Hongos de Bogotá D.C. (Colombia). Biota Fúngica (2019)

INFORME #30 COLOMBIA FUNGI 26/6/2019 MACROMICETOS Y LÍQUENES DE BOGOTÁ D.C. XYLARIA Hongos de Colombia

Contribución al Conocimiento de la Biota Fúngica en Ecosistemas de Humedal, Bosques Andinos, Subpáramos y Páramos de Bogotá D.C. Colombia (2018) Teodoro Chivatá Bedoya / teodorot@outlook.es Licenciado en Biología. Universidad Distrital Francisco José de Caldas / Bogotá D.C. Docente Instituto Politécnico Industrial de Telecomunicaciones / Yopal, Casanare XYLARIA hongos de Colombia / Registros de Bogotá D.C.

La infinidad de formas, tamaños, colores, olores, sabores e indiscutible vitalidad del reino fungi en los ecosistemas, ha llamado la atención de diferentes sociedades y disciplinas. Por mucho tiempo, los humanos han establecido complejas relaciones con el fin de interpretar su fisiología, morfología, ecología y evolución, logrando así, el reconocimiento de beneficios reales y potenciales, en campos como la medicina tradicional y occidental, en la industria alimentaria, farmacológica, cosmética y textil. Incluso, su implementación como bioindicadores y biorremediadores, ha promovido una serie de investigaciones que permiten una mayor aproximación a la compleja e interesante biología de los hongos. Este informe, número treinta (30), tiene el objetivo de presentar la Checklist de Macromicetos y Líquenes observados en ecosistemas de Humedal, Bosques Andinos, subpáramos y Páramos de Bogotá D.C.

Figura 1. Macromicetos y líquenes observados en Bogotá D.C. Auricularia delicata, Agaricus endoxanthus, Cyathus olla, Flammulina sp., Herpothallon rubrocinctum, Leratiomyces ceres, Teloschistes hypoglaucus, Trametes villosa, Tremella mesenterica y Xanthoria cf. parietina. Registros realizados por el autor entre el 2016 y 2018.

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Los macromicetos están implicados en procesos de descomposición, transformación y reincorporación de nutrientes en el ecosistema, estableciendose como organismos esenciales en diferentes tipos de ecosistemas. Se ha observado, que propiedades fisicoquímicas del suelo como la permeabilidad, estabilidad, capacidad de retención de agua, nitrificación, alcalinización y meteorización, presentarían serias modificaciones frente a una alteración de la comunidad fúngica (Buckley 2008; García, 2001; Watkinson, 2001). “son fuente inspiradora de mitos, ceremonias ancestrales, delicias gastronómicas y avances biotecnológicos” La riqueza fúngica se ha estimado en 1.5 millones de especies a nivel mundial (Hawksworth, 1997; Hawksworth, 2001). Sin embargo Müeller y Schmit (2007), cuestionan la cifra anterior, al reconsiderar la distribución biogeográfica y niveles de endemismo en este grupo biológico. Dados estos ajustes, se indica que existen aproximadamente 700.000 especies de hongos, donde el 80% corresponde a microhongos (Hawksworth, 2001; Müeller et al., 2007). Al referise unicamente a Macromicetos, Müeller et al. (2007) mencionaron que se han descrito 21.679 especies, estimando entre 53.000 y 110.000 especies (Acosta E. et al, 2014; Müeller et al. 2007). Otros estudios realizados por O’Brien et al. (2005) presentan una estimación global de 3.5 a 5.1 millones de especies de hongos. Según Hibbett et al. (2011) se necesitarían 1.170 años para describir 1.4 millones de hongos basándose en Hawksworth (1991) y de 2.840 a 4.170 años para describir 3.4 a 5 millones de hongos siguiendo el criterio de O’Brien et al. (2005) (Acosta E. et al, 2014).

Figura 2. Amanita muscaria, Artomyces pyxidatus, Clathrus archeri, Geastrum pectinatum, Laetiporus cf. sulphureus, Lentinus tricholoma, Macrolepiota colombiana, Melanophyllum haematospermum, Mycena Sect. Calodontes y Psathyrella cf. candolleana. Registros realizados por el Autor entre el 2016 y 2018.

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Según la checklist de macromicetos de Colombia, realizada por Vasco A. y Franco E. (2013), en el país se han registrado 1.239 especies de macrohongos, de los cuales 181 son ascomicetos y 1058 basidiomicetos, donde la familia Xylariaceae representa la mayor riqueza en el grupo Ascomycota, con 70 especies y los Agaricales (principalmente hongos con lamelas) para el grupo Basidiomycota, con 537 especies; estos datos se plantean tras revisar 130 artículos publicados entre 1930 y 2011 (Franco E. y Uribe, 2000; Franco E. et al. 2010; Vasco A. y Franco E., 2013). Respecto a los líquenes, en el 2008, Sipman et al. publicaron una checklist con 1.444 especies de hongos liquenizados y 109 especies de hongos liquenícolas. Estos autores concluyeron que este tipo de organismos requieren más investigaciones y calcularon que el número final de especies en Colombia puede estar alrededor de 3000 a 4000. Sipman y Aguirre (2016) en el Catálogo de Plantas y Líquenes de Colombia Vol. 1, mencionan 1754 especies de hongos liquenizados (74 familias, 274 géneros, 166 especies endémicas) (Bernal et al., 2016). Las especies que se mencionan en la siguiente Checklist fueron recopiladas principalmente de trabajos realizados por Garcia J., 2008. Torres J., Perez A., Moncada B., Lücking R., 2014. Pardo Y., 2015. Moncada B., Lücking R. y Sipman H.J.M., 2015. Chivatá y Arias, 2018. En este trabajo se recopilaron 354 especies, organizadas en 101 familias. Parmeliaceae (34), Physciaceae (24), Psathyrellaceae (14), Polyporaceae (10), Caliciaceae (10), Agaricaceae (9) y Lobariaceae (10), cuentan con el mayor número de especies, de las cuales se presentan 10 como nuevos registros para Colombia. Los ejemplares se encontraron distribuidos en ecosistema de humedal, bosque andino, subpáramo y páramo de la ciudad.

Nuevos registros de especies y géneros para el País (2016-2018)* Ecosistema de humedal (eh), bosque andino (ba), subpáramo (sbp), páramo (p), sin especificar (se), nuevos registros para el País*, nuevos registros para Bogotá**

Agaricus endoxanthus Berk. & Broome 1871. (eh, ba) Chivatá T., 2018. Bresadolia cf. uda (Jungh.) Audet 2016. (eh) Newman D., 2018. Flaviporus brownii (Humb.) Donk 1960. (eh) Robledo G., 2018. Geastrum pectinatum Pers. 1801. (eh, ba) Chivatá T., 2018. Gymnopilus cf. luteofolius (Peck) Singer., 1951. (eh) Chivatá T., 2018 Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge 2008. (eh, ba) Chivatá T. y Arias C., 2016. Melanophyllum haematospermum (Bull.) Kreisel 1984. (eh) Chivatá T., 2018. Rhytidhysteron cf. neorufulum Thambug. & K.D. Hyde 2016. (eh) Chivatá T., 2018. Rhodocollybia cf. maculata var. scorzonerea (Fr.) Lennox 1979. (eh) Rockefeller A., 2018. Stropharia cf. rugosoannulata Farl. ex Murrill 1922. (eh) Rodriguez J., 2018.

