. Gimnospermas y Monocotiledóneas (Agavaceae – Musaceae). St. Louis, 

Missouri, Missouri Botanical Garden / Instituto Nacional de Biodiversidad / Museo Nacional de Costa Rica. 

xviii + 694 p, con mapas, ilustraciones de Silvia Troyo y otros, fotos en blanco y negro y 8 láminas de fotos 

en colores; pasta dura, forro fino con fotos en colores. 

considero no solamente un esfuerzo loable, por 

cuanto los dos editores principales son de lengua 

inglesa, sino también un modo idóneo de llegar con 

información científica de primera a los biólogos y 

profesionales afines de Costa Rica y Mesoamérica 

que no entienden el inglés. Al principio, algunos 

botánicos costarricenses teníamos el temor de que la 

versión española del texto tuviera muchos errores 

lingüísticos; sin embargo, este primer volumen publicado 

no sólo exhibe una presentación excelente, 

sino también un uso fluido y correcto del español. 

Errores habrá, desde luego; al fin y al cabo, errare 

humanum est. 

La parte sistemática de la obra se inicia con una 

brevísima introducción y una clave de los grupos 

mayores de plantas vasculares [Por cierto, en el 

primer renglón del punto 1 de esta clave (p. 1) debe 

leerse “Plantas que se diseminan o se reproducen 

…”, en lugar de “Plantas que se disimulan …”]. 

Entre las p. 3 y 16 se tratan las Gimnospermas, considerando 

tanto las nativas como las introducidas 

cultivadas. Las Angiospermas ocupan el resto del 

volumen (p. 17-674). En la p. 675 aparece un útil 

índice de nombres comunes; en las p. 677 a 694 un 

índice de nombres científicos. Cada estirpe superior 

y cada familia se ilustran con una foto en blanco y 

negro; la mayoría de familias también con dibujos 

finamente realizados. Uno de los problemas más 

comunes en el desarrollo de la botánica sistemática 

neotropical es una falta crónica de ilustraciones de 

táxones; afortunadamente, los editores del Manual 

han sido conscientes de esto. Después de una clave 

cuidadosamente elaborada de cada grupo, se hace el 

tratamiento de las familias en orden alfabético. De 

cada familia se ofrece mucha información, aunque 

muy resumida como es lógico en una obra de este 

tipo: número de géneros y spp. en el mundo, distribución 

mundial, número de géneros y spp. en


Vol. 4, Nº 1 

Costa Rica, citas de algunas obras importantes, 

descripción general de la familia, que culmina con 

características diagnósticas, seguida por una clave de 

los géneros. Géneros y especies se tratan también en 

orden alfabético, lo que sin duda alguna facilita 

enormemente el uso del Manual. De cada especie 

hallamos datos de publicación, nombres comunes 

“Si logramos que se conozca la historia de nuestra 

orquideología, y los enormes esfuerzos que se han 

hecho a lo largo de los últimos 150 años para conocer 

más sobre nuestra flora, quizás se pueda hacer también 

despertar un interés mayor por la conservación 

de nuestro medio natural”. Con estas palabras Carlos 

Ossenbach Sauter dirige al público un precioso libro, 

tributo inteligente y gustoso a un capítulo menos 

conocido de la historia científica de Costa Rica y de 

sus protagonistas nacionales y extranjeros. 

Por cierto, esta “breve historia” es un doble tributo. 

Tributo a un grupo especialísimo de plantas que se 

reconocen en el mundo como el símbolo de la flora 

tropical y que llevan en sus nombres el recuerdo - a 

menudo desvanecido - de quien las reveló a la ciencia 

y a la humanidad, y tributo a los hombres que 

hicieron posible conocer la enorme diversidad florística 

de uno de los países más ricos en orquídeas en el 

ámbito mundial. 

En poco menos de cien páginas, ricamente 

ilustradas con fotografías y dibujos de hombres y de 

orquídeas, Ossenbach nos guía a través de una historia 

hecha de exploradores y botánicos, jardineros y 

aventureros, amistades y odios, con el fin único de 

revelar un tesoro natural sin igual. 

La breve historia de la orquideología empieza oficialmente 

en 1846, con la visita a Costa Rica del 

danés Oersted, primer explorador de la flora costarricense. 

Enseguida, el autor introduce el tema tal vez 

más novedoso de su libro, el mecanismo de las 

(cuando existen), descripción, distribución, ecología 

y comentarios diversos. 

Será una gran satisfacción que el buen desempeño 

de los editores y los autores del volumen II se manifieste 

también en los próximos volúmenes que saldrán 

a la luz. 

Carlos O. Morales 

OSSENBACH SAUTER, CARLOS. 2004. Breve historia de la orquideología en Costa Rica. San José, Editorial de 

la Universidad de Costa Rica. 97 p., con mapas, ilustraciones de Pilar Casasa y otros, fotos en blanco y 

negro y en colores; pasta suave. 

“pequeñas sociedades” entre recolectores locales y 

botánicos extranjeros, que marcaron las épocas más 

fructíferas de la orquideología en Costa Rica. Endrés 

y Reichenbach filius inauguran la primera de estas 

sociedades, que se desarrollan a través de las relaciones 

entre Alfaro y Pittier, Brenes y Schlechter, 

Valerio y Standley, Lankester y Ames, hasta los años 

recientes con Rafael Lucas Rodríguez y Dressler, 

Mora-Retana y Atwood y las últimas generaciones. 

También se dedican algunos capítulos a las instituciones 

más activas en la orquideología costarricense, 

incluyendo el Jardín Botánico Lankester, el Instituto 

Nacional de Biodiversidad, la Asociación 

Costarricense de Orquideología y las Fundaciones 

Sacro y Lankester. 

La finalidad del libro es declaradamente didáctica, 

una reseña sintética de los personajes principales 

que han hecho historia en el pequeño mundo 

de las orquídeas de Costa Rica. Aún así, el texto 

tiene el gran mérito de presentar una detallada 

cronología de los hechos más relevantes y detalles 

(a veces inéditos) de la vida de los protagonistas y 

de sus relaciones, a menudo acompañados por sus 

retratos fotográficos. 

Como ninguna reseña está completa sin encontrar 

por lo menos un error, el nombre Guarianthe skinneri 

(flor nacional de Costa Rica) es atribuido 

erróneamente, en la página 47, a Dressler & N.H. 

Williams en lugar de Dressler & W.E. Higgins. 

Franco Pupulin

lankesteriana 1 - Index of - Universidad de Costa Rica

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