A.

B.

C.

D.

E.

A.

F.

G.

H.

I.

Figura 3. Nuevos registros para Colombia. A. Agaricus endoxanthus; B. Bresadolia uda; C. Flaviporus brownii; D. Geastrum pectinatum; E. Gymnopilus cf. luteofolius; F. Leratiomyces ceres; G. Melanophyllum haematospermum; H. Rhytidhysteron sp.; I. Rhodocollybia cf. maculata. (Registros del autor 2016-2018)

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Agaricus endoxanthus Berk. & Broome 1871(eh, ba). Chivatá T., 2018 Basidioma estipitado, con hábito de crecimiento solitario y gregario, fructifican directamente en el suelo (humícola), cubierto de hojarasca de Aliso (Alnus acuminata) y Sauce Llorón (Salix humboldtiana). Pileo de 6-8 cm de diámetro, plano convexo, levemente umbonado, visto desde arriba con forma circular (orbicular), margen decurvado, borde entero, superficie opaca, seca y sedosa, de color blanco, se caracteriza por una fibrillas grisáceas dispuestas radialmente, presenta una decoloración concéntrica, contexto homogéneo de color blanco, himenio de color rosa en ejemplares inmaduros que luego se oscurece, las lamelas entran en contacto con las adyacentes (densa), unión al estípite libre, poco anchas (delgadas o estrechas), borde liso y entero, lamélulas levemente truncadas. Esporada de color café oscuro. Estípite de 8-12 cm de altura x 0,7 a 1 cm de diámetro, central, cilindrico, bulbo ampliamente desarrollado abrupto y hendido, flexible, hueco, que se torna de color amarillento al realizar el corte, algunos ejemplares presentan rizomorfos. Anillo subapical, permanente, uniforme, colgante, compacto, liso y membranaseo con el borde entero que tiende a plegarse hacia arriba. Presenta olor a fenol. Esporas elipsoidales, sin poro germinal y de color marrón, con un tamaño promedio de 5.1 x 3.1 µm. Registrado en Humedal La Conejera, Córdoba y Juan Amarillo (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm y Quebrada La Vieja (ba), Localidad de Chapinero, altura aproximada de 2700 msnm. Bresadolia cf. uda (Jungh.) Audet 2016 (eh, ba). Newman D., 2018 Basidioma estipitado, poroide, con hábito de crecimiento solitario y gregario, lignícola (fructifican sobre madera en descomposición). Píleo de 3-5 cm de diámetro, visto desde arriba con forma circular (orbicular), superficie del píleo glabra y lisa, de consistencia carnosa y color castaño. Margen del píleo liso y entero, involuto cuando seco. Estípite, cilíndrico, ligeramente engrosado en la base, de 4-6 cm de largo, leñoso y rígido cuando seco, con superficie glabra y lisa, de un tono más claro que el píleo y de forma excéntrica. Himenio blanco amarillento o castaño, con poros circulares a angulares, decurrentes sobre el estípite, 2-3 por mm. Contexto homogéneo y esponjoso. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Flaviporus brownii (Humb.) Donk 1960 (eh). Robledo G., 2018 Basidioma poroide, lignícola, de 6 cm de ancho x 1,2 cm de grosor, pileado e imbricado, superficie dorsal de color amarillo naranja, con lineas concéntricas de color naranja oscuro. Superficie de los poros blanco amarillenta cuando está fresco, más pálido cuando se seca, con 9-11 poros por mm. Basidiosporas elipsoides y lisas, de 2,4 x 2,2 μm. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Geastrum pectinatum Pers. 1801 (eh). Chivatá T., 2018 Basidioma con forma de estrella, crecen solitarios o gregarios, humícola (sobre suelo cubierto de hojarasca), de 5-7 cm de altura por 35 cm de diametro, con 7-8 lacinias delgadas (foliares) y acartonadas de color claro. El saco esporífero (endoperidio) es globoso, de aproximadamente 1,5-2 cm de diámetro, presenta estrías bajo el endoperidio, peristoma prominente. Estípite pequéño. Esporada de color marrón oscuro. Basidiosporas esféricas de color marrón, miden 3-6 µm de diámetro, con la superficie corrugada. Sin sabor y olor distinguible. Al secarse el material se torna rigida, conserva su forma y color. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm y Quebrada La Vieja (ba), Localidad de Chapinero, altura aproximada de 2700 msnm. Gymnopilus cf. luteofolius (Peck) Singer. 1951 (eh). Chivatá T., 2018 Basidioma estipitado, lignícola, principalmente solitario, en ocasiones gregario. Píleo de 5cm de diámetro, plano-convexo, ovoide, cutícula seca y fibrilosa, cubierta de pequeñas escamas sedosas de color rojo violáceo, aplanadas en la superficie, que se agrupan hacia el centro; presenta pequeñas zonas de color verde-azul. Margen incurvado, entero, con zonas de color naranja-marrón (esporas), igualmente sobre el anillo, zonas que luego se oscurecen. Contexto homogéneo de color blanco en el centro y rosáceo a los bordes. Himenio con lamelas adheridas al estípite, ligeramente decurrentes, con el borde aserrulado, de color amarillo pálido y presencia de lamélulas. Anillo supero y rudimentario (sin forma definida). Estípite de 7cm de largo y 0.8 cm de grosor; cilíndrico, central respecto al píleo, tiende a engrosarse levemente hacia la base, contexto sólido, de textura fibrilosa y presenta una coloración rosácea cerca al himenio. Ejemplar de consistencia con cierta flexibilidad, no se rompe fácil (correoso). Esporada de color naranja marrón. Esporas elipsoidales, de 5.7-8,2 x 3.8-4.8 µm. Según Stamets (1978), la especie es ligeramente alucinógeno, se le conoce como hongo de la risa. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge 2008 (eh, ba). Chivatá T. y Arias C., 2016 Basidioma estipitado, principalmente gregario, en ocasiones solitario o cespitado, lignícola, no higrófano. Píleo de 5 a 7 cm de diámetro, hemisférico en un principio, luego pasa a ser plano convexo con el centro umbonado, visto desde arriba con forma circular (orbicular), Margen recto, entero y ligeramente ondulado, de superficie glabra, viscida y brillosa, que luego pasa a ser seca y opaca, de color rojo que tiende a oscurecerse con el tiempo, con escamas blancas y fasciculadas en el margen, originadas por restos del velo universal. Himenio con lamelas y lamélulas, se encuentran próximas entre sí (apretadas), adnadas a ligeramente uncinadas, anchas, de borde liso, lamélulas atenuadas, de color café claro principio, después gris violáceo y finalmente púrpura negruzco, arista entera, blanquecina. Contexto homegeneo y hueco. Esporada de color marron oscuro. Estípite de 4-8 cm de largo x 0.4-0.5 cm de ancho, central, sub-bulboso

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y con tomento basal con cordones miceliares (rizomorfos), de color blanco con zonas de color naranja rojizo que se intensifica con el tiempo, de superficie pruinosa. Se engrosa ligeramente hacia la base. En algunos ejemplares se logra observar un anillo en banda (rudimentario) adherido al estípite, delgado y efimero. De consistencia fibrosa. Sin olor o sabor apreciable. Basidiosporas elipsoidales, lisas, de paredes gruesas, con poro germinal. El trabajo de microscopia se realizó con un Microscopio Zeiss de Luz Halogena 6v 30w y reactivos rojo congo, melzer e hidróxido de potasio (KOH) 5%. Se observan basidios tetraspóricos, claviformes de 31 x 8 µm, basidiosporas elipsoidales no amiloides, de color marrón a rojo oscuro, superficie lisa, ligeramente apiculadas, con poro germinativo evidente (0,8 a 1 µm). Cistidios fusiformes, de 35,7 x 12,7 µm en general se observan hifas paralelas y presencia de fíbulas. Registro realizado en ecosistema de humedal. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm y Quebrada La Vieja (ba), Localidad de Chapinero, altura aproximada de 2700 msnm. Melanophyllum haematospermum (Bull.) Kreisel 1984 (eh). Chivatá T., 2018 Basidioma estipitado, solitario, humícola, creciendo entre hojarasca de Aliso (A. acuminata) y Sauce Llorón (S. humboldtiana). Píleo de 3-4 cm de diámetro, cónico cuando jóven que luego pasa a ser plano convexo levemente umbonado,superficie seca y opaca, de color marron que tiende a oscurecerse hacia el centro, visto desde arriba con forma circular (orbicular), margen plano y borde ligeramente irregular, en ejemplares maduros tiende a fisurarsen radialmente del borde hacia el centro, exibiendo bordes de color blanco. Superficie seca, azonada, opaca y ligeramente granulada. Himenio de color rojo, con lamelas ligeramente apretadas, libres, anchas y de borde liso, con lamelulas atenuadas. Estípite de 5 cm de altura x 0,3 cm de diametro, central, hueco y cilindrico, consistencia flexible, superficie lisa y de color rojo que se cubre de un polvillo blanco hacia la base. Contexto del pileo de color blanquecino y estípite de color rojo. La esporada de color gris rojiza. Esporas 5,8 x 3 µm y elípticas. Basidios tetraspóricos. Olor y sabor afrutado. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Rhytidhysteron cf. neorufulum Thambug. & K.D. Hyde 2016. Chivatá T., 2018 Ascoma apotecioide de 0,1-0,3 cm de diametro, de forma histerioide cuando joven y navicular a circular cuando madura, que vuelve a su estructura principal cuando se reduce la humedad (triradiada), coriáceos, carbonoso, margen verde claro a negro, solitarios a gregarios, margen liso y ondulado, apertura del apotecio irregular a discoidal, himenio de superficie seca, opaca y de color anaranjado, cambia a purpura en KOH al 5 y 10%; ascas bitunicadas y octospóricas, de aprox. 235 × 16 μm, claviformes a cilíndricas, uniseriadas, pedicelo corto y furcado; ascosporas 33 × 10 μm, elipsoidales y pared gruesa, extremos levemente agudas, de color marrón, presencia de tres septos longitudinales. Se observa solitario a gregario, suelen unirsen pero siempre estan claramente diferenciados. Crecen sobre madera en descomposición. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Rhodocollybia cf. maculata var. scorzonerea (Fr.) Lennox 1979 (eh, ba) Rockefeller A., 2018 Basidioma estipitado, solitario a gregario, humicula, creciendo entre la hojarasca. Pileo de 2 a 3 cm de diametro, convexo, plano-convexo en ejemplares maduros, superficie lisa, seca, color marrón, visto desde arriba con forma circular (orbicular), margen decurvo y borde entero. Himenio de color amarillo claro, con lamelas muy juntas (densas), adnatas, con una muesca nates de su unión con el estípite (escotadas), forma estrecha y borde ligeramente crenado. Estípite de 5 x 0,7 cm central, longitudinalmente fibroso, color amarillo pálido que se oscurece hacia la base. Esporada de color amarillento. Esporas de 4,5-5,5 x 3,5-5 µm, subglobosas, con apículo notable. Sabor amargo. Registrado en Humedal La Conejera (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm. Stropharia cf. rugosoannulata Farl. ex Murrill 1922 (eh, ba). Rodriguez J., 2018 Basidioma estipitado, gregario, creciendo sobre el suelo cerca a cuerpos de agua. Píleo de 8 cm de diametro, plano-convexo, carnoso, superficie seca y opaca, de color castaño-purpura, visto desde arriba con forma circular (orbicular), margen ligeramente incurvado, borde entero, Cutícula separable. Himenio de color gris violaceo, con lamelas entre adnatas y libres, apretadas, presencia de lamélulas. Estípite de 5-7 cm x 1,5-2 cm, curvado, base ensanchada con rizomorfos. Amplio anillo en la parte superior, persistente, con el borde amarillento. Carne espesa, blanca (amarillenta en zonas atacadas por limacos). Esporada purpura-marrón, esporas ovoideas alargadas, con poro germinativo. Contexto de color blanco. Posee un anillo persistente y descendente. Esporada de color purpura oscuro. Sabor y olor agradable. Registrado en Humedal La Conejera y Córdoba (eh), Localidad de Suba, altura aproximada de 2535 msnm.

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Checklist de la Biota Fúngica (Macromicetos y Líquenes) en Ecosistemas de Humedal, Bosques Andinos, Subpáramos y Páramos de Bogotá D.C. Colombia (2018) Macromicetos (Basidiomicetos y Ascomicetos): 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13.

Agaricaceae Agaricus cf. campestris L. 1753 (eh) Agaricus endoxanthus Berk. & Broome 1871(eh, ba)* Chlorophyllum molybdites (G. Mey.) Massee 1898 (eh, ba)* Lepiota sp. P. Browne. 1756 (eh, ba) Leucoagaricus cf. leucothites (Vittad.) Wasser 1977 (eh, ba)* Leucoagaricus rubrotinctus (Peck) Singer 1948 (eh, ba) Leucocoprinus sp. Pat. 1888 (eh, ba) Macrolepiota colombiana Franco-Mol. 1999 (eh, ba)** Melanophyllum haematospermum (Bull.) Kreisel 1984 (eh)* cf. Cercopemyces sp. (eh, ba)* Cyathus cf. striatus (Huds.) Willd. 1787 (eh, ba, sbp)** Cyathus olla (Batsch) Pers. 1801 (eh, ba, sbp)** Melanoleuca sp. Pat. 1897 (eh)**

14. 15. 16. 17.

Amanitaceae Amanita brunneolocularis Tulloss, Ovrebo y Halling. 1992 (eh, ba, sbp)** Amanita cf. gemmata (P.) Bertill. 1866 (eh)** Amanita muscaria (L.) Lam. 1783 (eh-p)** Amanita rubescens Pers. 1797 (eh-p)**

18. 19. 20. 21.

Auriculariaceae Auricularia auricula-judae (Bull.) Quél. 1886 (eh-sbp) Auricularia delicata (Mont. Ex p.) Henn. 1893 (eh-sbp)** Auricularia mesenterica (Dicks.) Pers. 1822 (eh-sbp)** (Auriculariales), Ductifera pululahuana (Pat.) Donk. 1958 (eh, ba)**

Auriscalpiaceae 22. Artomyces pyxidatus (Pers.) Jülich. 1982 (eh-sbp) Bankeraceae 23. Hydnellum cf. compactum (Pers.) P. Karst. 1879 (eh) 24. 25. 26. 27.

Bolbitiaceae Bolbitius sp. Fr. 1838 (eh) Bolbitius titubans (Bull.) Fr. 1838 (eh)** Conocybe lactea (JE Lange) Métrod. 1940 (eh)** Conocybe sp. Singer 1952 (eh)

28. 29. 30. 31.

Boletaceae Aureoboletus cf. auriporus (Peck) Pouzar 1957 (sbp)** Boletus sp. E.M. Fries, 1821 (eh-sbp)** Imleria cf. badia (P.) Vizzini 2014 (eh, ba)** Strobilomyces sp. Berk. 1851 (eh)

Boletinellaceae 32. Boletinellus sp. Murrill 1909 (eh-sbp)**

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Calostomataceae 33. Calostoma cinnabarinum Desv. 1809 (eh-sbp)** Chlorociboriaceae 34. Chlorociboria cf. aeruginascens (Nyl.) Kanouse 1948 (eh, sbp)** Cordieritidaceae 35. Cordierites cf. frondosa (Kobayasi) Korf 1971 (ba) Cordycipitaceae 36. Cordyceps nidus T. Sanjuan, Chir.-Salom. & S. Restrepo 2017 (se)** 37. Cordyceps tenuipes (Peck) Kepler, B. Shrestha & Spatafora. 2017 (se)** Corticiaceae 38. cf. Xylobolus sp. P. Karst. 1881 (eh) 39. Marchandiomphalina foliacea (PM Jørg.) Diederich, Manfr. Binder y Lawrey 2007 (ba-sbp) Crepidotaceae 40. Crepidotus sp. (Fr.) Staude 1857 (eh) 41. Simocybe sp. P.Karst. 1879* (eh) Dacrymycetaceae 42. Calocera sp. (Fr.) Fr. 1828 (ba, sbp) 43. Dacryopinax spathularia (Schwein.) GW Martin 1948 (eh-sbp)** 44. Guepiniopsis buccina (Pers.) LL Kenn. 1959 (ba, sbp)** Discinaceae 45. Gyromitra sp. Fr. 1849 (ba)** Drepanopezizaceae 46. Diplocarpon rosae (Lib.) FA Wolf 1912 (ba, sbp) Entolomataceae 47. Entoloma serrulatum (P.) Hesler 1967 (eh) 48. Entoloma sp. (sub nolanea) (Fr.) P.Kumm (eh, ba, sbp) Fomitopsidaceae 49. Antrodia serialis (Fr.) Donk 1966 Geastraceae 50. Geastrum pectinatum Pers. 1801 (eh)* Gomphaceae 51. Phaeoclavulina curta (Fr.) Giachini 2011 (ba, sbp) 52. 53. 54. 55. 56. 57. 58. 59. 60.

Hydnangiaceae Laccaria cf. laccata (Scop.) Cooke 1884 (ba, sbp, p) Dictyonema sp. Hall, 1851 (ba, sbp, p) (líquen) Humidicutis marginata (Peck) Singer 1959 (se) Hygrocybe cf. coccinea (Schaeff.) P. Kumm. 1871 (ba, sbp) Hygrocybe conica (Schaeff.) P. Kumm. 1871(ba, sbp) Hygrocybe sp. (Fr.) P.Kumm. 1871 (ba, sbp) Hygrophorus sp. Fr. 1836 (eh, ba, sbp) Lichenomphalia alpina (Britzelm.) Redhead, Lutzoni, Moncalvo y Vilgalys 2002 (ba, sbp) (líquen) Lichenomphalia lobata (Redhead & Kuyper) Redhead, Lutzoni, Moncalvo & Vilgalys 2002 (ba, sbp) (líquen)

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61. 62. 63. 64.

Hymenochaetaceae Coltricia sp. Gray 1821 (ba, sbp) Fomitiporia sp. Murrill (ba, sbp) Inonotus porrectus Murrill 1915 (ba) Phylloporia chrysites (Berk.) Ryvarden 1972 (ba)

65. 66. 67. 68.

Hymenogastraceae Galerina sp. Earle 1909 (eh, ba, sbp) Gymnopilus cf. luteofolius (Peck) Singer. 1951 (eh)* Psilocybe caerulescens Murrill 1923 (eh, ba)** Psilocybe cubensis (Earle) Singer 1948 (eh, ba)**

Hypoxylaceae 69. Daldinia cf. eschscholtzii (Ehrenb.) Rehm 1904 (eh, ba)** Inocybaceae 70. Inocybe sp. (Fr.) Fr. 1863 (ba, sbp) Irpicaceae 71. Gloeoporus dichrous (P.) Bres. 1912 (se) 72. Hydnopolyporus cf. fimbriatus (Cooke) DA Reid. 1962 (eh, ba)** 73. Irpex lacteus (P.) P. 1828 (eh) Laetiporaceae 74. Laetiporus sulphureus (Bull.) Murrill 1920 (eh, ba)** 75. 76. 77. 78.

Lycoperdaceae Apioperdon pyriforme (Schaeff.) Vizzini. 2017 (eh, ba) Calvatia craniiformis (Schwein.) Fr. 1849 (eh, ba) Lycoperdon marginatum Vittad. 1842 (eh, ba) Lycoperdon perlatum Pers. 1796 (eh, ba)

79. 80. 81. 82. 83. 84. 85. 86.

Marasmiaceae Campanella sp. Henn. 1895 (eh, ba) Crinipellis scabela (Alb. & Schwein.) Murrill, 1915 (eh, ba) Favolaschia sp. (Pat.) Pat. 1892 (ba, sbp) Marasmius cf. ruforotula Singer 1948 (eh, ba) Marasmius corbariensis (Roum.) Sacc. 1911 () (eh, ba) Marasmius oreades (Bolton) p. 1836 (eh, ba) Marasmius plicatulus Peck 1897 (eh, ba) Marasmius sect. Globulares (eh, ba)

Morchellaceae 87. Morchella sp. Dill. ex Pers. 1794 (ba-p)** 88. 89. 90. 91. 92. 93. 94.

Mycenaceae Hemimycena sp. Singer 1938 (ba, sbp) Mycena alcalina (Fr.) P. Kumm. 1871 Mycena haematopus (Pers.) P. Kumm. 1871 (ba) Mycena holoporphyra (Berk. & MA Curtis) Singer 1962 (eh, ba, sbp) Mycena pura (Pers.) P. Kumm. 1871 (eh, ba, sbp) Mycena sect. Calodontes (Pers.) Roussel 1806 (eh, ba, sbp) Xeromphalina sp. Kühner & Maire 1934 (eh)

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Nectriaceae 95. Nectria sp. Gray, 1840 (se) Omphalotaceae 96. Gymnopus sp. (Pers.) Roussel. (eh) 97. Gymnopus dryophilus (Bull.) Murrill 1916 (eh)** 98. Gymnopus subsect. levipedes (Fr.) Halling (eh, ba) 99. Lentinula edodes (Berk.) Pegler 1976 (ba) 100. Marasmiellus sp. Murrill 1915 (eh, ba) 101. Rhodocollybia cf. maculata var. scorzonerea (Fr.) Lennox 1979 (eh, ba)* 102. Rhodocollybia sp. Singer 1939 (eh, ba) Panaceae 103. Panus cf. conchatus (Bull.) Fr. 1838 (eh, ba)** 104. Panus cf. neostrigosus Drechsler-Santos & Wartchow 2012 (eh, ba)** Patellariaceae 105. Rhytidhysteron cf. neorufulum Thambug. & K.D. Hyde 2016. (eh)* Pezizaceae 106. Peziza sp. Pers., 1801 (eh, ba)** Pezizellaceae 107. Bisporella sp. Sacc. 1884 (eh, ba) Phallaceae 108. Aseroe rubra Labill. 1800 (ba)* 109. Clathrus archeri (Berk.) Dring. 1980 (eh, ba)** 110. Laternea pusilla Berk. & MA Curtis 1868 (ba) Physalacriaceae 111. Flammulina sp. P. Karst. 1891 (eh, ba) 112. Flammulina velutipes (Curtis) Singer 1951 (eh, ba) Physalacriaceae 113. Oudemansiella cf. canarii (Jungh.) Höhn. 1909 (eh, ba)** Pleurotaceae 114. Hohenbuehelia cf. mastrucata (P.) Singer. 1951 (eh) 115. Pleurotus cf. citrinopileatus Singer 1943 (eh, ba) 116. Pleurotus cf. dryinus (Pers.) P. Kumm. 1871 (eh, ba)** 117. Pleurotus ostreatus (Jacq.) P. Kumm. 1871 (eh, ba) 118. Resupinatus trichotis (Pers.) Singer 1961 Pluteaceae 119. Pluteus sp. Fr. 1836 (eh, ba) 120. Pluteus petasatus (Fr.) Gillet 1876 (ba) 121. Volvariella sp. Speg. 1899 (eh, ba) Podoscyphaceae, 122. Abortiporus cf. biennis (eh, ba) Polyporaceae 123. Amauroderma sp. Murrill 1905 (eh, ba) 124. Bresadolia uda (Jungh.) Audet 2016 (eh, ba)* 125. Datronia caperata (Berk.) Ryvarden. 1985 (eh, ba)**

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126. Earliella scabrosa (Pers.) Gilb. & Ryvarden 1985 (eh, ba)** 127. Fomitella cf. supina (Sw.) Murrill 1905 (eh, ba) 128. Ganoderma cf. applanatum (Pers.) Pat. 1887 (eh, ba) 129. Ganoderma australe (Fr.) Pat. 1889 (ba) 130. Lentinus tricholoma (Mont.) Zmitr. 2010 (eh, ba) 131. Trametes sanguinea (Klotzsch) Pat. 1897 (eh, ba)** 132. Trametes versicolor (L.) Lloyd 1921 (eh, ba) 133. Trametes villosa (Sw.) Kreisel 1971 (eh, ba)** Psathyrellaceae 134. Coprinellus disseminatus (Pers.) JE Lange 1938 (eh, ba) 135. Coprinellus domesticus (Bolton) Vilgalys, Hopple y Jacq. Johnson, 2001 (eh, ba) 136. Coprinellus micaceus (Bull.) Vilgalys, Hopple & Jacq. Johnson 2001 (eh, ba) 137. Coprinopsis atramentaria (Bull.) Redhead, Vilgalys y Moncalvo 2001 (eh, ba) 138. Coprinus comatus (OF Müll.) Pers. 1797 (eh, ba) 139. Cyptotrama cf. chrysopepla (Berk. & MA Curtis) Singer 1973 (eh, ba) 140. Cystolepiota sp. Singer 1952 (eh, ba) 141. Panaeolus antillarum (P.) Dennis 1961 (eh, ba)** 142. Panaeolus cinctulus (Bolton) Sacc. 1887 (eh, ba)** 143. Panaeolus cyanescens Sacc. 1887 (ba)** 144. Panaeolus foenisecii (Pers.) J. Schröt. 1926 (ba)** 145. Panaeolus semiglobatus (Murrill) Sacc. & Trotter 1925 (eh, ba)** 146. Panaeolus subbalteatus (Berk. & Broome) Sacc. 1887 (eh, ba)** 147. Parasola cf. plicatilis (Curtis) Redhead, Vilgalys & Hopple 2001 (eh, ba)** 148. Psathyrella candolleana (P.) Maire 1913 (eh, ba)** Pyronemataceae 149. Aleuria aurantia (Pers.) Fuckel 1870 (sbp, p)** 150. Scutellinia cf. scutellata (L.) Lambotte 1887 (eh-sbp)** Rickenellaceae 151. Cotylidia sp. (P.) P. Karst. 1881 (ba) Russulaceae 152. Lactarius indigo (Schwein.) Fr. 1838 (ba, sbp) 153. Russula sp. Pers. 1796 (ba, sbp) Sarcosomataceae 154. Plectania rhytidia (Berk.) Nannf. & Korf 1957 (ba) Schizophyllaceae 155. Schizophyllum commune Fr.1815 (eh, ba, sbp)** Sclerodermataceae 156. Scleroderma sp. Pers. 1801 (eh, ba, sbp) 157. Scleroderma albidum Pat. & Trab. 1899 (ba) 158. Scleroderma areolatum Ehrenb. 1818 (ba) 159. Scleroderma verrucosum (Bull.) Pers. 1801 (eh) Steccherinaceae 160. Flaviporus brownii (Humb.) Donk 1960 (eh)* Stereaceae 161. Stereum hirsutum (Willd.) Pers. 1800 (eh, ba)** 162. Stereum ostrea (Blume y T. Nees) p. 1838 eh, ba)**

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163. Lepraria sp. Ach. 1803 (ba) 164. Xylobolus spectabilis (Klotzsch) Boidin 1958 Stereocaulaceae 165. Stereocaulon sp. Hoffm. 1796 (ba, sbp, p) 166. Stereocaulon ramulosum Raeusch. 1797 (ba, sbp, p) Strophariaceae 167. Agrocybe sp. Fayod 1889 (ba)** 168. Deconica cf. coprophila (Bull.) P. Karst. 1879 (ba)** 169. Hypholoma cf. fasciculare (Huds.) P. Kumm. 1871 (ba) 170. Hypholoma cf. lateritium (Schaeff.) P. Kumm. 1871 (ba)* 171. Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge 2008 (eh, ba)* 172. Pholiota sp. (Fr.) P. Kumm. 1871 (eh, ba) 173. Protostropharia semiglobata (Batsch) Redhead, Moncalvo y Vilgalys 2013 (ba)** 174. Stropharia cf. rugosoannulata Farl. ex Murrill 1922 (eh, ba)* Suillaceae 175. Suillus luteus (L.) Roussel 1796 (eh, ba, sbp, p)** Taphrinaceae 176. Taphrina deformans (Berk.) Tul. 1866 (eh, ba) Tapinellaceae 177. Tapinella panuoides (Fr.) E.-J. Gilbert 1931 (ba) Thelephoraceae 178. Thelephora sp. Ehrh. ex Willd. 1787 (se) Tremellaceae 179. Tremella fuciformis Berk. 1856 (eh, ba)** 180. Tremella mesenterica Retz. 1769 (eh, ba)** Tricholomataceae 181. Clitocybe sp. (Fr.) Staude. (eh, ba) 182. Collybia cf. aurea (Beeli) Pegler 1968 (eh, ba)** 183. Lepista nuda (Bull.) Cooke 1871 (eh, ba)** 184. Leucopaxillus sp. Boursier 1925 (eh, ba)** 185. Tricholoma caligatum (Viv.) Ricken 1914 Tubariaceae 186. Tubaria furfuracea (Pers.) Gillet 1876 (eh, ba)* 187. Tubaria sp. (W.G.Sm.) Gillet 1876 (eh, ba) Xylariaceae 188. Xylaria cf. xanthinovelutina (Mont.) Mont. 1856 (eh, ba)** 189. Xylaria hypoxylon (L.) Grev. 1824 () (eh, ba) 190. Xylaria sp. Hill ex Schrank 1789 () (eh, ba) Líquenes (Hongos liquenizados): Acarosporaceae 191. Acarospora smaragdula (Wahlenb.) A. Massal. 1852 (ba) Arthoniaceae 192. Cryptothecia sp. Stirt. 1876 (eh) 193. Herpothallon rubrocinctum (Ehrenb.) Aptroot, Lücking & G. Thor 2009 (eh-p)

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Baeomycetaceae 194. Phyllobaeis imbricata (Hook.) Kalb y Gierl 1993 (sbp,p) Byssolomataceae 195. Logilvia gilva (Müll. Arg.) Vězda 1986 (ba) Caliciaceae 196. Amandinea submontana Marbach 2000 (eh) 197. Amandinea errata Marbach 2000 (eh) 198. Amandinea lecideina (H. Mayrhofer & Poelt) Scheid. & H. Mayrhofer 1993 (eh) 199. Amandinea punctata (Hoffm.) Coppins & Scheid. 1993 (eh) 200. Dirinaria applanata (Fée) DD Awasthi. 1970 (eh, ba) 201. Dirinaria confluens (P.) DD Awasthi. 1975 (eh, ba) 202. Dirinaria sp. (Tuck.) Clem. 1909 (eh-sbp) 203. Gassicurtia sp. Fée, 1824 (eh) 204. Melanaspicilia aethalea (Ach.) Vano. 1909 (eh) 205. Pyxine endolutea Kalb 1987 (ba) 206. Pyxine cocoes (Sw.) Nyl. 1857 (eh) 207. Pyxine subcinerea Stirt . 1898 (eh) Candelariaceae 208. Candelaria concolor (Dicks.) Arnold. 1879 (eh, ba) 209. Candelariella vitellina (Hoffm.) Müll. Arg. 1894 (eh, ba) Catillariaceae 210. Catillaria aphana (Nyl.) Coppins 1989 (eh) Coccocarpiaceae 211. Coccocarpia erythroxyli (Spreng.) Swinscow & Krog 1976 (eh, sbp) 212. Coccocarpia palmicola (Spreng.) Arv. & DJ Galloway 1979 (eh, sbp) Chrysotrichaceae 213. Chrysothrix cf. xanthina (Vain.) Kalb. 2001 (eh, sbp) Cladoniaceae 214. Cladia aggregata (Sw.) Nyl. 1870 (sbp, p) 215. Cladonia lopezii S. Stenroos 1989 (sbp, p) 216. Cladina rangiferina (L.) Nyl. 1866 (sbp, p) 217. Cladonia didyma (Fée) vana. 1887 (ba, sbp, p) 218. Cladonia sp. P.Browne. 1756 (ba, sbp, p) Collemataceae 219. Leptogium sp. (Ach.) Gray. 1821 (ba, sbp, p) 220. Leptogium burgessii (L.) Mont. 1840 (ba-sbp) 221. Leptogium denticulatum Nyl. 1867 (ba-sbp) 222. Leptogium inversum PM Jørg. & AK Wallace 1997 (ba-sbp) 223. Leptogium phyllocarpum (Pers.) Mont. 1848 (bba-sbp) Coniocybaceae 224. Chaenotheca chrysocephala (Ach.) Th. El p. 1860 (se) Graphidaceae 225. Diploschistes sp. Norman. 1853 (ba, sbp, p) 226. Diploschistes cinereocaesius (Sw.) Vain. 1921 (ba, sbp, p) 227. Glyphis cicatricosa Ach. 1814 (ba, sbp)

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228. Graphis sp. Adans. (ba, sbp) 229. Graphis ruiziana (Fée) A. Massal. 1853 (ba, sbp) Hygrophoraceae 230. Cora aspera Wilk, Lücking y E. Morales 2013 (ba, sbp, p) Icmadophilaceae 231. Dibaeis globulifera Kalb y Gierl 1993 (sbp, p) 232. Glossodium aversum Nyl. 1860 (sbp, p) 233. Siphula fastigiata (Nyl.) Nyl. 1863 (ba-p) 234. Thamnolia vermicularis (Sw.) Schaer. 1850 (ba-p) Lecanoraceae 235. Lecanora sp. Ach. 1809 (eh, ba) 236. Lecanora caesiorubella Ach. 1810 (eh, ba) 237. Lecania aff. olivacella (Nyl.) Zahlbr. 1928 (eh, ba) 238. Lecanora caesiosora Poelt 1966 (eh, ba) 239. Lecanora crenulata (Ach.) Gancho. 1833 (eh, ba) 240. Lecanora dispersa (Pers.) Röhl. 1813 (eh, ba) 241. Lecanora jamesii JR Laundon 1963 (se) Lecideaceae 242. Lecidea sp. Ach. 1803 (bh, ba) 243. Porpidia flavocoerulescens (Hornem.) Hertel y AJ Schwab 1984 (eh, ba) Lepidostromataceae 244. Lepidostroma calocerum (GW Martin) Oberw. 1984 (ba, sbp) Lobariaceae 245. Crocodia aurata (Ach.) Link. 1833 (ba-p) 246. Lobariella sp. Yoshim. 2002 (ba-p) 247. Lobariella sipmanii Moncada, Betanc. & Lücking 2011 (ba-p) 248. Pseudocyphellaria xanthosticta (Pers.) Moncada & Lücking 2014 (ba-p) 249. Sticta sp. (Schreb.) Ach. 1803 (ba-p) 250. Sticta dilatata (Nyl.) Vano. 1913 (ba-p) 251. Sticta lobarioides Moncada & Coca 2013 (ba-p) 252. Sticta phyllidiofuliginosa Moncada, A. Suárez & Lücking 2015 (eh, p) 253. Sticta parahumboldtii Moncada & Lücking 2013 (ba-p) 254. Yoshimuriella subdissecta (Nyl.) Moncada & Lücking 2013 (ba-p) Malmideaceae 255. Malmidea sp. Kalb, Rivas Plata & Lumbsch (eh) Opegraphaceae 256. Opegrapha sp. Humb. 1793 (ba-p) Pannariaceae 257. Erioderma barbellatum PM Jørg. & Arv. 2002 (sbp, p) 258. Pannaria andina PM Jørg. & Sipman 2004 (ba, sbp, p) 259. Psoroma hypnorum (Vahl) Gray 1821 (ba, sbp, p) Parmeliaceae 260. Canoparmelia crozalsiana (B. de Lesd. Ex Harm.) Elix & Hale 1986 (ba) 261. Crespoa carneopruinata (Zahlbr.) Lendemer y BP Hodk, 2013 () (eh, ba) 262. Crespoa crozalsiana (B. de Lesd. Ex Harm.) Lendemer y BP Hodk. 2013 (eh, ba)

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263. Everniastrum sp. Hale ex Sipman 1986 (eh-p) 264. Everniastrum cirrhatum (P.) Hale. 1972 (eh, ba) 265. Everniastrum fragile Sipman. 1986 (eh, ba) 266. Everniastrum sorocheilum (Vain.) Hale ex Sipman 1986 (eh, ba) 267. Everniastrum vexans (Zahlbr. Ex WL Culb. & CF Culb.) Hale ex Sipman 1986 (eh, ba) 268. Flavopunctelia sp. (Krog) Hale 1984 (eh, ba) 269. Flavopunctelia flaventior (Stirt.) Hale 1984 (eh, ba) 270. Flavopunctelia soredica (Nyl.) Hale 1984 (eh, ba) 271. Hypotrachyna densirhizinata (Kurok.) Hale 1975 (ba-p) 272. Imshaugia venezolana (Hale) Elix 2004 (eh, ba) 273. Oropogon formosanus Asahina 1952 (ba-p) 274. Oropogon loxensis (Fée) Zukal 1895 (ba-p) 275. Parmeliopsis sp. (Nyl. ex Stizenb.) Nyl. 1866 (ba-p) 276. Parmotrema aff. austrosinense (Zahlbr.) Hale 1974 (eh, ba) 277. Parmotrema austrosinense (Zahlbr.) Hale 1974 (eh, ba) 278. Parmotrema bangii (Vain.) Hale 1974 (eh, ba) 279. Parmotrema ciliiferum Hale 1990 (eh, ba) 280. Parmotrema crinitum (Ach.) M. Choisy 1952 (eh, ba) 281. Parmotrema cristiferum (Taylor) Hale 1974 (eh, ba) 282. Parmotrema diffractaicum (Essl.) Hale 1974 (eh, ba) 283. Parmotrema dilatatum (Vain.) Hale 1974(eh, ba) 284. Parmotrema eciliatum (Nyl.) Hale 1974 (eh, ba) 285. Parmotrema endosulfuro (Hillmann) Hale 1974 (eh, ba) 286. Parmotrema gardneri (CW Dodge) Sérus. 1984 (eh, ba) 287. Parmotrema hababianum (Gyeln.) Hale 1974 (eh, ba) 288. Parmotrema indicum Hale 1977 (eh, ba) 289. Parmotrema reticulatum (Taylor) M. Choisy 1952(eh, ba) 290. Parmotrema sp. A.Massal. 1860 (eh, ba) 291. Parmotrema succinreticulatum (Eliasaro y Adler) Blanco, Crespo, Divakar, Elix y Lumbsch 2005 (eh, ba) 292. Punctelia crispa Marcelli, Jungbluth & Elix 2009 (eh, ba) 293. Punctelia neutralis (Hale) Krog 1982 (eh, ba) 294. Punctelia punctilla (Hale) Krog 1982 (eh, ba) 295. Punctelia stictica (Delise ex Duby) Krog 1982 (ba-p) 296. Punctelia subrudecta (Nyl.) Krog 1982 (eh, ba) 297. Usnea cirrosa Motyka 1937 (eh, p) 298. Xanthoparmelia sp. (Vain.) Hale 1974 (ba, sbp) Peltigeraceae 299. Peltigera sp. Willd. 1787 (ba-p) 300. Peltigera austroamericana Zahlbr. 1925 (ba-p) Pertusariaceae 301. Pertusaria sorediata C. Knight ex Shirley 1889 (ba) Physciaceae 302. Heterodermia albicans (Pers.) Swinscow y Krog 1976 (eh, ba) 303. Heterodermia leucomelos (L.) Poelt 1965 (eh, ba) 304. Heterodermia tremulans (Müll. Arg.) WL Culb. 1967 (eh, ba) 305. Hyperphyscia adglutinata (Flörke) H. Mayrhofer & Poelt 1979 (eh, ba) 306. Hyperphyscia aff. minor (Fée) Kalb 1988 (eh, ba) 307. Hyperphyscia aff. mobergii Kalb 1990 (eh, ba) 308. Hyperphyscia confusa Essl., CA Morse y SD Leav. 2012 (eh, ba)

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309. Hyperphyscia syncolla (Tuck. Ex Nyl.) Kalb 1983 (eh, ba) 310. Physcia sp. (Schreb.) Michx. 1803 (eh, ba) 311. Physcia aff. biziana (A. Massal.) Zahlbr. 1901 (eh, ba) 312. Physcia aff. manuelli Moberg 1990 (eh, ba) 313. Physcia aff. poneinsii Hue 1917(eh, ba) 314. Physcia undulata Moberg 1986 (eh, ba) 315. Physcia alba (Fée) Müll. Arg. 1887 (eh, ba) 316. Physcia albata (F. Wilson) Hale 1963 (eh, ba) 317. Physcia atrostriata Moberg 1986 (eh, ba) 318. Physcia caesia (Hoffm.) Fürnr. 1839 (eh, ba) 319. Physcia crispa Nyl. 1860 (eh, ba) 320. Physcia decorticata Moberg 1990 (eh, ba) 321. Physcia erumpens Moberg 1986 (eh, ba) 322. Physcia krogiae Moberg 1986 (eh, ba) 323. Physcia undulata Moberg 1986 (eh, ba) 324. Rinodina fimbriata Körb. 1859 (eh, ba) 325. Rinodina milvina (Wahlenb.) Th. El p. 1861 (ba) 326. Rinodina oleae Bagl. 1857 (ba) Pucciniaceae 327. Puccinia menthae Pers. 1801 (se) 328. Puccinia oxalidis Dietel y Ellis 1895 (se) Ramalinaceae 329. Bacidia salmonea S. Ekman 1996 (eh,ba) 330. Crocynia sp. (Ach.) A.Massal. 1860 (eh,ba) 331. Ramalina celastri (Spreng.) Krog & Swinscow 1976 (eh, ba, sbp) 332. Ramalina cochlearis Zahlbr. 1905 (eh,ba) 333. Ramalina complanata (Sw.) Ach. 1810 (eh,ba) 334. Ramaria sp. Fr. ex Bonord. 1851 (eh,ba) Ramboldiaceae 335. Ramboldia sp. Kantvilas & Elix 1994 (ba) Rhizocarpaceae 336. Rhizocarpon geographicum (L.) DC. 1805 (ba, sbp) Sphaerophoraceae 337. Bunodophoron melanocarpum (Sw.) Wedin 1995 (ba, sbp) 338. Sphaerophorus sp. Zetterstedt, 1849 (se) Superstratomycetaceae 339. Normandina pulchella (Borrer) Nyl. 1861 (ba) Teloschistaceae 340. Caloplaca citrina (Hoffm.) Th. El p. 1861 (ba) 341. Caloplaca concilios (Nyl.) H. Olivier 1909 (ba) 342. Caloplaca oasis (A. Massal.) Szatala 1932 (ba) 343. Teloschistes exilis (Michx.) Vano. 1890 (eh, ba) 344. Teloschistes flavicans (Sw.) Norman 1852 (eh, ba) 345. Teloschistes hypoglaucus (Nyl.) Zahlbr. 1908 (eh, ba) 346. Xanthoria parietina (L.) Th. El p. 1860 (eh, ba)

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Trapeliaceae 347. Placopsis parellina (Nyl.) IM Lamb 1940 (se) 348. Trapelia M. Choisy 1929 (se) Umbilicariaceae 349. Umbilicaria sp. Hoffm. 1789 (sbp, p) Uropyxidaceae 350. Tranzschelia sp. Arthur 1906 (se) Verrucariaceae 351. Endocarpon pusillum Hedw. 1789 (se) 352. Normandina pulchella (Borrer) Nyl. 1861 (ba, sbp) 353. Staurothele diffractella (Nyl.) Tuck. 1872 (se) 354. Verrucaria calciseda DC. 1805 (se) Bogotá cuenta con diferentes tipos de ecosistemas que albergan una gran variedad de especies, entre los que resaltan mamíferos terrestres como la zarigüeya (Didelphis pernigra), curí (Cavia anolaimae), comadreja andina (Mustela frenata), murciélago frugívoro (Sturnira bogotensis) y musaraña (Cryptotis thomasi), especies de serpientes (Atractus crassicaudatus), anfibios como la rana sabanera (Dendropsophus molitor) y la rana campana (Colostethus subpunctatus) (SDA, 2010). Para el caso de los humedales, son el hábitat de aproximadamente 113 especies de aves, entre las cuales resaltan la tingua moteada (Gallinula melanops), tingua pico rojo (Gallinula galeata), tingua pico amarillo (Fulica americana), alcaraván (Vanellus chilensis), monjita (Chrysomus icterocephalus), chamicero (Synallaxis subpudica), coquito (Phimosus infuscatus), pato turrio (Oxyura jamaisensis) y pato canadiense (Anas discors), búho negruzco (Asio stygius), gavilán maromero (Elanus leucurus) y gavilán pollero (Rupornis magnirostris) (SDA, 2010; DAMA, 2004).

Imagen 1. Mapa de Bogotá D.C. https://www.habitatbogota.gov.co/sites/default/files/documentos/Experiencias-de-habitabilidad-cerros.pdf

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En cuanto a la vegetación, las plantas acuáticas que predominan en la ciudad son el helecho de agua (Azolla filiculoides), buchón (Eichhornia crassipes), buchón de agua (Limnobium laevigatum), lenteja de agua (Lemna gibba), barbasco (Polygonum punctatum), gualola o envidia (Polygonum segeta), botoncillo (Bidens laevis), lengua de vaca (Rumex conglomeratus), cortadera (Cyperus rufus), enea (Typha latifolia), junco (Schoenoplectus californicus), junco fino (Juncus effusus), papiro (Cyperus papyrus), sombrillita de agua (Hydrocotyle ranunculoides), entre otras. La vegetación terrestre en ecosistemas de humedal y bosque andino está compuesta principalmente por una mezcla de especies nativas e introducidas, entre las que se encuentran arboloco (Smallanthus pyramidalis), aliso (Alnus acuminata), sauco (Sambucus nigra), raque (Vallea stipularis), lupinus (Lupinus bogotensis), curuba (Passiflora sp.), sauce llorón (Salix humboldtiana), alcaparro (Senna viarum), arrayán (Myrcianthes leucoxyla), cedro (Cedrela montana), chicalá (Tecoma stans), chilco (Baccharis latifolia), velitas (Abatia parviflora), espino garbanzo (Duranta mutisii), cucharo (Clusia multiflora), higuerilla (Ricinus communis), roble (Quercus humboldtii), sangregado (Croton bogotanus), cordoncillo (Piper bogotensis), trompeto (Bocconia frutescens), yarumo (Cecropia peltata), cardo negro (Cirsium vulgare), eucalipto (Eucalyptus sp), acacia gris (Acacia decurrens), retamo espinoso (Ulex europaeus), retamo liso (Genista monspessulana), acacia negra (Acacia melanoxylon), bella helena (Impatiens walleriana), pino pátula (Pinus patula) y pino candelabro (Pinus radiata) (SDA, 2010). Las especies vegetales representativas de subpáramo y páramo son: rompeplatos (Bomarea setacea), uva camarona (Macleania rupestris), pegapega (Bejaria resinosa), chite grande (Hypericum goyanesii), angelito (Bucquetia glutinosa), mora silvestre (Rubus robustus), yerba gorda (Eryngium humile), (Ageratina pichinchensis), frailejón blanco (Espeletia argentea), frailejón (Espeletia grandiflora), romero de monte (Pentacalia abietina), árnica (Senecio formosoides), puya (Puya goudotiana) y cardita (Paepalanthus alpinus). Respecto a la biodiversidad en cuerpos de agua de quebradas y humedales de Bogotá, se ha logrado registrar una amplia riqueza y abundancia de especies microscópicas, principalmente organismos fito y zooplanctónicos como las cianobacterias (Oscillatoria sp., Anabaena sp y Nostoc sp.), euglenófitas (Phacus sp., Lepocinclis sp. y Euglena sp.), diatomeas (Navicula sp. y Pinnularia sp), clorofíceas (Scenedesmus sp. y Closterium sp.) protozoos ciliados (Amphileptus sp., Carchesium sp., Coleps sp., Chilodonella cf. cucullulus, Cyclidium sp., Didinium sp., Euplotes sp., Litonotus cf. cygnus, Litonotus sp., Nassula sp. Paramecium sp., Spirostomun sp., Stentor sp., Stylonychia sp., Urocentrum sp., Vorticella sp., Vorticella sp.), entre otros microorganismo que permiten ampliar la visión de los beneficios y funciones ecológicas que representan este tipo de ecosistemas para la ciudad (Chivatá y Acosta, 2016). Estos ecosistemas han sido fuertemente transformados por actividades antrópicas, generando consigo aspectos e impactos ambientales negativos asociados fundamentalmente a la tala de bosques, transformación de los suelos y desecación de los cuerpos de agua, esto como consecuencia del acelerado crecimiento demográfico, expansión urbana, manejo inadecuado de los residuos sólidos y vertimientos de origen tanto doméstico como industrial. Estudios realizados sobre la fauna de Bogotá D.C., sugieren que varias especies se han visto afectadas por la reducción y deterioro de ecosistemas como los humedales (Calvachi, 2003; Van der Hammen et al., 2008), por tal motivo, este informe permite generar un acercamiento a la Biota Fungica encontrada en Ecosistemas de Humedal, Bosques Andinos, Subpáramo y Páramos de Bogotá D.C. Colombia. La construcción de este conocimiento en compañía de la comunidad, es necesario y fundamental, ya que su participación activa permite transformar las prácticas frente a la biodiversidad y su entorno, de tal forma, que los resultados obtenidos sean soporte para nuevas estrategias asociadas a promover la defensa y conservación del territorio.

Otros registros en: Grupo XYLARIA Hongos de Colombia ©2016 FACEBOOK: www.facebook.com/groups/xylariahongosBogota/ INSTAGRAM: www.instagram.com/neotropical_fungi/

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